Subskrypcja JoVE jest wymagana do oglądania tego materiału. Zaloguj się lub rozpocznij bezpłatny okres próbny.

Artykuł metodologiczny

Wykrywanie poziomu nadtlenku wodoru w hodowanych neuronach za pomocą obrazowania fluorescencyjnego żywych komórek

596 wyświetleń

8 lipca 2025

W tym artykule

Streszczenie

Źródło: Terzi, A. et al., ROS Live Cell Imaging during Neuronal Development.J. Vis. Exp. (2021).

Ten film demonstruje technikę wykrywania poziomów nadtlenku wodoru w czasie rzeczywistym w komórkach zwojowych siatkówki za pomocą biosensora roGFP2-Orp1 i technik obrazowania żywych komórek. Przedstawia etapy związane z przygotowaniem komórek, obrazowaniem fluorescencyjnym i ilościowym oznaczaniem poziomów nadtlenku wodoru.

Protokół

1. Obrazowanie in vitro reaktywnych form tlenu (ROS) hodowanych neuronów komórek zwojowych siatkówki (RGC)

  1. W dniu obrazowania (zwykle 6-24 godziny po posiewie komórek) sprawdź komórki zwojowe siatkówki pod mikroskopem, aby potwierdzić wzrost aksonów RGC.
  2. W przypadku obrazowania żywych komórek przenieś szkiełka nakrywkowe z szalki hodowlanej do komory obrazowania żywych komórek.
  3. Skonfiguruj mikroskop do obrazowania. Użyj odwróconego mikroskopu wyposażonego w obiektyw z kontrastem różnicowym interferencyjnym (DIC), długoprzepustowy filtr czerwony OG590 i kamerę EM-CCD.
  4. Przed obrazowaniem należy zastąpić pożywkę do hodowli komórek danio pręgowanego surowicą i antybiotykami (ZFCM)(+)) pożywką do hodowli komórek danio pręgowanego bez surowicy i antybiotyków (ZFCM(-)).
  5. Po ustawieniu komórek z 10-krotnym obiektywem uzyskuj obrazy w 60-krotnym powiększeniu za pomocą obiektywu immersyjnego z olejkiem o wysokiej NA. Użyj dodatkowego powiększenia 1,5x.
  6. Najpierw uzyskaj obrazy DIC. Następnie należy zobrazować roGFP2-Orp1 za pomocą odpowiedniego zestawu filtrów. Wzbudz roGFP2-Orp1 z filtrami wzbudzenia 405/20 i 480/30 nm sekwencyjnie i uzyskaj obrazy za pomocą filtra emisyjnego 535/30 nm po przejściu światła emisyjnego przez zwierciadło dichroiczne 505DCXR.
  7. Po wykonaniu pierwszego zestawu obrazów należy wymienić pożywkę na pożywkę zawierającą różne roztwory do obróbki. Pożywkę należy wymieniać co 30 minut obrazowania, aby uniknąć zmian pH i osmolarności.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Oświadczenia

Nie stwierdzono konfliktu interesów.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
Naczynie hodowlane 35 mmSarstedtNumer katalogowy: 83-3900
Szkło nakrywkoweCorning2850-22
Jednorazowe szalki Petriego (100 x 15 mm)Firma VWRNumer katalogowy: 25384-094
Surowica bydlęca płoduThermoFisher Naukowy26140087
Mikroskop odwróconyNikonPakiet TE2000
LamininaThermoFisher Naukowy23017-015
Leibovitz's L-15 Medium z czerwienią fenolowąGibco/Fisher Scientific11-415-064
Leibovitz's L-15 Medium bez czerwieni fenolowejGibco/Fisher Scientific21-083-027
Penicylina/streptomycynaThermoFisher Naukowy15140122
Czerwień fenolowaSigma AldichZobacz materiał P0290
Poli-D-lizyna (PDL)Sigma AldichZobacz materiał P7280
Filtr Steritop 0,22 μmMiliporyS2GPT05RE
Chlorek wapnia dwuwodny Fisher Naukowy Zobacz materiał C79-500
glukoza Sigma Aldrich Zobacz materiał G7528
HEPESY Sigma Aldrich Zobacz materiał H4034
powiedział:

Tagi

Wykrywanie nadtlenku wodoruobrazowanie ywych kom rekbiosensor roGFP2 Orp1stos intensywno ci fluorescencjikom rki zwojowe siatk wkimikroskopia odwr conad ugo ci fal wzbudzeniapo ywka bezsurowiczautlenianie redukcjaprzygotowanie hodowli kom rkowych