Artykuł metodologiczny

Instalacja okien optycznych w mózgu myszy transgenicznych w celu zobrazowania aktywności neuronalnej

1.2K wyświetleń

8 lipca 2025

W tym artykule

Streszczenie

Źródło: Lin, X., et al. Obrazowanie aktywności neuronalnej w pierwotnej korze somatosensorycznej przy użyciu myszy transgenicznych Thy1-GCaMP6s. J. Vis. Exp. (2019).

Ten film demonstruje rejestrację aktywności neuronalnej mózgu przez okno optyczne u myszy transgenicznych. Myszy wyrażają białko fluorescencyjne, które umożliwia wykrywanie aktywności neuronalnej. Niewielka część czaszki jest ostrożnie usuwana w celu zainstalowania okna optycznego, a następnie czaszka jest pokrywana czarnym cementem, aby zablokować światło przed obrazowaniem.

Protokół

Wszystkie procedury dotyczące modeli zwierzęcych zostały sprawdzone przez lokalny instytucjonalny komitet opieki nad zwierzętami oraz weterynaryjną komisję rewizyjną JoVE.

1. Przygotowanie zwierzęcia do obrazowania

  1. Umieść sterylną gazę, waciki i autoklawowane narzędzia chirurgiczne w obszarze operacyjnym. Włącz sterylizator Micro Bead do sterylizacji międzyoperacyjnej narzędzi chirurgicznych.
  2. Znieczulić mysz (samiec lub samica, 1,5–2,5 miesiąca, 20–25 g) przez dootrzewnowe wstrzyknięcie (i.p.) mieszaniny ketaminy (17,2 mg/ml), ksylazyny (0,475 mg/ml) i acepromazyny (0,238 mg/ml) (6 μl/g masy ciała). Poczekaj, aż zostanie osiągnięta odpowiednia głębokość znieczulenia, gdy zwierzę przestanie reagować na bodziec szczypania palca u nogi i nie będzie miało odruchu rogówkowego. Podczas zabiegu należy podać dawkę przypominającą 1/3 pierwotnej dawki koktajlu znieczulającego w razie potrzeby do utrzymania pierwotnego stanu znieczulenia.
  3. Buprenorfinę należy wstrzykiwać podskórnie (s.c.; 0,05–0,10 mg/kg) jako środek przeciwbólowy przed zabiegiem chirurgicznym. Nałóż maść ochronną na oczy zwierzęcia, aby zapobiec wysuszeniu rogówki i powstawaniu zaćmy.
  4. Umieść transgeniczną mysz GCaMP6s na poduszce grzewczej, aby zapobiec hipotermii i przykryj ją sterylną obłożeniem chirurgiczną. Ustabilizuj głowę zwierzęcia za pomocą adaptera do trzymania głowy dla myszy.
  5. Ogol głowę na większości skóry głowy za pomocą żyletki z dwoma krawędziami. Oczyść obszar operacyjny sterylnym wacikiem nasączonym alkoholem, a następnie roztworem jodu powidonu.

2. Przygotowanie przewlekłego okna czaszkowego

  1. Wykonaj prostokątne cięcie skóry głowy (2 mm x 3 mm) nożyczkami po jednej (prawej) stronie czaszki. Odsuń skórę na bok bawełnianym wacikiem, aby utworzyć obszar ekspozycji o średnicy >3 mm (Rysunek 1A). Usuń tkankę łączną przyczepioną do czaszki, delikatnie zeskrobując czaszkę ostrzem mikrochirurgicznym (Ostrze skalpela #10; Rysunek 1C).
  2. Zaznacz obszar S1, delikatnie rysując okrąg (o średnicy 3 mm, współrzędna środkowa: -1,5 mm od bregmy i 2,5 mm od linii środkowej) na czaszce za pomocą wiertła dentystycznego (ryc. 2B).
  3. Wykonaj tę samą procedurę na lewej czaszce (ryc. 2B).
  4. Nałóż cienką warstwę kleju Cyjanoakrylan Super Glue na kość, aby zapewnić bazę do aplikacji cementu dentystycznego.
  5. Pod mikroskopem preparacyjnym rozcieńczyć okrągły rowek w czaszce wokół obszaru S1 za pomocą szybkoobrotowego mikrowiertła (ryc. 1D). Celem jest stworzenie gładkiej krawędzi do umieszczenia na nim okna optycznego.
  6. Wielokrotnie nakładaj sztuczny płyn mózgowo-rdzeniowy (ACSF, temperatura pokojowa) na czaszkę okresowo podczas procesu rozrzedzania, aby ułatwić wiercenie i rozproszyć ciepło. Wykonuj wiercenie z przerwami, aby uniknąć przegrzania spowodowanego tarciem. Odessać resztki kości za pomocą domowej linii próżniowej lub pompy próżniowej.
  7. Po wywierceniu około 2/3 głębokości kości, powoli i ostrożnie rozrzedź pozostałą 1/3 kości, aż okrągły kawałek czaszki (płat kostny) zostanie całkowicie wolny od otaczającej czaszki.
  8. Powoli i ostrożnie usuń okrągły płat kostny za pomocą pary kleszczy # 5/45 i odsłoń oponę twardą (ryc. 2C; Rysunek 1E).
  9. Utrzymuj odsłonięty obszar mózgu wilgotny za pomocą ACSF (ryc. 1E). Unikaj uszkodzeń naczyń krwionośnych, ponieważ krwotok zmieni przepływ krwi w mózgu, przyspieszy obrzęk mózgu i poważnie pogorszy jakość obrazowania.
  10. Wykonaj tę samą procedurę po lewej (przeciwległej) stronie czaszki.
  11. Do montażu okienka optycznego użyj kleju optycznego, aby skleić i utwardzić między warstwami szkła nakrywkowego pojedynczo. W razie potrzeby ogrzej okienko optyczne (50 °C przez 12 godzin) w inkubatorze, aby wzmocnić wiązanie klejowe. Okienko optyczne składa się z 2 części: górna część zawiera pojedyncze okrągłe szkło nakrywkowe o średnicy 5 mm, a dolna część zawiera 1–3 okrągłe szkła nakrywkowe o średnicy 3 mm (rysunek 2D).
  12. Przechowuj okienko optyczne w etanolu (70%, obj./obj.) i przed użyciem spłucz je sterylnym roztworem soli fizjologicznej. Przed montażem okna optycznego należy sprawdzić okienko optyczne pod kątem niedoskonałości, w tym nieprawidłowej ilości kleju optycznego lub niedokładnego wyrównania pod stereoskopem.
  13. Zamontuj okienko optyczne nad obszarem kraniotomii (ryc. 2D). Górna część okna optycznego spoczywa na czaszce, a dolna część okienka optycznego mieści się w otworze kraniotomicznym i spoczywa na oponie twardej w obecności płynu mózgowo-rdzeniowego (ryc. 2D, E).
  14. Uszczelnij górną część krawędzi okna optycznego do czaszki za pomocą kleju Cyjanoakrylan Super Glue (Rysunek 2F; Rysunek 1F).
  15. Gdy klej Cyanoacrylate Super Glue wyschnie, nałóż cement dentystyczny (Dentsply), aby pokryć krawędź szkła. Nałóż cement dentystyczny na wszystkie odsłonięte brzegi czaszki i rany, aby zablokować światło (ryc. 2G-H; Rysunek 1B).
  16. Wykonaj tę samą procedurę po lewej stronie.
  17. Pozwól zwierzęciu dojść do siebie na poduszce grzewczej i wróć do klatki domowej w celu odzyskania zdrowia pod odpowiednim nadzorem. Zapewnij mokrą karmę, aby ułatwić żucie i nawodnienie. W celu zmniejszenia dolegliwości bólowych należy podawać buprenorfinę s.c. (0,05–2,0 mg/kg) co 8–12 godzin po urazie przez 2 dni. Pozwól myszy dojść do siebie przez dodatkowe 7–10 dni przed obrazowaniem.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Wyniki

figure-results-1
Rysunek 1. Tworzenie obustronnych okien na czaszce. (A) Obraz fotograficzny pokazuje 2 czaszkowe okna optyczne po każdej stronie czaszki pokrywające obszar S1. (B) Duże powiększenie pudełkowego obszaru obrazu (A) pokazujące obustronne okna optyczne odsłaniające leżącą pod spodem oponę twardą i naczynia krwionośne. Podziałka = 680 μm. (C) Odsłonięta czaszka. (D) Stworzenie okrągłego rowka, w którym w...

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Oświadczenia

Nie stwierdzono konfliktu interesów.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
C57BL/6J-TG(Thy1-GCaMP6s)GP4.3Dkim/JJacksonNumer katalogowy: 24275Mogą to być dowolne szczepy wytwarzane przez genetycznie kodowany wskaźnik neuronalny i efektor wyrażający zielony fluorescencyjny wskaźnik wapnia, GCaMP, w podzbiorach neuronów pobudzających w korze.
Klasa B6. Cg-Tg(Thy1-EGFP)OJrs/GfngJ.JacksonNumer katalogowy: 7919Mogą to być dowolne szczepy wyrażające EGFP w podzbiorach neuronów w określonych populacjach kory mózgowej, zapewniając jasne, żywotne zabarwienie podobne do Golgiego.
Kleszcze Dumont nr 5, standardowe, DumoxelNarzędzia naukoweNumer katalogowy 11251-30Może to być dowolna marka.
Kleszcze Dumont nr 5SFNarzędzia naukoweNumer katalogowy: 11252-00Może to być dowolna marka.
Sterylizator mikro kulekPołudniowe wyroby laboratoryjneZobacz materiał B1201Może to być dowolna marka.
Adapter do trzymania głowicy SG-4N firmy HarishigeBadania TritechZobacz materiał SG-4NMoże to być dowolna marka.
Idealny kompletny zestaw do mikrowiertełAparatura HarvardaNr kat. 72-6065Może to być dowolna marka.
Frezy do mikrowiertłaNarzędzia naukoweRocznik 19007-05Może to być dowolna marka.
Okrągła szklana osłona, 3 mmNauki biologiczne Uniwersytetu HarvardaW4 64-0720Może to być dowolna marka.
Okrągła szklana osłona, 5 mmNauki biologiczne Uniwersytetu HarvardaW4 64-0700Może to być dowolna marka.
Klej optyczny NorlandProdukty NorlandZobacz materiał 7106Może to być dowolna marka.
Klej w płynie LoctiteKamieniarz WBLOC1647358Może to być dowolna marka.
Zestaw do cementu do uchwytów, proszek i rozpuszczalnikZębyNumer katalogowy: 675570Może to być dowolna marka. Wymieszaj 5 części białego proszku cementu dentystycznego (Grip Cement) z jedną częścią czarnej farby proszkowej Tempera (aby chronić przed światłem; niektórzy użytkownicy wolą proporcje 10:1).
Pianka żelowaMoore Medical (Szpital Medyczny)Numer katalogowy 2928Może to być dowolna marka.
Nożyczki do mikro preparacjiRoboz powiedział:Złącze RS-5841Może to być dowolna marka.
Sztuczny płyn mózgowo-rdzeniowy (ASF)--ACSF zawiera 125 mM NaCl, 4,5 mM KCl, 26 mM NaHCO3, 1,25 mM NaH2PO4, 2 mM CaCl2, 1 mM MgCl2 i 20 mM glukozy. Przelej ACSF tlenem (95% tlenu, 5% dwutlenku węgla) i dostosuj pH do 7,4. Przygotuj świeży roztwór ACSF przed każdym eksperymentem.
TGL TGL

Przedruki i uprawnienia

Poproś o pozwolenie na ponowne wykorzystanie tekstu lub ilustracji tego artykułu JoVE

Poproś o pozwolenie

Tagi

Instalacja okna optycznegoobrazowanie aktywno ci neuronalnejcie czanie czaszkiprocedura kraniotomiiczarny cement dentystycznymikroskopia dwufotonowamyszy Thy1 GCaMP6sdetekcja bia ek fluorescencyjnychadapter do stabilizacji g owy

Powiązane artykuły