Subskrypcja JoVE jest wymagana do oglądania tego materiału. Zaloguj się lub rozpocznij bezpłatny okres próbny.

Artykuł metodologiczny

Rejestrowanie aktywności neuronalnej u swobodnie poruszających się myszy za pomocą fotometrii światłowodowej

2.2K wyświetleń

⸱

8 lipca 2025

W tym artykule

Streszczenie

Źródło: Martianova, E., et al. Fotometria wielowłóknowa do rejestrowania aktywności neuronalnej u swobodnie poruszających się zwierząt. J. Vis. Exp. (2019).

Ten film demonstruje metodę rejestrowania aktywności neuronalnej w swobodnie poruszającej się myszy za pomocą fotometrii światłowodowej. W tej metodzie neurony w określonym regionie mózgu wyrażają genetycznie zakodowany wskaźnik wapnia. Bodziec jest stosowany do tego obszaru mózgu, a zależna od bodźca zmiana fluorescencji jest mierzona w celu zidentyfikowania aktywności neuronalnej.

Protokół

Wszystkie procedury dotyczące modeli zwierzęcych zostały sprawdzone przez lokalny instytucjonalny komitet opieki nad zwierzętami oraz weterynaryjną komisję rewizyjną JoVE.

1. Wyrównanie ścieżki optycznej między kamerą CMOS (komplementarny półprzewodnik z tlenkiem metalu) a pojedynczym lub rozgałęzionym krosowym

  1. Poluzuj wszystkie na 5-osiowym translatorze (Rysunek 1B).
  2. Przykręć krosowy (Rysunek 1B) do adaptera [SMA (subminiatura A) lub FC (złącze światłowodowe)] przymocowanego do translatora 5-osiowego.
  3. Włącz lampę wzbudzenia 470 nm (rysunek 1B) przy niskiej mocy (100 μW) i umieść końcówkę patchcordu skierowaną w stronę autofluorescencyjnego szkiełka z tworzywa sztucznego. Nie ma to żadnego wpływu na przyszłe nagrania, ale służy wyłącznie do wizualizacji procesu wyrównywania.
  4. Nagrywanie z kamery CMOS (Rysunek 1B) w trybie na żywo. Zwiększ wzmocnienie lub dostosuj tabelę przeglądową (LUT), aż obraz nie będzie całkowicie. Chodzi o to, aby móc zobaczyć obraz w centralnym punkcie obiektywu (rysunek 1B).
  5. Przesuń 5-osiowy translator w kierunku obiektywu, upewniając się, że światło 470 nm jest wyśrodkowane na światłowodzie na końcu SMA lub FC krosowego, aż obraz będzie można rozwiązać w aparacie.
  6. Dostosuj osie X i Y, aż obraz zostanie wyśrodkowany i dobrze rozdzielony.
  7. Wizualizuj światło emitowane przez końcówkę tulejki krosowego. Powinien wyglądać jak okrąg izotropowy. Jeśli używany jest rozgałęziony krosowy, ilość światła emitowanego na końcach tulejki każdego krosowego powinna być podobna. Jeśli okrąg nie jest izotropowy lub emitowane światło jest nierówne, ustaw 5-osiowy translator w osi X-Y.

2. Ustawienie ROI wokół światłowodów do pomiaru średniej intensywności fluorescencji

  1. Włącz wszystkie światła wzbudzenia, aby lepiej uwidocznić włókna. Dostosuj wzmocnienie kamery tak, aby żadne piksele nie były nasycone i aby obecny był wyraźny obraz włókien.
  2. Nagraj na żywo lub zrób wstępny obraz.
  3. Narysuj ROI wokół włókien i zachowaj je do pomiaru średnich wartości intensywności podczas nagrań (rysunek 1A).
  4. W przypadku nagrań z wieloma światłowodami przetestuj niezależność sygnałów.
    1. Zapis na żywo ze wszystkich włókien.
    2. Skieruj jedno włókno w stronę źródła światła i postukaj palcem. Duże wahania powinny występować wyłącznie w tym kanale (dopuszczalny przeciek 1:1000).
    3. Jeśli sygnały nie są niezależne, przerysuj bardziej konserwatywne ROI i powtórz test niezależności.
  5. Aby oznaczyć i śledzić, który zwrot z inwestycji odpowiada któremu włóknu, kolorowej taśmie lub lakierowi do paznokci można nałożyć na koniec włókien. Zrób zdjęcie przed rozpoczęciem eksperymentu jako dodatkowe przypomnienie.

3. Konfiguracja areny nagrywania

  1. Zawieś krosowy nad areną za pomocą stojaków, clamps lub uchwytów.
  2. Upewnij się, że zwierzę może swobodnie poruszać się po całej arenie, nieskrępowane długością włókna.
  3. Jeśli używana jest skrzynka operacyjna lub otwarte pole, upewnij się, że krosowy może dotrzeć do zwierzęcia przy minimalnym zginaniu się. Jeśli wymaga to szturchnięcia nosa, upewnij się, że nad głową jest wystarczająco dużo miejsca, aby zapobiec zginaniu się włókna. Unikaj nadmiernego zginania lub skręcania krosowego.

4. Nagrania in vivo

  1. Sprawdź wzrokowo dystalny koniec włókien krosowego na oko i za pomocą mikroskopu z miniwłókien. Jeśli powierzchnia włókien jest porysowana, należy je ponownie wypolerować za pomocą folii do polerowania/docierania włókien o drobnej ziarnistości (1 μm i 0,3 μm).
  2. Wyczyść dystalne końce krosowego za pomocą 70% etanolu i aplikatora z bawełnianą końcówką.
  3. Wyczyść kaniule światłowodowe za pomocą 70% etanolu i aplikatora z bawełnianą końcówką.
  4. Podłącz końcówkę tulejki krosowego do wszczepionego włókna za pomocą ceramicznej dzielonej tulei pokrytej czarną rurką termokurczliwą. Upewnij się, że tuleja jest szczelna podczas połączenia. W przeciwnym razie użyj nowego rękawa.
    nuta: Jeśli między skuwką krosowego a implantem jest jakakolwiek przestrzeń, nastąpi duża utrata sygnału, a nagrania nie będą działać.
  5. Pozwól zwierzęciu dojść do siebie przez kilka minut przed rozpoczęciem testów behawioralnych.
  6. Rozpocznij nagrywanie sygnału optycznego i przeprowadź eksperyment.
  7. Podczas nagrywania uważnie obserwuj ślad na żywo, aby zapewnić jakość nagrań. Oczekuje się, że sygnał gwałtownie spadnie w funkcji czasu w ciągu pierwszych 2 minut nagrywania. Efekt ten jest spowodowany zanikiem ciepła diody LED, w którym wzrost ciepła zwiększa rezystancję elementu optycznego.
  8. Jeśli nastąpi skok w sygnale, który wykracza poza kinetykę włączania/wyłączania GCaMP, często oznacza to, że tuleja nie jest wystarczająco szczelna, a przestrzeń między patchcordem a implantem zmienia się. W takim przypadku przerwij eksperyment i ponownie podłącz zwierzę za pomocą nowego rękawa.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Wyniki

figure-results-1
Rysunek 1: Schemat fotometrii światłowodowej. (A) Światło wzbudzające z dwóch diod LED (410 nm i 470 nm) przechodzi przez szereg filtrów i zwierciadeł dichroicznych i wytwarza punkt wzbudzenia w odległości roboczej obiektywu 20x. Światło przechodzi przez pojedynczy krosowy lub wiązkę włókien (w przypadku nagrań wielu miejsc) podłączonych do wszczepionych kaniuli. Emitowana fluorescencja jest zbieran...

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Oświadczenia

Nie stwierdzono konfliktu interesów.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
Śruba z walcowym 1/4"-20 ze stali nierdzewnej, długość 1"Tholabs powiedział:SH25S100
Śruba z walcowym 1/4"-20 ze stali nierdzewnej, długość 1/2"Tholabs powiedział:SH25S050
Śruba z walcowym 1/4"-20 ze stali nierdzewnej, długość 3/8"Tholabs powiedział:SH25S038
1000 μm, 0,50 Na, SMA-SMA
światłowodowy
Tholabs powiedział:Zobacz materiał M59L01
Słupek optyczny 12,7 mmTholabs powiedział:TR30/M
Uchwyt na słupek cokołu 12,7 mmTholabs powiedział:PH20EM
Zasilacz 15 V, 2,4 A z
Złącze Jack 3,5 mm do T-Cube
Tholabs powiedział:Zobacz materiał KPS101
Obiektyw 20xTholabs powiedział:Przekaźnik RMS20X
Kostka klatkowa 30 mm z mocowaniem filtra dichroicznegoTholabs powiedział:CM1-DCH/M
Dioda LED 405 nmSoczewki doryckieCLED_405
Filtr pasmowoprzepustowy 410 nmTholabs powiedział:Zobacz materiał FB410-10
465 nm. LedSoczewki doryckieCLED_465
Filtr pasmowo-przepustowy 470 nmTholabs powiedział:Zobacz materiał FB470-10
Filtr pasmowo-przepustowy 560 nmSemrockZobacz materiał FF01-560/14-25
Dioda LED 560 nmSoczewki doryckieCLED_560
5-osiowy montaż kinematycznyTholabs powiedział:Zobacz materiał K5X1
Dublet achromatycznyTholabs powiedział:AC254-035-A-ML
Adapter do kolimatora 405Tholabs powiedział:AD11F
Adapter do kolimatora regulowanegoTholabs powiedział:AD127-F
Aluminiowa płyta stykowaTholabs powiedział:Zobacz materiał MB1824
Widelec mocującyTholabs powiedział:Zobacz materiał CF125
Łącznik sześciennyTholabs powiedział:CM1-CC
Podwójny 493/574 dichroicznySemrockFF493/574-DI01-25x36
Filtr emisji do GCaMP6SemrockFF01-535/22-25
Obudowa z czarnymi panelami z płyty pilśniowejTholabs powiedział:XE25C9
Zaślepka z gwintem zewnętrznym SM1 do obróbki skrawaniemTholabs powiedział:SM1CP2M
Szybkowymienny uchwyt na filtr rurki obiektywu SM1Tholabs powiedział:Zobacz materiał SM1QP
Stały kolimator dla światła 405 nmTholabs powiedział:F671SMA-405
Stały kolimator dla światła 470 i 560 nmTholabs powiedział:F240SMA-532
Zielony filtr emisjiSemrockZobacz materiał FF01-520/35-25W rozdzielaczu wiązki światła
Kamera CMOS USB 3.0 o wysokiej rozdzielczościTholabs powiedział:DCC3260M
Rozdzielacz wiązki światłaNeurofotometriarozszczepiać
Lustro dichroiczne długoprzepustowe, odcięcie 425 nmTholabs powiedział:DMLP425R
Lustro dichroiczne długoprzepustowe, odcięcie 495 nmSemrockFF495-Di03
Cement dentystyczny MetabondC&B
Przewód M8 - M8Soczewki doryckieCable_M8-M8
Kaniule światłowodoweSoczewki doryckieNależy określić, że będą one wykorzystywane do eksperymentów fotometrycznych wymagających niskiej autofluorescencji
Patchcordy światłowodoweSoczewki doryckieNależy określić, że będą one wykorzystywane do eksperymentów fotometrycznych wymagających niskiej autofluorescencji
Czerwony filtr emisjiSemrockFF01-600/37-25W rozdzielaczu wiązki światła
Podnośnik laboratoryjny T7LabJack
Sterownik LED T-cubeTholabs powiedział:Dioda LEDD1B
USB 3.0 I/O, Hirose 25, do DCC3240Tholabs powiedział:KABINA-DCU-T3
spalin spalin

Tagi

Rejestracja aktywności neuronalnejgenetycznie kodowany wskaźnik wapniaboczna część podwzgórzaboczna część jąder prążkowiastychbodziec w postaci podmuchu powietrzapomiar fluorescencjikaniula z włóknem optycznymobrazowanie wapniowe