Subskrypcja JoVE jest wymagana do oglądania tego materiału. Zaloguj się lub rozpocznij bezpłatny okres próbny.

Artykuł metodologiczny

Synergistyczny efekt światła widzialnego i gentamycyny w odniesieniu do mikroorganizmów Pseudomona aeruginosa

12.6K wyświetleń

DOI:

10.3791/4370

2 lipca 2013

W tym artykule

Podsumowanie

Wykazujemy, że opracowane urządzenie biomedyczne wykorzystujące ciągłe lub impulsowe leczenie laserem światła widzialnego w połączeniu z antybiotykoterapią (gentamycyną) wywołuje statystycznie istotny efekt synergistyczny, prowadzący do zmniejszenia żywotności P. aeruginosa PAO1 o 8 log w porównaniu z samą antybiotykoterapią.

Streszczenie

W ostatnim czasie ukazało się kilka publikacji na temat bakteriobójczego działania światła widzialnego, z których większość stwierdza, że za zabijanie różnych patogenów odpowiedzialna jest niebieska część widma (400 nm-500 nm)1-5. Zasugerowano, że fototoksyczny efekt niebieskiego światła jest wynikiem indukowanego światłem tworzenia się reaktywnych form tlenu (ROS) przez endogenne bakteryjne fotosensybilizatory, które absorbują światło głównie w obszarze niebieskim4,6,7. Istnieją również doniesienia o działaniu biobójczym światła czerwonego i bliskiej podczerwieni8, a także światła zielonego9.

W niniejszym badaniu opracowaliśmy metodę, która pozwoliła nam scharakteryzować wpływ wysokoenergetycznego zielonego światła (długość fali 532 nm) w trybie ciągłym (CW) oraz impulsowym z przełącznikiem Q (Q-S) na Pseudomonas aeruginosa. Wykorzystując tę metodę, zbadaliśmy również wpływ zielonego światła w połączeniu z leczeniem antybiotykiem (gentamycyną) na żywotność bakterii. P. aeruginosa jest powszechnym nosokomialnym patogenem oportunistycznym wywołującym różne choroby. Szczep ten jest dość odporny na wiele antybiotyków i zawiera wiele przewidywanych systemów effluxu wielolekowego RND typu AcrB/Mex10.

W zastosowanej metodzie wykorzystano wolno żyjące bakterie Gram-ujemne w fazie stacjonarnej (P. aeruginosa szczep PAO1), hodowane w pożywce Luria Broth (LB) i poddane działaniu laserów z przełącznikiem Q i/lub laserów CW, z dodatkiem lub bez dodatku antybiotyku gentamycyny. Żywotność komórek określano w różnych punktach czasowych. Uzyskane wyniki wykazały, że sama terapia laserowa nie obniżyła żywotności komórek w porównaniu z nieleczoną grupą kontrolną, a sama terapia gentamycyną spowodowała jedynie 0,5 log redukcji liczby żywych komórek P. aeruginosa. Jednakże połączone zastosowanie lasera i gentamycyny wywołało efekt synergistyczny, a żywotność P. aeruginosa została zredukowana o 8 log.

Zaproponowaną metodę można dodatkowo wdrożyć poprzez opracowanie urządzenia typu cewnik, zdolnego do wstrzykiwania roztworu antybiotyku do zainfekowanego narządu przy jednoczesnym naświetlaniu tego obszaru.

Protokół

1. Hodowla bakterii

  1. Gram-ujemny szczep P. aeruginosa PAO1 hodowano w bulionie Luria (LB) w temperaturze 37 °C przez 18 hr.
  2. Kulturę komórek odwirowano następnie przy 7,500 rpm (obrotów na minutę) przez 5 min, a supernatant usunięto.
  3. Bakterie zawieszono ponownie w 10% LB i inkubowano przez kolejne 2 hr, aby kultura ponownie weszła w fazę stacjonarną.
  4. Zawiesinę bakterii podzielono następnie na dwie grupy: do pierwszej grupy (2 probówki) nie dodawano antybiotyku, natomiast do drugiej grupy dodano antybiotyk gentamycynę (50 μg/ml).

2. Oznaczanie jednostek tworzących kolonie (CFU)

  1. W celu określenia żywotności komórek pobierano próbki o objętości 20 μl z eksperymentu mniej więcej co 2 hr w ciągu 24 hr. Próbki poddano rozcieńczeniom seryjnym, a następnie wysiano na płytki z agarem LB i inkubowano przez noc w temperaturze 37 °C.
  2. Dla każdej grupy traktowania określono liczbę CFU na płytce i dokonano porównania między poszczególnymi przedziałami czasowymi i różnymi sposobami traktowania. Logarytmiczną redukcję CFU obliczono zgodnie z równaniem (1):
    Log reduction= LogU-LogC[CFU/ml]
    Gdzie U to wartość jednostek tworzących kolonie w każdym punkcie czasowym; CFU to jednostka tworząca kolonię, a jednostki CFU/ml są równe:
    CFU/ml = ( liczba kolonii x współczynnik rozcieńczenia )/( objętość inokulatu )
    Natomiast C to liczba CFU stwierdzona w próbce kontrolnej w czasie początkowym. Należy zauważyć, że U oznacza współczynnik tworzenia kolonii w momencie pomiaru.
  3. Współczynnik rozcieńczenia to liczba rozcieńczeń, w których w każdym z nich stężenie bakterii zostało zredukowane dziesięciokrotnie. Objętość inokulatu wynosiła zawsze 200 µL i jest ona powiązana z rozmiarem użytej probówki.

Podsumowując kwestię stężeń, antybiotyk gentamycyna zastosowano w stężeniu 50 μg/ml. W odniesieniu do bakterii, do końca procesu wykonano łącznie 8 rozcieńczeń. Każde rozcieńczenie było dziesięciokrotne i przeprowadzano je w probówkach o objętości 200 μl. Punktem wyjścia było dodanie 20 μl próbek do probówki 200 μl (zatem stężenie początkowe wynosiło 20/200C0=0.1C0, gdzie C0 oznacza stężenie początkowe w 20 μl próbek), a stężenie końcowe zostało zredukowane o 8 rzędów wielkości w wyniku 8 rozcieńczeń.

3. Oświetlenie

  1. Laser CW Nd:YAG (długość fali 532 nm i średnia moc optyczna 200 mW) został rozdzielony na dwie ścieżki optyczne za pomocą optycznego dzielnika wiązki 50%/50%. Średnica wiązki wynosiła około 10 mm. Czas naświetlania wynosił 24 hr.
  2. Impulsowy laser Nd:YAG z przełącznikiem Q (długość fali 532 nm, średnia moc 300 mW i szczytowa moc optyczna 2,5 MW) został również rozdzielony na dwie ścieżki za pomocą optycznego dzielnika wiązki 50%/50%. Średnica plamki wynosiła 6 mm. Szerokość impulsu lasera z przełącznikiem Q wynosiła 6 nsec, a częstotliwość repetycji 15Hz. Średnia gęstość mocy wynosiła 106 mW/cm2, a szczytowa gęstość mocy 8,83 kW/mm2. Czas naświetlania wynosił 24 hr.

Należy zauważyć, że zawiesina bakteryjna była mieszana podczas napromieniowania i utrzymywana w odpowiednich warunkach hodowlanych zapewniających wzrost bakterii (we wszystkich probówkach znajdowało się podłoże Luria Broth, aby umożliwić wzrost bakterii).

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Wyniki

Układ oparty na laserze przedstawiono schematycznie na Rysunku 1. W pierwszym wariancie eksperymentalnym wykorzystano laser Nd:YAG w trybie ciągłym (CW) o długości fali 532 nm (druga harmoniczna Nd:YAG) i średniej mocy optycznej 200 mW. Wiązka ta została rozdzielona na dwie ścieżki optyczne za pomocą dzielnika wiązki 50%/50%, tak aby każda z rozdzielonych wiązek miała moc 100 mW. Średnica wiązki wynosiła około 10 mm, zatem gęstość mocy wynosiła około 100 mW/cm2. Czas ekspozycji wynosił 24 hr. ...

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Dyskusja

Fototerapia w ostatnich latach stała się obszarem zaawansowanych badań multidyscyplinarnych, wyłaniając się jako obiecujące podejście w leczeniu licznych chorób. W tym kontekście szeroko badano wykorzystanie światła w zakresie widzialnym. Przykładowo stwierdzono, że zakażone rany można leczyć skuteczniej, poddając je działaniu intensywnego światła widzialnego w celu sterylizacji. Udowodniono, że mechanizm działania tej metody polega na indukowaniu przez światło reaktywnych form tlenu (ROS), które zabijają bakterie11...

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Oświadczenia

Nie zgłoszono żadnych konfliktów interesów.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
Pożywka LauriaDifco241420
GentamycynaSigmaG1914
Bacto AgarDifco231710

Bibliografia

  1. Feuerstein, O., Persman, N., Weiss, E. I. Phototoxic Effect of Visible Light on Porphyromonas gingivalis and Fusobacterium nucleatum: An In Vitro Study. Photochemistry and Photobiology. 80, 412-415 (2004).
  2. Enwemeka, C. S., Williams, D., Enwemeka, S. K., Hollosi, S., Yens, D. Blue 470-nm light kills methicillin-resistant Staphylococcus aureus (MRSA) in vitro. Photomed. Laser Surg. 27, 221-226 (2009).
  3. Guffey, J. S., Wilborn, J. In vitro bactericidal effects of 405-nm and 470-nm. Photomed. Laser Surg. 24, 684-688 (2006).
  4. Lipovsky, A., Nitzan, Y., Friedman, H., Lubart, R. Sensitivity of Staphylococcus aureus strains to broadband visible light. Photochem. Photobiol. 85, 255-260 (2008).
  5. Lipovsky, A., Nitzan, Y., Lubart, R. A possible Mechanism for visible light induced wound healing. Lasers in Surgery and Medicine. 40, 509-514 (2008).
  6. Lipovsky, A., Nitzan, Y., Gedanken, A., Lubart, R. Visible light-induced killing of bacteria as a function of wavelength: Implication for wound healing. Lasers in Surgery and Medicine. 42, 467-472 (2010).
  7. Feuerstein, O., Ginsburg, I., Dayan, E., Veler, D., Weiss, E. Mechanism of Visible Light Phototoxicity on Porphyromonas gingiwalis and Fusobacferium nucleaturn. Photochemistry and Photobiology. 81, 1186-1189 (2005).
  8. Nussbaum, E. L., Lilge, L., Mazzulli, T. Effects of 630-, 660-, 810-, and 905-nm laser irradiation delivering radiant exposure of 1-50 J/cm2 on three species of bacteria in vitro. J. Clin. Laser Med. Surg. 20, 325-333 (2002).
  9. Dadras, S., Mohajerani, E., Eftekhar, F., Hosseini, M. Different Photoresponses of Staphylococcus aureus and Pseudomonas aeruginosa to 514, 532, and 633 nm Low Level Lasers In Vitro. Current Microbiology. 53, 282-286 (2006).
  10. Stover, C. K., Pham, X. Q., Erwin, A. L. Complete genome sequence of Pseudomonas aeruginosa PAO1, an opportunistic pathogen. Nature. 406, 952-964 (2000).
  11. Hamblin, M. R., Demidova, T. N. Mechanisms of low level light therapy. Proc. SPIE. 6140, 1-12 (2006).
  12. Krespi, Y. P., Stoodley, P., Hall-Stoodley, L. Laser disruption of biofilm. Laryngoscope. 118, 1168-1173 (2008).
  13. Reznick, Y., Banin, E., Lipovsky, A., Lubart, R., Zalevsky, Z. Direct laser light enhancement of susceptibility of bacteria to gentamycin antibiotic. Opt. Commun. 284, 5501-5507 (2011).

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Przedruki i uprawnienia

Tagi

Terapia wiat em widzialnymantybiotyk gentamycynaPseudomonas aeruginosana wietlanie laseroweywotno bakteriilaser z prze cznikiem Qfala ci g ajednostki tworz ce kolonieoporno na antybiotyki