$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Fenotypy są determinowane przez złożony szereg fizycznych (np. białko-białko) i funkcjonalnych (np. gen-gen lub genetyczny) interakcji (GI)1. Chociaż interakcje fizyczne mogą wskazywać, które białka bakteryjne są powiązane jako kompleksy, niekoniecznie ujawniają one relacje funkcjonalne na poziomie szlaku1. Badania przesiewowe przewodu pokarmowego, w których mierzy się wzrost podwójnych mutantów zawierających dwa usunięte lub inaktywowane geny i porównuje je z odpowiadającymi im pojedynczymi mutacjami, mogą rzucić światło na epistatyczne zależności między loci, a tym samym zapewnić środki do badania i odkrywania nowych relacji funkcjonalnych2. Mapy przewodu pokarmowego na dużą skalę zostały zgłoszone dla organizmów eukariotycznych, takich jak drożdże3-7, ale informacje o IG pozostają rzadkie dla prokariontów8, co utrudnia funkcjonalną adnotację genomów bakteryjnych. W tym celu wraz z innymi opracowaliśmy wysokoprzepustowe ilościowe metody badań przesiewowych bakteryjnego przewodu pokarmowego9, 10.
Tutaj prezentujemy kluczowe kroki wymagane do przeprowadzenia ilościowej procedury przesiewowej E. coli Synthetic Genetic Array (eSGA) w skali genomu9, wykorzystując naturalną koniugację bakteryjną i homologiczną rekombinację do systemowego generowania i mierzenia dopasowania dużej liczby podwójnych mutantów w formacie tablicy kolonii. Krótko mówiąc, robot jest używany do przenoszenia, poprzez koniugację, chloramfenikolu (Cm) - oznaczonych zmutowanymi allelami z zaprojektowanych "szczepów dawcy" Hfr (High frequency of recombination) do uporządkowanej macierzy kanamycyny (Kan) - szczepów biorcy F. Zazwyczaj używamy pojedynczych mutantów z utratą funkcji z nieistotnymi delecjami genów (np. kolekcja "Keio"11) i niezbędnymi mutacjami hipomorficznymi genów (tj. allelami nadającymi zmniejszoną ekspresję białka, stabilność lub aktywność9, 12, 13) w celu zbadania funkcjonalnych powiązań odpowiednio genów nieistotnych i niezbędnych. Po koniugacji i następującej po niej wymianie genetycznej, w której pośredniczy rekombinacja homologiczna, powstałe podwójne mutanty są selekcjonowane na pożywce stałej zawierającej oba antybiotyki. Po wyrośnięciu płytki są obrazowane cyfrowo, a rozmiary kolonii są ilościowo oceniane za pomocą własnego automatycznego systemu przetwarzania obrazu14. Indeksy glikemiczne ujawniają się, gdy tempo wzrostu podwójnego mutanta jest albo znacznie lepsze, albo gorsze niż oczekiwano9. Pogarszające (lub ujemne) GI często wynikają między mutacjami powodującymi utratę funkcji w parach genów ze szlaków kompensacyjnych, które wpływają na ten sam podstawowy proces2. W tym przypadku utrata pojedynczego genu jest buforowana, tak że każdy pojedynczy mutant jest zdolny do życia. Jednak utrata obu szlaków jest szkodliwa i powoduje syntetyczną śmiertelność lub chorobę (tj. powolny wzrost). I odwrotnie, łagodzące (lub pozytywne) interakcje mogą wystąpić między genami w tym samym szlaku lub kompleksie białkowym2, ponieważ sama delecja któregokolwiek genu jest często wystarczająca, aby zakłócić normalną funkcję szlaku lub kompleksu, tak że dodatkowe perturbacje nie zmniejszają aktywności, a tym samym wzrostu, dalej. Ogólnie rzecz biorąc, systematyczna identyfikacja i analiza sieci przewodu pokarmowego może dostarczyć bezstronnych, globalnych map funkcjonalnych relacji między dużą liczbą genów, z których można wywnioskować informacje na poziomie szlaku pominięte w innych podejściach9.