Artykuł metodologiczny

Oczyszczanie białek oparte na chromatografii anionowej: technika rozdzielania mająca na celu wyizolowanie białka będącego przedmiotem zainteresowania z dializowanego lizatu bakteryjnego na podstawie ładunku netto

8 lipca 2025

W tym artykule

Streszczenie

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Źródło: Fuehner, S., et al. Oczyszczanie S100A12 ludzkiego i jego indukowanych jonami oligomerów do stymulacji komórek odpornościowych J. Vis. Exp. (2019 rok)

W tym filmie demonstrujemy technikę chromatografii anionowo-wymiennej do oczyszczania ludzkiego białka wiążącego wapń S100A12 na podstawie ładunku powierzchniowego netto białka z hodowli Escherichia coli.

Protokół

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

1. Oczyszczanie białek

  1. Chromatografia anionowymienna
    1. dializa
      1. Przygotować bufor A do chromatografii anionowymiennej (AIEX) przez rozpuszczenie 20 mM Tris, 1 mM EDTA i 1 mM kwasu bis(2-aminoetyloetero)-N (2-aminoetyloetero) glikolu etylenowego (EGTA) w wodzie dejonizowanej i dostosować pH do 8,5 za pomocą HCl. Do dializy przygotować 2 x 5 l, a do chromatografii 2 x 1 l buforu AIEX A.
        nuta: Objętość dializatu powinna być około 100 razy większa od objętości próbki. Wszystkie używane do chromatografii powinny być przefiltrowane (0,45 μm lub mniej) i odgazowane (np. przez kąpiel ultradźwiękową lub odgazowanie próżniowe).
      2. Przyciąć rurkę do dializy (odcięcie masy cząsteczkowej [MWCO]: 3,5 kDa) na odpowiednią długość z dodatkową przestrzenią na powietrze, aby zapewnić wyporność próbki powyżej obracającego się mieszadła.
        nuta: Glicerol konserwuje membranę i należy go usunąć przed użyciem.
      3. Aby zmniejszyć lepkość oczyszczonego roztworu białkowego, należy rozcieńczyć roztwór 25 ml buforu A AIEX, aby ułatwić późniejsze nałożenie na kolumnę chromatograficzną. Przymocuj pierwsze zamknięcie do rurki, załaduj próbkę do membrany i zamocuj drugie zamknięcie co najmniej 1 cm od górnego końca rurki.
      4. Umieścić 5-litrowy pojemnik z buforem AIEX A na talerzu mieszającym, dodać mieszadło i membranę wypełnić roztworem białka. Dostosuj prędkość, aby obrócić próbkę, unikając zakłóceń z obracającym się mieszadłem. Dializa przez 12−24 h w temperaturze 4 °C, następnie zastąpić bufor dializatu (bufor AIEX A) świeżym, wstępnie schłodzonym preparatem i kontynuować przez co najmniej dodatkowe 4 godziny. Przenieść dializowany roztwór białka do probówki o pojemności 50 ml i przefiltrować przez jednostkę filtrującą 0,45 μm.
        nuta: Możliwe przechowywanie.
    2. chromatografia
      1. Uruchomić system chromatografii cieczowej (FPLC) z ogólną konserwacją, podłączyć kolumnowe AIEX A i AIEX B (bufor AIEX A z 1 M NaCl) i kolumnę zawierającą żywicę anionowymienną. Ogólne parametry chromatograficzne znajdują się w Tabeli 1.
        nuta: , kolumny i urządzenia FPLC powinny być wyrównane do tej samej temperatury przed rozpoczęciem serii (patrz parametry chromatograficzne w Tabeli 1, Tabeli 2).
      2. Zrównoważyć kolumnę buforem A AIEX, a następnie załadować próbkę do kolumny i wymyć białka z gradientem liniowym od 0% do 100% buforu o wysokiej zawartości soli (AIEX B). Patrz Tabela 2, aby zapoznać się ze szczegółowym protokołem metody.
      3. Zebrać 2 ml frakcji podczas elucji i przeanalizować 10 μl każdej frakcji na elektroforezie w żelu poliakrylamidowym z 15% dodecylosiarczanem sodu barwionym Coomassie (SDS-PAGE). Zebrać frakcje zawierające białko S100A12 do dializy.
        nuta: Masa cząsteczkowa S100A12 wynosi 10 575 Da.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Wyniki

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Tabela 1: Szczegółowe informacje na temat stosowanych parametrów chromatografii anionowymiennej.

Objętość łóżka (CV)75 ml
monitorAbsorbancja przy 280 nM
Maksymalne ciśnienie3 bary
Bufor kolumny A20 mM Tris-HCl, 1 mM EDTA, 1 mM EGTA, pH 8,5

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Oświadczenia

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
Nie stwierdzono konfliktu interesów.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
25% HCl  Carl Roth  X897.1
4− 20% żeli białkowych Mini-PROTEAN TGX  BioRad  4561093
Roztwór odbarwiający Coomassie Briliant Blue R250  BioRad  1610438
Roztwór do barwienia Coomassie Briliant Blue R250  BioRad  1610436
Sól disodowa EDTA dwuwodna  Carl Roth  8043.1
EGTA  Carl Roth  3054.3
Q Sepharose Szybki przepływ  GE Healthcare  17-0510-01  Żywica do chromatografii anionowymiennej
Chlorek sodu (NaCl)  Carl Roth  3957.2
Wodorotlenek sodu  Carl Roth  P031.1
Podstawa Tris  Carl Roth  4855.3
0.45 &mikro; m Filtr strzykawkowy  Firma Merck  SLHA033SS
5 L miarki  Carl Roth  CKN3.1
Stożkowe probówki wirówkowe o pojemności 50 ml  Corning  430829
Zamknięcia przewodów do dializy  Widmo  132738
Probówki do zbierania frakcji 5 mL  Greiner  115101
Spectra/Por Membrana do dializy (3,5 kDa)Spectrum  132724
Jednostka filtrująca Steritop  Firma Merck  SCGPT01RE
Ä Oczyszczacz KTA UPC 10  GE Healthcare  System FPLC
Kolekcjoner frakcji  GE Healthcare  Frac-920
Mini proteuszowa komórka tetra  BioRad  1658000EDU
NanoPhotometer  Informacje  P330
pH  Drobiazg  765

Przedruki i uprawnienia

Poproś o pozwolenie na ponowne wykorzystanie tekstu lub ilustracji tego artykułu JoVE

Poproś o pozwolenie

Tagi

bufor wi cybufor elucyjnysystem FPLCagaroza sieciowanagrupy czwartorz dowe amingradient solnyfrakcje bia kowe

Powiązane artykuły