Method Article

Test dzielonej komplementacji lucyferazy w celu identyfikacji specyficznych interakcji białko-białko

July 8th, 2025

In This Article

Abstract

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Źródło: Wiertelak, W. et.al., Demonstracja heterologicznych kompleksów utworzonych przez białka błonowe typu III rezydujące metodą Golgiego przy użyciu testu komplementacji rozszczepionej lucyferazy. J. Vis. Exp. (2020)

Ten film demonstruje test komplementacji rozszczepionej lucyferazy w celu wykrycia interakcji białko-białko. W tym teście interesujące białka są oznaczane do małych i dużych fragmentów enzymu lucyferazy. Kiedy białka wchodzą w interakcję, duże i małe fragmenty łączą się, tworząc aktywny kompleks enzymatyczny, który w obecności określonego substratu uwalnia jasną luminescencję, którą można zmierzyć.

Protocol

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

1. Przejściowa transfekcja plazmidów ekspresyjnych do komórek

  1. Zbierz przylegający HEK293T hodowli komórkowej przez trypsynizację i ponownie zawieś komórki w dedykowanym, kompletnym pożywce wzrostowej. Umieść komórki (2 x 104/100 μl/dołek) na przezroczystej, białej płytce 96-dołkowej. Dostosuj całkowitą liczbę studzienek, aby pomieścić wszystkie badane kombinacje i kontrole, w tym kontrpróby.
    nuta: Staraj się używać tylko wewnętrznych 60 dołków płyty, aby zminimalizować przesunięcia termiczne i uniknąć parowania przez noc. Zdecydowanie zaleca się stosowanie płytek pokrytych poli-D-lizyną, takich jak te wskazane w tabeli materiałów, w przeciwnym razie komórki mogą się odkleić podczas kolejnych etapów mycia.
  2. Hodować komórki przez noc w standardowych warunkach (37 °C, 5% CO2 ).
  3. Następnego dnia przetransfekuj komórki pożądanymi kombinacjami plazmidów ekspresyjnych.
    1. Rozcieńczyć plazmidy ekspresyjne w podłożu bez surowicy (patrz tabela materiałów) do 6,25 ng / μl dla każdego konstruktu.
    2. Dodać odczynnik do transfekcji na bazie lipidów w odpowiednim stosunku lipidów do DNA i inkubować zgodnie z instrukcjami producenta.
    3. Dodać 8 μl mieszaniny lipid-DNA do wyznaczonych studzienek. Wymieszaj zawartość talerza, delikatnie obracając. Powoduje to transfekcję obu konstruktów ekspresji przy 50 ng/basenie.
  4. Hodować komórki przez 20-24 godziny w standardowych warunkach (37 °C, 5% CO2 ).
    nuta: Hodowla komórek przez dłuższy czas może skutkować wyższymi poziomami ekspresji białek fuzyjnych, co może sprzyjać niespecyficznemu skojarzeniu między fragmentami.

2. Średnia wymiana

  1. Następnego dnia zastąp kondycjonowaną pożywkę 100 μl pożywki wolnej od surowicy w każdym dołku. Upewnij się, że ogniwa nie odczepiły się po wymianie nośnika.
    nuta: Ten krok należy wykonać 2-3 godziny przed dodaniem roztworu roboczego furimazyny. Odstawienie surowicy minimalizuje tło spowodowane autoluminescencją furimazyny.

3. Przygotowanie roztworu roboczego furimazyny

  1. Tuż przed pomiarem zmieszać 1 objętość furimazyny z 19 objętościami buforu rozcieńczającego (rozcieńczenie 20-krotne).
    nuta: Całkowita objętość roztworu roboczego furimazyny, który ma być przygotowany, zależy od liczby pojedynczych studzienek, które mają być analizowane (roztwór roboczy furimazyny dodaje się do pożywki do hodowli komórkowej w stosunku 1:5, dlatego do każdej studzienki uprzednio wypełnionej 100 μl pożywki wolnej od surowicy należy dodać 25 μl roztworu roboczego furimazyny).
  2. Dodać roztwór roboczy furimazyny do wyznaczonych studzienek (25 μl/studzienkę). Delikatnie wymieszaj płytkę ręcznie lub za pomocą wytrząsarki orbitalnej (np. 15 s przy 300-500 obr./min).

4. Pomiar luminescencji

  1. Włóż płytkę do czytnika mikropłytek luminescencyjnych.
    1. W przypadku doświadczeń, które mają być przeprowadzone w temperaturze 37 °C, należy zrównoważyć płytkę przez 10-15 minut we wskazanej temperaturze.
  2. Wybierz studnie, które mają zostać przeanalizowane.
  3. Odczyt luminescencji z czasem integracji wynoszącym 0,3 s. W razie potrzeby kontynuuj monitorowanie luminescencji przez maksymalnie 2 godziny.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Disclosures

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
Nie stwierdzono konfliktu interesów.

Materials

List of materials used in this article
NameCompanyCatalog NumberComments
0,25% roztwór trypsyny-EDTAHodowla komórkowa
Przylegająca linia komórkowa ssakówHodowla komórkowa
BioCoat Poli-D-Lizyna 96-dołkowa, biała/przezroczysta, mikropłytka z płaskim dnem poddawana działaniu TC, z pokrywkąCorning356651Wyroby z tworzyw sztucznych
Wirówka do hodowli komórkowychWyroby z tworzyw sztucznych
Suplementy hodowli komórkowych (inaktywowana termicznie płodowa surowica bydlęca, L-glutamina, penicylina, streptomycyna)Hodowla komórkowa
Inkubator CO2urządzenie
Plazmidy ekspresyjne kodujące białka będące przedmiotem zainteresowania, nieoznaczone fragmentami NanoBiTTest
Odczynnik do transfekcji FuGENE HDPreparat PromegaE2311Test
Czytnik mikropłytek GloMax Discover (lub inny czytnik mikropłytek luminescencyjnych)Preparat PromegaSilnik GM3000urządzenie
Pożywka wzrostowa dedykowana do zastosowanej linii komórkowejHodowla komórkowa
Materiały i odczynniki do standardowego klonowania molekularnego (bakterie, polimeraza termostabilna, enzymy restrykcyjne, ligaza DNA, materiały i odczynniki do oczyszczania kwasów nukleinowych)Test
System startowy NanoBiT MCSPreparat PromegaWersja 2014Zestaw ten zawiera wektory umożliwiające znakowanie badanych białek fragmentami NanoBiT w różnych orientacjach, a także plazmid kontrolny kodujący białko HaloTag połączone z SmBiT i parą plazmidów kontroli pozytywnej.
System oznaczania żywych komórek Nano-GloPreparat PromegaWersja 2011Zestaw ten zawiera furimazynę, która jest substratem umożliwiającym detekcję aktywności NanoLuc w żywych komórkach oraz dedykowany bufor do rozcieńczania.
Opti-MEM I Zredukowane podłoże w surowicy, bez czerwieni fenolowejGibco (firma Gibco)11058021Hodowla komórkowa
Wytrząsarka orbitalnaurządzenie
powiedział:

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article

Request Permission

Tags

Split Luciferase ComplementationProtein Protein InteractionsTransmembrane ProteinsLuciferase Enzyme FragmentsFurimazine SubstrateMicroplate ReaderHEK293T Cell CultureSerum Free MediumLuminescence MeasurementPlasmid Transfection

Related Articles