Subskrypcja JoVE jest wymagana do oglądania tego materiału. Zaloguj się lub rozpocznij bezpłatny okres próbny.

Artykuł metodologiczny

Obrazowanie sygnalizacji wapniowej indukowanej nikotyną wzdłuż brzusznych aksonów hipokampa w kokulturach synaptycznych

770 wyświetleń

⸱

8 lipca 2025

W tym artykule

Streszczenie

Źródło: Zhong, C., et al., Obrazowanie na żywo sygnalizacji wapniowej indukowanej nikotyną i uwalniania neuroprzekaźników wzdłuż brzusznych aksonów hipokampa. J. Vis. Exp. (2015)

Ten film pokazuje, jak aktywacja nikotynowych receptorów acetylocholiny w brzusznym hipokampie myszy za pośrednictwem nikotyny powoduje trwałą sygnalizację wapniową wzdłuż aksonów.

Protokół

Wszystkie procedury dotyczące próbek zwierzęcych zostały sprawdzone i zatwierdzone przez odpowiednią komisję ds. oceny etycznej zwierząt.

1. Obrazowanie wapnia

  1. Szybko przepłukać kultury (5 - 7 dni in vitro) normalnym HBS, a następnie załadować kultury 5 μM wskaźnikiem Fluo-4 Ca2+ (ester AM) i 0,02% Pluronic F-127 w HBS (2 ml) przez 30 minut w temperaturze 37 °C i 5% CO2 .
  2. Wypłukać roztwór Fluo-4 HBS (3 razy/5 min). Umieścić kultury z powrotem w inkubatorze (37 °C / 5% CO2 ) przez co najmniej 30 minut.
  3. Utrzymuj hodowle (5 - 7 dni in vitro) w komorze obrazowania i zamontuj komorę na mikroskopie konfokalnym z wirującym dyskiem. Ciągły perfuzja (1 ml/min) z koktajlem HBS w temperaturze pokojowej.
  4. Zbieraj obrazy fluorescencyjne Fluo-4 projekcji aksonalnych z mikrowarstw vHipp za pomocą obiektywu planapochromatycznego (60X woda z 1,4 NA, wzbudzenie 488 nm, emisja 530 nm) i kamery CCD.
  5. Zbierz wyjściowe obrazy fluorescencji Fluo-4 (co 10 sekund przez 2 minuty) jako kontrolę przed nikotyną. Aplikować nikotynę (1 μM) przez szybką perfuzję (2 ml/min) przez 1 minutę, a następnie zmyć nikotynę koktajlem HBS. Kontynuuj robienie zdjęć poklatkowych przed, w trakcie i po aplikacji nikotyny co 10 sekund przez 30 minut.
  6. Zapisz wszystkie klatki surowych obrazów fluorescencji fluo-4 i wyeksportuj je jako serię obrazów TIFF do dalszej analizy.
  7. Zbierz zintegrowaną intensywność fluorescencji fluo-4 wzdłuż aksonów vHipp przed i po aplikacji nikotyny.
  8. Znormalizuj zintegrowaną intensywność fluorescencji za pomocą następującego równania: ΔF/F0 = (F-F0)/F0, gdzie F0 to skorygowana w tle zintegrowana intensywność fluorescencji sprzed nikotyny, a F to zintegrowana intensywność fluorescencji wzdłuż aksonów vHipp w każdym punkcie czasowym po zastosowaniu nikotyny. Analizuj i wykreślaj znormalizowaną zintegrowaną intensywność fluorescencji.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Oświadczenia

Nie stwierdzono konfliktu interesów.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
Koktajl HBS do obrazowania na żywo pH=7,3
Zawartość NaClSigmaNumer katalogowy S9888135 mM
KclSigmaZobacz materiał P93335 mM
Chlorek magnezuSigmaZobacz materiał M82661 mM
Chlorek wapniaSigmaZobacz materiał C10162 mM
HEPESYSigmaH337510 mM
glukozaSigmaG035050010 mM
TetrodotoksynaTocris powiedział:Numer katalogowy 10782 μM
Bicuculline (Bicuculline)Tocris powiedział:131 Rozdział 13110 μM
D-AP-5Tocris powiedział:10550 μM
Sieć CNQXTocris powiedział:104520 μM
LY341495Tocris powiedział:120910 μM
powiedział: powiedział: powiedział: Rozdział szt. SZT.

Przeglądaj więcej artykułów

Sygnalizacja wapniowa indukowana nikotynąmikroskopia konfokalnabarwnik wskaźnikowy jonów wapnianikotynowe receptory acetylocholinoweobrazowanie poklatkowenapływ wapniauwalnianie neuroprzekaźnikówskrawki hipokampa