Wszystkie procedury dotyczące próbek zwierzęcych zostały sprawdzone i zatwierdzone przez odpowiednią komisję ds. oceny etycznej zwierząt.
1. Konfiguracja i rejestracja elektrofizjologii
- Umieść plasterek klinowy w komorze nagrywającej i zabezpiecz plasterek harfą lub systemem stabilizującym. Perfaktorować tkankę w sposób ciągły z szybkością 7-10 ml/min ciepłym (35 °C) ACSF z bąbelkami karbogenu.
- Zidentyfikuj genetycznie znakowane przyśrodkowe neurony MOC olivocochlear w jądrze brzusznym ciała trapezoidalnego VNTB za pomocą epifluorescencji z filtrami emisyjnymi 561 nm do nagrań typu patch-clamp. Odwróć plasterek, jeśli nie ma komórek, które można potencjalnie załatać.
- Korzystając z optyki DIC, skup się na korzeniu nerwu słuchowego na grubej stronie plastra i użyj mikromanipulatora, aby przesunąć bipolarną elektrodę stymulującą wolfram w dół do korzenia nerwu słuchowego i delikatnie w powierzchnię tkanki.
nuta: Elektrody ssące były używane w eksperymentach stymulacji nerwów słuchowych w innych laboratoriach. Elektrody ze szkła Theta lub metody stymulacji optycznej mogą być stosowane, jeśli ma to zastosowanie do innych specyficznych preparatów.
- Przesuń pole widzenia z powrotem do VNTB, aby wybrać neuron MOC, który ma być celem elektrofizjologii klamry krosowej.
- Napełnij pipetę rejestrującą odpowiednim roztworem wewnętrznym dla proponowanego eksperymentu.
- Łatka i zapis z neuronu MOC w konfiguracji całej komórki. W razie potrzeby skompensuj pojemność membrany i rezystancję szeregową.
- Dostosuj amplitudę stymulacji elektrycznej korzenia nerwu słuchowego, aby uzyskać spójne zdarzenia postsynaptyczne w neuronie MOC.
nuta: Może być konieczne przesunięcie elektrody stymulacyjnej.
- Uruchom odpowiednie protokoły stymulacji, aby obserwować wywołane prądy synaptyczne w MOC (cęgi napięciowe).
nuta: Preparat do cięcia klinów może być używany z dowolnymi typowymi narzędziami do zaciskania plastrów, takimi jak luźne zapisy plastrów, farmakologia, optogenetyka, obrazowanie wapnia, odblokowywanie neuroprzekaźników itp.