-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

PL

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Calculus
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools
Biopharma

Language

pl_PL

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Calculus

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Neuroscience
Pomiary elektrofizjologiczne i analiza nocycepcji u niemowląt

Research Article

Pomiary elektrofizjologiczne i analiza nocycepcji u niemowląt

DOI: 10.3791/3118

December 20, 2011

L. Fabrizi*1, A. Worley*2, D. Patten1, S. Holdridge1, L. Cornelissen1, J. Meek3, S. Boyd2, R. Slater1,4

1Neuroscience, Physiology and Pharmacology,University College London, 2Department of Clinical Neurophysiology,Great Ormond Street Hospital, 3Elizabeth Garrett Anderson Obstetric Hospital,University College Hospital, 4Nuffield Department of Anaesthetics,University of Oxford

Cite Watch Download PDF Download Material list
AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

In This Article

Summary Abstract Introduction Protocol Representative Results Discussion Disclosures Acknowledgements Materials References Reprints and Permissions

Erratum Notice

Important: There has been an erratum issued for this article. View Erratum Notice

Retraction Notice

The article Assisted Selection of Biomarkers by Linear Discriminant Analysis Effect Size (LEfSe) in Microbiome Data (10.3791/61715) has been retracted by the journal upon the authors' request due to a conflict regarding the data and methodology. View Retraction Notice

Summary

Ocena i leczenie bólu u niemowląt jest trudne, ponieważ niemowlęta nie mogą werbalnie opowiedzieć o swoich doświadczeniach. W tym filmie opisujemy ilościowe metody elektrofizjologiczne i techniki analizy, które można wykorzystać do pomiaru reakcji na szkodliwe zdarzenia ze strony układu nerwowego niemowlęcia.

Abstract

Ból jest nieprzyjemnym doświadczeniem zmysłowym i emocjonalnym. Ponieważ niemowlęta nie mogą werbalnie opowiadać o swoich doświadczeniach, obecne metody oceny bólu opierają się na behawioralnych i fizjologicznych reakcjach organizmu, takich jak płacz, ruchy ciała lub zmiany w wyrazie twarzy. Chociaż pomiary te pokazują, że niemowlęta reagują na szkodliwą stymulację, są one ograniczone: opierają się na aktywacji podkorowych somatycznych i autonomicznych szlaków motorycznych, które mogą nie być niezawodnie powiązane z centralnym przetwarzaniem sensorycznym w mózgu. Wiedza o tym, jak ośrodkowy układ nerwowy reaguje na szkodliwe zdarzenia, może dostarczyć informacji o tym, jak informacje nocyceptywne i ból są przetwarzane u noworodków.

Procedura nakłuwania pięt używana do pobierania krwi od hospitalizowanych niemowląt oferuje unikalną okazję do badania bólu w okresie niemowlęcym. W tym filmie opisujemy, w jaki sposób elektroencefalografia (EEG) i elektromiografia (EMG) związane z tą procedurą mogą być wykorzystane do badania aktywności nocyceptywnej w mózgu i rdzeniu kręgowym.

To integracyjne podejście do pomiaru bólu niemowląt ma potencjał, aby utorować drogę dla skutecznego i czułego narzędzia do pomiarów klinicznych.

Protocol

Zanim jakiekolwiek badania będą mogły być przeprowadzone na temat etycznej aprobaty niemowląt i świadomej pisemnej zgody rodziców, należy uzyskać informację.

W tym badaniu uzyskano zgodę etyczną od Komitetu Etyki Szpitala Uniwersyteckiego i przed każdym zabiegiem uzyskano świadomą pisemną zgodę rodziców. Badanie to było zgodne ze standardami określonymi w Deklaracji Helsińskiej i wytycznymi Dobrej Praktyki Klinicznej.

1. Zbieranie danych - konfiguracja

  1. Umieść co najmniej 16 indywidualnych jednorazowych elektrod EEG Ag/AgCl na głowie niemowlęcia po przygotowaniu skóry zgodnie z systemem umieszczania 10-20 elektrod (ryc. 1A). Bardziej kompleksowe pokrycie można uzyskać za pomocą czepka EEG z wbudowanymi elektrodami. Użycie czepka EEG sprawia, że proces ten jest szybszy i mniej uciążliwy, zwłaszcza że elektrody są przygotowywane z żelu indukcyjnego przed założeniem czepka na głowę. Zastosowanie jednorazowych elektrod EEG wymaga więcej czasu i umiejętności, ale zazwyczaj skutkuje lepszym zapisem. Rozważ zmniejszenie liczby elektrod, jeśli dostęp do niemowlęcia jest ograniczony, ale zawsze używaj elektrod linii środkowej (Cz, CPz i FCz). Użyj FCz jako elektrody odniesienia do nagrania.
  2. Użyj pasty przewodzącej EEG, aby zoptymalizować elektryczne sprzężenie elektroda/skóra.
  3. Umieść elastyczną siatkę na elektrodach, aby utrzymać je na miejscu.
  4. Zwiąż ze sobą przewody elektrod, aby zminimalizować zakłócenia elektryczne.
  5. Umieść elektrodę masową na klatce piersiowej lub głowie.
  6. Umieść elektrody EMG na bicepsie udowym obu nóg po przygotowaniu skóry (ryc. 1B).
  7. Aby zarejestrować aktywność EKG, umieść 1 elektrody EKG na ciele po przygotowaniu skóry (jedna elektroda po lewej stronie klatki piersiowej, jedna po prawej i użyj tej samej elektrody masowej, co w przypadku EEG).
  8. Umieść przetwornik ruchu na brzuchu, aby zmierzyć oddech.
  9. Umieść sondę pulsoksymetru na stopie, aby zmierzyć nasycenie tlenem i tętno. Upewnij się, że sonda jest zamocowana na miejscu i że nagrywany jest ciągły sygnał bez przerw. Sondę pulsoksymetru należy umieścić na stopie, która jest przeciwległa do stopy, którą zamierzasz stymulować.
  10. Ustaw kamerę zamontowaną na statywie, aby wykadrować twarz niemowlęcia, aby można było rejestrować zmiany w wyrazie twarzy.
  11. Umieść diodę elektroluminescencyjną (LED) w ramie kamery. Dioda LED jest połączona z obwodem pomiaru czasu, dzięki czemu będzie migać, gdy prezentowana jest stymulacja w celu synchronizacji EEG, EMG i zapisu wideo.

2. Zbieranie danych - nagrywanie

  1. Rozpocznij nagrywanie wideo.
  2. Rozpocznij rejestrację pulsoksymetrii.
  3. Rozpocznij zapis EEG/EMG.
  4. Poczekaj, aż niemowlę się uspokoi.
  5. Trzymaj stopę tak, jakby wykonywał lancę piętową i ręcznie zaznaczaj zapisy EEG i EMG. Epoka ta zostanie wykorzystana do identyfikacji odcinka kontrolnego tła EEG i EMG.
  6. Zastosuj stymulację dotykową, lekko stukając w gumową zatyczkę, która jest przymocowana do ramienia młotka ścięgnistego, o powierzchnię pięty. Stymuluj stopę, która nie jest przymocowana do pulsoksymetru. Podczas stymulacji niemowlęcia zapis EEG/EMG i wideo muszą być oznaczone jako zdarzenie w celu określenia czasu w zapisie, w którym stymulacja miała miejsce. Stymulacja dotykowa może być oznaczona zdarzeniem poprzez przymocowanie głowicy impedancyjnej do młotka ścięgnistego, która elektronicznie łączy stymulator z urządzeniem rejestrującym. Nagranie wideo jest oznaczone zdarzeniem przez lampę błyskową LED. Można stosować powtarzające się dotknięcia, a bodziec można zastosować do różnych obszarów ciała, np. ramienia
  7. Zastosuj nieszkodliwą stymulację kontrolną, obracając lancet o 90 stopni i przykładając go do stopy tak, aby po zwolnieniu sprężynowego ostrza nie stykało się ze skórą. Zdarzenie to można zablokować w czasie za pomocą akcelerometru przymocowanego do górnej powierzchni lancy. Akcelerometr wykrywa wibracje, które pojawiają się po zwolnieniu ostrza.
  8. Wykonać klinicznie niezbędną lancę pięty zgodnie z praktyką kliniczną na oddziale noworodkowym. Poczekaj, aż aktywność EEG się ustabilizuje, zanim wykonasz lancę pięty. Blokada czasowa lancy piętowej może być wykonana w taki sam sposób, jak w przypadku stymulacji kontrolnej. Podążając za lancą na pięcie, nie ściskaj stopy przez co najmniej 30 sekund, aby upewnić się, że zarejestrowane odpowiedzi są spowodowane wyłącznie lancą.
  9. Upewnij się, że pobrano wymaganą ilość krwi i przygotuj próbki do analizy klinicznej.
  10. Zapisz dane i zatrzymaj wszystkie nagrania.
  11. Zapisz informacje demograficzne niemowlęcia oraz szczegóły eksperymentalne, a następnie wprowadź je do bazy danych w celu bezpiecznego przechowywania i wykorzystania w przyszłości.
  12. Powtórzyć tę procedurę w wymaganej próbce niemowląt. W tym przykładzie liczba niemowląt = 23.

3. Analiza danych EEG

  1. Twórz epoki EEG trwające 1,7 sekundy, które odpowiadają każdemu dotykowi, kontroli i stymulacji lancą oraz EEG w tle. Epoki powinny rozpoczynać się 0,6 sekundy przed każdym wydarzeniem. Liczba epok odpowiadających każdej modalności powinna być taka sama.
  2. Linia bazowa koryguje epoki, odejmując średni sygnał linii bazowej i filtrując je górnoprzepustowe przy 0,1 Hz.
  3. Rozważ epoki zarejestrowane w CPz lub Cz do dalszej analizy i wyklucz epoki, które zostały skażone artefaktem ruchu. Artefakt ruchu definiuje się jako zmianę amplitudy większą niż 50 μV w czasie krótszym niż 50 ms.
  4. Dopasuj ślady, aby skorygować fluktuacje opóźnienia między 50 a 300 ms po stymulacji i przeprowadź analizę głównych składowych (PCA) w tym przedziale czasu, aby zidentyfikować potencjał dotykowy (tj. aktywność EEG związaną ze stymulacją dotykową). Rozważ, że epoki są zmiennymi, a punkty czasowe obserwacjami. PCA rozkłada epoki EEG na podstawowe przebiegi, zwane głównymi składowymi (PC) i reprezentują systematyczne zmiany amplitudy sygnału w różnych punktach czasowych.
  5. Przeprowadź jednoczynnikową analizę wariancji (ANOVA) na wagach każdego z pierwszych 2 komputerów, aby określić, który komputer reprezentuje potencjał dotykowy. Będzie to komputer, którego waga była znacznie większa po stymulacji dotykowej w porównaniu z EEG w tle.
  6. Dopasuj ślady, aby skorygować fluktuacje opóźnienia między 300 a 700 ms po stymulacji i przeprowadź PCA w tym przedziale czasu.
  7. Uruchom jednokierunkową ANOVA na wagach każdego z pierwszych 2 komputerów, aby określić, który komputer reprezentuje potencjał specyficzny dla nocyceptywności. Będzie to komputer, którego waga była znacznie większa po szkodliwej stymulacji w porównaniu ze stymulacją dotykową i EEG w tle.

4. Analiza danych EMG

  1. Oblicz średnią kwadratową (RMS) sygnału EMG w ciągu pierwszych 1000 ms po stymulacji dla bodźców kontrolnych i lancy.
  2. Wykonaj test t na wartościach RMS, aby określić wycofanie odruchu rdzeniowego specyficznego dla nocyceptywności.

5. Reprezentatywne wyniki

Rysunek 1
Rysunek 1. (A) (i) Schemat i (ii) zdjęcie rozmieszczenia elektrod do zapisów EEG (zmodyfikowany międzynarodowy system umieszczania elektrod 10/20); (B) Schemat rozmieszczenia elektrod do zapisów EMG na mięśniu dwugłowym uda.

Rysunek 2
Rysunek 2. (A) Przykłady potencjału sensorycznego w Cz wywołanego dotykiem u 3 niemowląt; (B) przykłady potencjału specyficznego dla nocyceptywów w Cz wywołanego przez szkodliwą lancę u 3 niemowląt.

Rysunek 3
Rysunek 3. Zależność wag PC od modalności bodźca w Cz (średnia ± SEM). PC uzyskany między 50-300 ms po nadejściu bodźca reprezentuje potencjał dotykowy, a PC uzyskany między 300-700 ms po nadejściu bodźca reprezentuje potencjał specyficzny dla nocyceptywności. PC (pogrubione linie) są nakładane na średnie uzyskane dla wszystkich typów stymulacji (EEG w tle, dotyk, szkodliwa lanca) po wyrównaniu poszczególnych śladów w określonym przedziale czasu.

Rysunek 4
Rycina 4. (A) Przykład aktywności EMG u jednego niemowlęcia po (i) szkodliwym uderzeniu lancą na piętę i (ii) dotknięciu pięty. (B) Średnia (±SE) aktywność EMG od korzenia do średniej kwadratowej u niemowląt po szkodliwym bodźcu piętowym i nieszkodliwym dotyku.

Discussion

Autorzy oświadczają, że nie mają nic do ujawnienia.

Disclosures

Ocena i leczenie bólu u niemowląt jest trudne, ponieważ niemowlęta nie mogą werbalnie opowiedzieć o swoich doświadczeniach. W tym filmie opisujemy ilościowe metody elektrofizjologiczne i techniki analizy, które można wykorzystać do pomiaru reakcji na szkodliwe zdarzenia ze strony układu nerwowego niemowlęcia.

Acknowledgements

Ta praca została sfinansowana przez Wellcome Trust.

References

  1. Fitzgerald, M., Walker, S. M. Infant pain management: a developmental neurobiological approach. Nat. Clin. Pract. Neurol. 5 (1), 35-35 (2009).
  2. Slater, R. Oral sucrose as an analgesic drug for procedural pain in newborn infants: a randomised controlled trial. Lancet. 376 (9748), 1225-1225 (2010).
  3. Slater, R. Evoked potentials generated by noxious stimulation in the human infant brain. Eur. J. Pain. 14 (3), 321-321 (2010).
  4. Slater, R. Premature infants display increased noxious-evoked neuronal activity in the brain compared to healthy age-matched term-born infants. Neuroimage. 52 (2), 583-583 (2010).

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article
Request Permission

Play Video

Pomiary elektrofizjologiczne i analiza nocycepcji u niemowląt
JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • JoVE Newsroom
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code