Artykuł metodologiczny

Barwienie eozyną próbek tkanek miękkich: oparta na eozynie procedura barwienia nerek całych myszy w celu wizualizacji określonych mikrostruktur tkanek

8 lipca 2025

W tym artykule

Streszczenie

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Źródło: Busse, M. et al., 3D Obrazowanie próbek tkanek miękkich przy użyciu metody barwienia specyficznego dla promieniowania rentgenowskiego i nanoskopowej tomografii komputerowej.J. Vis. Exp.(2019 rok)

Ten film pokazuje procedurę zakwaszania całej nerki myszy z fiksacją, po której następuje barwienie Eozyną Y. Ta specyficzna dla cytoplazmy metoda barwienia eozyny pomaga uwidocznić i zidentyfikować struktury anatomiczne w tkance.

Protokół

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Wszystkie procedury dotyczące modeli zwierzęcych zostały sprawdzone przez lokalny instytucjonalny komitet opieki nad zwierzętami oraz weterynaryjną komisję rewizyjną JoVE.

1. Protokół barwienia eozyny

  1. Aby utrwalić próbki tkanek miękkich, napełnij probówkę wirówkową o pojemności 50 ml roztworem utrwalającym zawierającym 9,5 ml 4% (v/v) roztworu formaldehydu (FA) i 0,5 ml lodowatego kwasu octowego (AA).
    nuta: Przygotuj roztwór FA świeżo z 37% bezkwasowego roztworu FA stabilizowanego około 10% metanolem. Roztwór FA należy rozcieńczyć roztworem FA roztworem soli fizjologicznej buforowanym fosforanem (DPBS) firmy Dulbecco. Wybierz DPBS bez wapnia i magnezu. Rozcieńczony roztwór FA należy przechowywać nie dłużej niż jeden miesiąc. Podczas zakwaszania pH roztworu utrwalającego zmienia się z obojętnego na około 3,
    ostrożność: Ponieważ FA jest toksyczny dla narządów, i rakotwórczy, stosowanie dygestoriów jest obowiązkowe i należy stosować odpowiednie środki ochrony osobistej.
    1. Dodaj świeżo usuniętą próbkę tkanek miękkich do probówki wirówkowej o pojemności 50 ml i wstaw do lodówki probówkę wirówkową o pojemności 50 ml przez 24-72 godz.
      nuta: W tym miejscu protokół można wstrzymać.
    2. Próbkę tkanek miękkich przemywać roztworem DPBS przez 1 godzinę.
  2. Aby wybarwić utrwaloną próbkę tkanek miękkich (np. całą nerkę myszy), należy umieścić tkankę miękką w 2 ml roztworu do barwienia eozyną Y i inkubować próbkę przez 24 godziny. Przechowywać próbkę na poziomej płycie wstrząsającej, aby uzyskać płynne kołysanie (ok. 60 obr./min) podczas procesu inkubacji.
    nuta: Roztwór barwiący eozynę Y ma stężenie 30% (w/v) w wodzie destylowanej. Wybrać objętość roztworu barwiącego w taki sposób, aby próbka była całkowicie pokryta roztworem barwiącym i umożliwić próbce swobodne przemieszczanie się w pojemniku na próbkę. Czas inkubacji może być różny dla innych próbek i musi być odpowiednio dostosowany.
  3. Po barwieniu ostrożnie wyjmij próbkę tkanek miękkich z pojemnika na próbkę.
    1. Ostrożnie usuń nadmiar środka barwiącego za pomocą bibuły celulozowej.
    2. Umieścić próbkę tkanek miękkich w stożkowym pojemniku na próbkę powyżej fazy parowej etanolu w celu przechowywania i dalszego wykorzystania.
      nuta: Stożkowy pojemnik na próbkę musi zawsze zawierać kilka kropli 70% (v/v) etanolu na dnie probówki, aby utrzymać wilgotność próbki tkanek miękkich i zapobiec artefaktom.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Oświadczenia

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
Nie stwierdzono konfliktu interesów.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
Probówka wirówkowa o pojemności 50 ml firmy FalconFirma VWRNr kat. 734-0453
Roztwór formaldehydu, 37%Carla RothaCP10.2Bezkwasowy, stabilizowany ~10% MeOH
Lodowaty kwas octowyAlfa Aesar36289.AP
Sól disodowa eozyny YSigma-AldrichE4382Certyfikowany przez Komisję ds. Plam Biologicznych
Sól fizjologiczna buforowana fosforanami (PBS)MerckL1825Preparat Dulbecco, bez wapnia i magnezu
Probówki na próbki firmy NalgeneCarla RothaATK5.1
Shaker na biegunach ST5kotNr kat. 60281-0000
Bibuła celulozowaFirma VWR115-0600
Probówki do mikrowirówek firmy EppendorfFirma VWR211-2120Zamek awaryjny, 2,0 ml
Absolutny etanol według Baker AnalizowanyFirma VWR80252500
szalka Petriego firmy Sterilin
Kleszcze firmy USBECK LaborgeräteFirma VWR232-0096
Plastikowa pipeta PasteuraCarla RothaZobacz materiał EA68.1Z podziałką, 1 ml
powiedział:

Przedruki i uprawnienia

Poproś o pozwolenie na ponowne wykorzystanie tekstu lub ilustracji tego artykułu JoVE

Poproś o pozwolenie

Tagi

Tissue FixationCytoplasm StainingEosin YParaffin EmbeddingMicrotome SectioningTissue DehydrationHistological AnalysisKidney Microstructure

Powiązane artykuły