Wszystkie procedury dotyczące próbek zwierzęcych zostały sprawdzone i zatwierdzone przez odpowiednią komisję ds. oceny etycznej zwierząt.
1. Obrazowanie wapnia
- Szybko przepłukać kultury (5 - 7 dni in vitro) normalnym HBS, a następnie załadować kultury 5 μM wskaźnikiem Fluo-4 Ca2+ (ester AM) i 0,02% Pluronic F-127 w HBS (2 ml) przez 30 minut w temperaturze 37 °C i 5% CO2 .
- Wypłukać roztwór Fluo-4 HBS (3 razy/5 min). Umieścić kultury z powrotem w inkubatorze (37 °C / 5% CO2 ) przez co najmniej 30 minut.
- Utrzymuj hodowle (5 - 7 dni in vitro) w komorze obrazowania i zamontuj komorę na mikroskopie konfokalnym z wirującym dyskiem. Ciągły perfuzja (1 ml/min) z koktajlem HBS w temperaturze pokojowej.
- Zbieraj obrazy fluorescencyjne Fluo-4 projekcji aksonalnych z mikrowarstw vHipp za pomocą obiektywu planapochromatycznego (60X woda z 1,4 NA, wzbudzenie 488 nm, emisja 530 nm) i kamery CCD.
- Zbierz wyjściowe obrazy fluorescencji Fluo-4 (co 10 sekund przez 2 minuty) jako kontrolę przed nikotyną. Aplikować nikotynę (1 μM) przez szybką perfuzję (2 ml/min) przez 1 minutę, a następnie zmyć nikotynę koktajlem HBS. Kontynuuj robienie zdjęć poklatkowych przed, w trakcie i po aplikacji nikotyny co 10 sekund przez 30 minut.
- Zapisz wszystkie klatki surowych obrazów fluorescencji fluo-4 i wyeksportuj je jako serię obrazów TIFF do dalszej analizy.
- Zbierz zintegrowaną intensywność fluorescencji fluo-4 wzdłuż aksonów vHipp przed i po aplikacji nikotyny.
- Znormalizuj zintegrowaną intensywność fluorescencji za pomocą następującego równania: ΔF/F0 = (F-F0)/F0, gdzie F0 to skorygowana w tle zintegrowana intensywność fluorescencji sprzed nikotyny, a F to zintegrowana intensywność fluorescencji wzdłuż aksonów vHipp w każdym punkcie czasowym po zastosowaniu nikotyny. Analizuj i wykreślaj znormalizowaną zintegrowaną intensywność fluorescencji.