Artykuł metodologiczny

Barwienie Giemsa do testu tworzenia kolonii: procedura barwienia in vitro w celu oceny zdolności proliferacyjnej mezenchymalnych komórek macierzystych

4.5K wyświetleń

8 lipca 2025

W tym artykule

Streszczenie

Źródło: Schlaefli, P. et al. Enzymatyczna metoda ratowania mezenchymalnych komórek macierzystych z zakrzepłych próbek szpiku kostnego. J. Vis. Exp. (2015)

W tym filmie demonstrujemy procedurę barwienia metodą Giemsa, aby ocenić potencjał proliferacyjny mezenchymalnych komórek macierzystych do tworzenia żywotnych kolonii. Barwnik Giemsa to neutralna plama składająca się głównie z barwników lazurowych i eozynowych, które mają selektywne powinowactwo do składników komórkowych w zależności od ich ładunku.

Protokół

1. Siew do hodowli komórek ekspansywnych i płytek CFU

  1. Zawiesić komórki (składające się z erytrocytów i komórek jednojądrzastych) w 50 ml podłoża podstawowego: Alpha-MEM uzupełnionego 10% płodową surowicą bydlęcą (FBS), 100 U/ml penicyliny, 100 mg/ml streptomycyny i 2,5 mg/ml amfoterycyny B. Policz komórki rozcieńczone w stosunku 1:10 w roztworze błękitu trypanowego, używając komory Neubauera.
  2. Umieścić komórki w kolbach do hodowli komórkowych o gęstości 5 x 10⁷ komórek/cm² i inkubować w wilgotnym inkubatorze w temperaturze 37 °C. Jeśli to możliwe, użyj warunków hipoksyjnych (5% tlenu). W przypadku kontroli testu CFU umieść 10⁹ komórek w naczyniu do hodowli komórkowej o średnicy 10 cm.
  3. Po 3 dniach hodowli mezenchymalne komórki macierzyste są przyłączane do naczynia do hodowli komórkowej, podczas gdy inne komórki pozostają w zawiesinie. Zmienić pożywkę na podłoże podstawowe uzupełnione 5 ng/ml zasadowego czynnika wzrostu fibroblastów (bFGF). W przypadku kontroli testu CFU należy traktować szalkę z hodowlą komórkową w podobny sposób.
  4. Kontynuuj hodowlę komórkową w sumie przez 2 tygodnie, wymieniając pożywkę trzy razy w tygodniu. Jeśli komórki przekraczają 80% zbieżności, podziel je przez trypsynizację. W przypadku kontroli testu CFU należy również wymienić pożywki, ale nie należy dzielić komórek w ciągu dwóch tygodni.

2. Barwnik Giemsa do testu CFU

  1. Przygotować 10 ml roztworu Giemsy na każde naczynie: rozcieńczyć roztwór podstawowy (7,6 g/l Giemsa w glicerolu:metanolu) w stosunku 1:10 w sterylnej wodzie (zawsze należy przygotować świeże robocze rozcieńczenie).
  2. Wyjmij pożywkę z naczynia do hodowli komórkowych i umyj komórki PBS. Zachowaj szczególną ostrożność podczas nakładania płynu na szalkę Petriego i unikaj zmywania komórek.
  3. Utrwalić komórki w czystym metanolu przez 5 minut w temperaturze pokojowej. Wyrzuć metanol. Dodać roztwór Giemsa i inkubować przez 60 minut w nawilżanym inkubatorze w temperaturze 37 °C.
  4. Umyj dwa razy PBS. Wysuszyć głowicę talerza na powietrzu na ręczniku papierowym. Policz kolonie ręcznie. Najlepiej osiągnąć to za pomocą markera umieszczonego na odwrocie tabliczki.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Oświadczenia

Nie stwierdzono konfliktu interesów.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
Podstawowe składniki podłoża
PenStrep 100XGibco (firma Gibco)15140122
Podstawowe FGF u ludziPeprotech100-18 mld
MEM Alpha z nukleozydem, ze stabilną glutaminąAmimed (Amimed)1-23S50-I
FBS Inaktywowany CiepłoAmimed (Amimed)2-01F36-I
Amfoterycyna BAplikacjaA1907
rodzajowy
PbsAplikacja964,91
Bejca GiemsaAplikacjaNr kat. A0885
Materiały spawalnicze
Naczynie do hodowli komórek Primariasokół353803
Kolba do hodowli komórkowych - Kolba T300TPP (TPP)Numer katalogowy 90301
sprzęt
Pipeta serologiczna w paski 5mlCorning4487-200 szt.
Inkubator nawilżany Heracells 240Termo naukowy51026331
Heraeus Multifuge 1S-RTermo naukowy75004331
powiedział: zł

Przedruki i uprawnienia

Poproś o pozwolenie na ponowne wykorzystanie tekstu lub ilustracji tego artykułu JoVE

Poproś o pozwolenie

Tagi

Fiksacja metanolembarwienie Azure Bbarwienie eozyn Yliczenie koloniikom rki pochodz ce z szpiku kostnegohodowla kom rkowa

Powiązane artykuły