1. Test transfekcji ludzkiego receptora estrogenowego β
UWAGA: Technika aseptyczna i kaptur z przepływem laminarnym są wymagane do pierwszego dnia protokołu testu.
- Przygotować rozcieńczenia 17β-estradiolu dla krzywej wzorcowej.
- Przenieś pożywkę do odzyskiwania komórek i złożoną pożywkę przesiewową (CSM) z zamrażarki i rozmroź je w łaźni wodnej o temperaturze 37 °C.
- Oznaczyć probówki do mikrowirówek Pośrednie 1 i 2 (INT1, INT2) oraz 1-8.
- Napełnij INT1 995 μl CSM, INT2 615 μl CSM, probówkę 1 900 μl CSM, a probówki 2-8 600 μl CSM. Odłóż rurkę 8 na bok.
- Przenieś 5 μl 100 μM 17β-estradiolu do INT1. Wyrzuć końcówkę. Wir.
- Przed każdym transferem przepłucz pipetę 3 razy, a następnie przenieś 10 μl z INT1 do INT2. Wyrzuć końcówkę.
- Przepłukać pipetę 3 razy, a następnie przenieść 100 μl z INT2 do probówki 1. Wyrzuć napiwek. Przenieść 300 μl z probówki 1 do probówki 2. Powtórz dla probówek od 3 do 7. Wyrzucić 300 μl z probówki 7 do pojemnika na odpady. Rurka 8 jest zerem i nie otrzymuje estradiolu. Końcowe stężenia platerowanych wzorców to: 400, 133,3, 44,44, 14,815, 4,938, 1,646, 0,5487 i 0 pM estradiolu.
- Przygotować próbki związków.
- Próbki wirowe.
- Weź 4 μl każdej próbki rośliny w DMSO i dodaj do 496 μl CSM, aby uzyskać 0,8% roztwór DMSO.
- Szybko rozmrozić komórki reporterowe.
- Pobrać probówkę z pożywką do odzyskiwania komórek z łaźni wodnej o temperaturze 37 °C. Zdezynfekuj powierzchnię zewnętrzną za pomocą 70% etanolu.
- Odzyskaj komórki reporterowe z magazynu w temperaturze -80 °C i rozmroź, przenosząc 10 ml wstępnie podgrzanego CRM do probówki z zamrożonymi komórkami.
- Zamknij probówkę z komórkami reporterowymi i przenieś je do łaźni wodnej o temperaturze 37°C na 5-10 minut.
- Wyjmij probówkę z zawiesiną komórek reporterowych z łaźni wodnej. Kilkakrotnie delikatnie odwróć rurkę komórkową, aby rozbić agregaty komórek i wytworzyć jednorodną zawiesinę. Oczyść powierzchnię rurki 70% etanolem.
- Posiewanie testowe.
- Dozować 100 μl zawiesiny komórek reporterowych do każdej studzienki za pomocą pipety wielokanałowej.
- Dozować 100 μl próbek w trzech egzemplarzach do odpowiednich studzienek testowych.
- Przenieść płytkę do inkubatora o temperaturze 37 °C, nawilżonego 5% CO2 na 22-24 godziny.
- Rozmrozić substrat do wykrywania i bufor detekcyjny w ciemnej lodówce przez noc, aby przygotować się na Dzień 2.
- Tuż przed zakończeniem inkubacji na płytce należy wyjąć z lodówki substrat detekcyjny i bufor detekcyjny i umieścić w miejscu o słabym oświetleniu, aż do uzyskania równowagi do temperatury słonecznej. Po osiągnięciu RT delikatnie odwróć każdą probówkę kilka razy, aby dokładnie wymieszać roztwory.
- Bezpośrednio przed zakończeniem inkubacji wlej całą zawartość buforu detekcyjnego do probówki z substratem detekcyjnym, aby utworzyć odczynnik do wykrywania lucyferazy. Delikatnie wymieszaj, aby nie wytworzyć piany.
- Po zakończeniu inkubacji odwrócić płytkę i wyrzucić jej zawartość do odpowiedniego pojemnika na odpady. Delikatnie postukaj płytką o czysty, chłonny ręcznik papierowy, aby usunąć ostatnie kropelki z dołków.
- Dodaj 100 μl odczynnika do wykrywania lucyferazy do każdej studzienki. Pozostawić płytkę testową w temperaturze pokojowej przez 15 minut. Nie potrząsaj talerzem.
- Określ ilościowo luminescencję za pomocą 96-dołkowego luminometru do odczytu płytki.