Optyczne pułapkowanie nanocząsteczek

Podsumowanie

Poniższe podejście do konfiguracji szczegółowo opisuje pułapkowanie optyczne nanocząstek dielektrycznych o niskiej mocy z wykorzystaniem podwójnego nanootworu w cienkiej warstwie metalu.

Streszczenie

Pułapkowanie optyczne to technika łagodnego unieruchamiania i manipulowania małymi obiektami za pomocą światła, szeroko stosowana w chwytaniu i manipulowaniu małymi cząstkami biologicznymi. Ashkin i współpracownicy po raz pierwszy zaprezentowali pęsetę optyczną z wykorzystaniem pojedynczej skupionej wiązki¹. Pułapka z pojedynczą wiązką może być dokładnie opisana za pomocą sformułowania siły gradientu perturbacyjnego w przypadku małych cząstek w reżimie Rayleigha¹. W reżimie perturbacyjnym moc optyczna wymagana do uwięzienia cząstki skaluje się odwrotnie proporcjonalnie do czwartej potęgi rozmiaru cząstki. Wysokie moce optyczne mogą uszkodzić cząstki dielektryczne i powodować nagrzewanie. Na przykład uwięzione sfery lateksowe o średnicy 109 nm zostały zniszczone przez wiązkę o mocy 15 mW w ciągu 25 s¹, co ma poważne konsekwencje dla materii biologicznej^2,3.

Zaproponowano metodę optycznego pułapkowania z samoindukowanym działaniem zwrotnym (SIBA) w celu pułapkowania sfer polistyrenowych o średnicy 50 nm w reżimie nieperturbacyjnym⁴. W reżimie nieperturbacyjnym nawet mała cząstka o niewielkim kontraście przenikalności elektrycznej względem tła może znacząco wpływać na otaczające pole elektromagnetyczne i indukować dużą siłę optyczną. Gdy cząstka wnika do oświetlonej apertury, transmisja światła gwałtownie rośnie z powodu obciążenia dielektrycznego. Jeśli cząstka próbuje opuścić aperturę, zmniejszona transmisja powoduje zmianę pędu skierowaną na zewnątrz otworu, co zgodnie z trzecią zasadą dynamiki Newtona skutkuje siłą działającą na cząstkę do wnętrza otworu, pułapkując ją. Transmisję światła można monitorować, dzięki czemu pułapka może pełnić funkcję sensora. Technikę pułapkowania SIBA można dodatkowo udoskonalić, stosując strukturę z podwójnym nanootworem.

Wykazano, że struktura podwójnej nanodziury zapewnia silne lokalne wzmocnienie pola^5,6. Pomiędzy dwoma ostrymi wierzchołkami podwójnej nanodziury mała cząstka może spowodować znaczną zmianę transmisji optycznej, indukując tym samym dużą siłę optyczną. W rezultacie możliwe jest uwięzienie mniejszych nanocząstek, takich jak sfery krzemianowe o średnicy 12 nm⁷ oraz białka albuminy surowicy bydlęcej o promieniu hydrodynamicznym 3,4 nm⁸. W niniejszej pracy opisano konfigurację eksperymentalną wykorzystywaną do pułapkowania nanocząstek. W pierwszej kolejności szczegółowo omawiamy montaż układu pułapkowania opartego na zestawie pęsety optycznej Thorlabs Optical Tweezer Kit. Następnie wyjaśniamy procedurę nanofabrykacji podwójnej nanodziury w cienkiej warstwie metalu, wykonanie komory mikroprzepływowej oraz przygotowanie próbek. Na koniec szczegółowo opisujemy procedurę akwizycji danych i przedstawiamy typowe wyniki pułapkowania nanokulek polistyrenowych o średnicy 20 nm.

Protokół

Zasada techniki wychwytywania SIBA została przedstawiona na Rysunku 1. Rysunek 2 przedstawia schemat układu eksperymentalnego.

1. Układ pułapkowania optycznego

W tej części procedury należy zapoznać się z instrukcją obsługi zestawu do pułapkowania optycznego⁹ lub instrukcją modułu do pomiaru siły optycznej¹⁰, aby uzyskać szczegółowe informacje na temat konfiguracji zestawów. Należy zauważyć, że zamiast kwadratowego detektora pozycji zastosowano fotodiodę lawinową (APD). W przypadku śrub niewchodzących w skład zestawu do pułapkowania optycznego, należy użyć śrub z zestawu śrub i elementów mocujących (Thorlabs, HW-KIT2). Podczas pracy włączonego lasera należy przez cały czas stosować ochronę oczu. Należy upewnić się, że wiązka znajduje się w bezpiecznym obszarze i unikać noszenia odblaskowych akcesoriów, takich jak biżuteria. Zaleca się również stosowanie ochrony przed wyładowaniami elektrostatycznymi podczas obsługi diod laserowych.

1. Skonfigurować zestaw pęsety optycznej (Thorlabs, OTKB/M) oraz moduł pomiaru siły (Thorlabs, OTKBFM) zgodnie z odpowiednimi instrukcjami obsługi. Zamiast detektora pozycji kwadratowej w module pomiaru siły (Thorlabs, OTKBFM) zastosowano krzemową fotodiodę lawinową (APD) (Thorlabs, APD110A).
2. Podłączyć APD do oscyloskopu (Tektronics, TDS1012) za pomocą kabla koncentrycznego.
3. Zamontować płytkę półfalową (Thorlabs, AHWP05M-980) wewnątrz ekspandera wiązki. Płytka półfalowa jest zamocowana pomiędzy dwiema tubami soczewek (Thorlabs, SM1L03).

2. Nanofabrykacja

1. Podziel pokryte złotem szkiełko testowe (EMF Corp, Cr/Au) na cztery identyczne części. Jako alternatywę dla szkiełek dostępnych w handlu zastosowaliśmy również warstwę Au o grubości 100 nm z 2 nm warstwą adhezyjną Ti, naniesioną metodą naparowania wiązką elektronową na kwadratowe szkiełko szklane o boku 1 cala w podwyższonej temperaturze podłoża 200 °C przez co najmniej 1 hr. Pozwala to na uzyskanie gładkiej warstwy polikrystalicznej.
2. Stwórz obraz rastrowy struktury podwójnego nanootworu, ponieważ wejściem do systemu skupionej wiązki jonów (FIB) jest obraz rastrowy. Obraz składa się z dwóch pełnych kół o średnicy 160 nm z odległością między środkami wynoszącą 190 nm. Taki szablon pozwala uzyskać rozdzielczość wierzchołków wynoszącą około 15 nm. Pomiędzy kołami można umieścić opcjonalną cienką linię, aby usunąć wszelkie pozostałości metalu między wierzchołkami. Rycina 3a przedstawia przykładowy obraz rastrowy.
3. Wykonaj strukturę podwójnego nanootworu za pomocą systemu trawienia FIB (Hitachi, FB-2100). Przekształć obraz rastrowy z kroku 2.2 w wzór trawienia FIB (ciemny obszar na obrazie rastrowym zostaje wytrawiony przez FIB). Użyj napięcia przyspieszającego jony 40 kV oraz apertury ograniczającej wiązkę o średnicy 15 μm przy powiększeniu 60 K razy. Wykonaj osiemdziesiąt przejść dla każdego podwójnego nanootworu z czasem dawkowania 5 μsec na każdym przejściu. Rycina 3b przedstawia typową strukturę wynikową. Powtórz w razie potrzeby. Należy wykonać wiele nanootworów, aby zrekompensować ewentualne błędy.
4. Dodaj znaczniki rejestracyjne, używając FIB i/lub ręcznie, aby wskazać przybliżoną lokalizację podwójnego nanootworu lub nanootworów.
5. Opcjonalnie wykonaj obraz SEM otworów, aby dokładnie ocenić jakość struktury i rozdzielczość wierzchołków.

3. Komora mikrofluidyczna

Schemat procesu wytwarzania komory mikrofluidycznej przedstawiono na Rysunku 4.

1. Wlać 10 g bazy polidimetylosiloksanu (PDMS) (Dow Corning Canada, Sylgard 184 Silicone Elastomer Base) oraz dodatkowe 1 g utwardzacza (Dow Corning Canada, Sylgard 184 Silicone Elastomer Curing Agent) do jednorazowego kubka. Mieszać przez kilka minut.
2. Odpowietrzyć mieszaninę w komorze próżniowej, aż do całkowitego usunięcia pęcherzyków powietrza.
3. Wlać 1,5 g PDMS do szalki Petriego o średnicy 9 cm. Rozłożyć PDMS na dnie szalki Petriego za pomocą powlekania wirowego przy 950 rpm przez 65 sec. Rysunek 4b przedstawia wynik tego procesu. Grubość nie jest krytyczna, o ile nie przekracza 80 μm; dzięki temu złota warstwa mieści się w zasięgu roboczym dolnego obiektywu mikroskopu.
4. Ostrożnie ułożyć 3-5 szkiełek nakrywkowych #1,5 (Fisher Scientific, 12-541-B) na PDMS tak, aby nie nachodziły na siebie, a następnie poddać działaniu próżni przez 30 min, jak pokazano na Rysunku 4c.
5. Jeśli szkiełka nakrywkowe przesunęły się i nałożyły na siebie podczas odsysania powietrza, należy je delikatnie rozdzielić. Należy zachować ostrożność, aby warstwa PDMS pod szkiełkami pozostała cienka i jednorodna.
6. Jeśli wymagana była manipulacja szkiełkami nakrywkowymi, ponownie poddać szalkę Petriego działaniu próżni przez 30 min.
7. Wyjąć szalkę Petriego z komory próżniowej i utwardzać na płycie grzejnej przez 20 min w temperaturze 85 °C.
8. Za pomocą żyletki wyciąć jedno ze szkiełek nakrywkowych, a następnie ostrożnie podnieść je pęsetą z cienkimi końcówkami. Cienka warstwa PDMS pozostanie na szkiełku nakrywkowym, ponieważ PDMS wykazuje większą adhezję do szklanego szkiełka nakrywkowego niż do PMMA szalki Petriego, jak pokazano na Rysunku 4e.
9. Za pomocą żyletki wyciąć w PDMS okno o wymiarach 3 x 3 mm, jak na Rysunku 4f. Okno to stworzy komorę, w której znajdzie się roztwór nanocząstek.

4. Przygotowanie próbek

1. Wykonaj szkiełko mikroskopowe z otworem o średnicy ¾" w centrum, używając akrylu. Można to osiągnąć za pomocą wycinarki laserowej. Można również użyć innych materiałów. Próbka złota zostanie umieszczona wewnątrz otworu.
2. Oklej obwód otworu taśmą dwustronną. Użyj żyletki, aby odciąć nadmiar taśmy.
3. Połóż szkiełko mikroskopowe na szkiełku nakrywowym, stroną z PDMS do góry.
4. Rozcieńcz roztwór nanokulek polistyrenowych (Thermo Scientific, 3020A) z 1 % w/v do 0,05 % w/v, używając wody dejonizowanej. Można do tego wykorzystać mikropipetę.
5. Dodaj kilka kropel roztworu w obszarze PDMS. Dodaj kroplę na próbkę złota w miejscu, w którym znajdują się nanootwory.
6. Umieść próbkę złota na szkiełkach nakrywowych w taki sposób, aby nanootwory znajdowały się w obszarze PDMS. Upewnij się, że w komorze nie ma pęcherzyków powietrza. Dociśnij próbkę złota do szkiełka nakrywowego i usuń nadmiar roztworu.
7. W przypadku użycia obiektywu imersyjnego (co ma miejsce w tym przypadku, choć nie jest to konieczne), dodaj kroplę oleju imersyjnego po przeciwnej stronie szkiełka nakrywowego, pod obszarem PDMS. Odnotuj położenie nanootworów.
8. Wsuń szkiełko mikroskopowe do uchwytu na szkiełka, stroną z olejem do dołu, a następnie opuść uchwyt, aż olej imersyjny zetknie się z obiektywem mikroskopu.
9. Wstępnie ustaw stolik mikroskopu tak, aby znaczniki wskaźnikowe znajdowały się pod obiektywem.
10. Podążaj za liniami wskaźnikowymi prowadzącymi do nanootworów. Ustaw szkiełko tak, aby znaczniki wskaźnikowe i inne otwarte obszary zniknęły z centrum ekranu. Nadmierna transmisja światła może uszkodzić detektor APD.
11. Włącz laser. Ponieważ lustro dichroiczne nie jest idealne, w pobliżu centrum ekranu powinna pojawić się plamka z wiązki lasera.
12. Używając oprogramowania do sterowania stolikiem piezoelektrycznym, doprecyzuj ustawienie we wszystkich trzech osiach.

5. Pozyskiwanie danych

1. Pomocą znaczników wskaźnikowych ustaw plamkę w pobliżu znanej lokalizacji nanootworu. Nanootwory będą zbyt małe, aby można było je rozdzielić, i powinny być widoczne jedynie jako kropki.
2. Transmisja światła przez próbkę jest wskazywana przez poziom sygnału na oscyloskopie. Dalsze ustawienie próbki powinno zmaksymalizować transmisję światła. Należy uważać na znaczniki wskaźnikowe oraz widoczne i niewidoczne rysy, ponieważ w tych obszarach transmisja światła będzie wysoka. Nanootwory będą powodować nagłe skoki transmisji światła, podczas gdy rysy wykazują bardziej stopniowe zmiany.
3. Za pomocą płytki falowej dostosuj polaryzację światła dla uzyskania najwyższej transmisji, ponieważ struktura podwójnego nanootworu jest spolaryzowana.
4. Aby zminimalizować szumy, zbuduj filtr RC, wykorzystując płytkę stykową, rezystor 200 KΩ i kondensator 100 pF, a następnie podłącz go za detektorem APD za pomocą kabla koncentrycznego. Wartości te można dostosować w celu uzyskania najlepszej wydajności, biorąc pod uwagę wymaganą szerokość pasma akwizycji danych.
5. Podłącz oscyloskop i moduł akwizycji danych (Omega, USB-4711A) do filtra RC za pomocą kabli koncentrycznych i adaptera T.
6. Próbkuj napięcie detektora APD za pomocą modułu akwizycji danych przez pożądany czas. Czas akwizycji wynosi zazwyczaj od kilkuset sekund. W tym przypadku do akwizycji danych wykorzystano specjalistyczny pakiet oprogramowania. Próbkowanie napięcia odbywa się z częstotliwością 2 000 razy na sekundę.
7. Za pomocą programu Matlab przefiltruj pozyskane dane, stosując filtr Savitzky’ego-Golaya, a następnie przedstaw je na wykresie w funkcji czasu.

Wyniki

Typowy ślad akwizycji przedstawiono na Rysunku 5a. Zdarzenie uwięzienia charakteryzuje się nagłym przebiegiem z ostrymi krawędziami, wykazując wyraźne przełączenie między dwoma poziomami mocy transmisji. Ponieważ cząstki podlegają ruchowi Browna, zdarzenia uwięzienia występują losowo. W przypadku cząstek o rozmiarze 20 nm zmiany transmisji wynikające z uwięzienia wynosiły zazwyczaj około 5-10 %, a czasy uwięzienia około 10-300 sec. Typowy czas do wystąpienia zdarzenia uwięzienia przy mocy i stężeniu określonych powyżej jest rzędu minuty. Ze względu na zawadę stericzną jednoczesne uwięzienie wielu cząstek zdarza się rzadko, choć po uwolnieniu cząstki zazwyczaj następuje kolejne zdarzenie uwięzienia. W zależności od jakości wyników w stanie uwięzienia może wystąpić pewien wzrost szumu sygnału. Wzrost ten wynika z ruchu Browna uwięzionej cząstki. W przypadku braku uwięzionej cząstki źródło szumu to nie występuje.

W wynikach mogą pojawić się artefakty, które nie świadczą o zdarzeniach pułapkowania. Wyniki wykazujące dryft, czyli powolne zmiany transmisji w ciągu kilku minut, jak pokazano na Ryc. 5b, należy odrzucić. Mogą wystąpić również inne artefakty, takie jak niespójne zmiany transmisji, nadmierny szum lub całkowity brak pułapkowania. Na przykład pęcherzyki powietrza mogą powodować nieciągłe skoki intensywności, jeśli nie zadba się o to, aby komora była wolna od pęcherzyków. Pęcherzyki te reagują inaczej na zdarzenia pułapkowania pod względem zachowania dynamicznego i zmiany intensywności, dzięki czemu są łatwo identyfikowalne. Takie objawy mogą być spowodowane wadliwą strukturą podwójnych nanootworów, zanieczyszczeniami lub wibracjami mechanicznymi. Zaleca się umieszczenie tego zestawu w cichym miejscu o niskiej aktywności. Pomocne może być również odczekanie kilku minut po ustawieniu lasera i stolika, aby ustabilizowały się one w swojej pozycji.

Rycina 1. Transmisja optyczna przez aperturę poddługofalową: a) Bez cząsteczki; b) Zwiększona transmisja dzięki cząsteczce dielektrycznej; c) W przypadku próby opuszczenia apertury przez cząsteczkę, spadek pędu światła (ΔT) spowoduje działanie siły (F) na cząsteczkę, która przyciągnie ją z powrotem do otworu; d) Przesunięcie w stronę czerwieni krzywej transmisji spowodowane przez cząsteczkę, prowadzące do zmiany transmisji ΔT.

Rysunek 2. a) Ogólny schemat układu pułapkowania, powiększenie czerwonego koła przedstawiono w b); b) Powiększenie ukazujące podwójny nanootwór oraz nanokule wewnątrz komory z PDMS; c) Obraz SEM struktury podwójnego nanootworu. Stosowane akronimy: LD = dioda laserowa; ODF = filtr gęstości optycznej; HWP = płytka półfalowa; BE = ekspander wiązki; MR = lustro; MO = obiektyw mikroskopowy; OI MO = obiektyw mikroskopowy z imersją olejową; DH = podwójny nanootwór; APD = lawinowy fotodetektor.

Rycina 3. a) Przykład rysunku rastrowego użytego w procesie wytwarzania metodą FIB; b) Obraz SEM podwójnego nanootworu.

Rysunek 4. Schemat procesu wytwarzania komory mikrofluidycznej.

Rycina 5. (a) Typowy zapis zdarzeń przechwytywania kul polistyrenowych o rozmiarze 20 nm. (b) Nieprawidłowy zapis wykazujący silny dryft.

Dyskusja

Obecna konfiguracja wykazuje skuteczne zdolności chwytania dzięki strukturze nanootworu. Nanootwór ten chwyta cząstki dielektryczne o skali ~10 nm przy niskich intensywnościach optycznych. Inne nowatorskie pułapki optyczne obejmują optyczne anteny dipolowe¹¹, rezonatory optyczne w trybie szeptającej galerii^12,13 oraz falowody¹⁴; działają one jednak zazwyczaj w reżimie perturbacyjnym, który jest ograniczony przez odwrotne skalowanie czwartego rzędu wymaganej mocy optycznej w stosunku do rozmiaru cząstki, w przeciwieństwie do SIBA i pułapki z podwójnym nanootworem. Do chwytania zaprezentowano również alternatywne kształty apertur, takie jak prostokątny plazmoniczny nanopor¹⁵. Inne korzystne właściwości wykazane przez pułapkę z podwójnym nanootworem to selektywność względem rozmiaru cząstek⁷, pojedyncza lokalizacja chwytania (aby ograniczyć chwytanie wielu cząstek) oraz łatwość wykonania¹⁶. Jako alternatywa dla użycia FIB, podwójne nanootwory mogą być wytwarzane przy użyciu litografii koloidalnej⁶.

Wychwytywanie materiałów biologicznych o dużej polaryzowalności i rozmiarze obejmowało bakterie³, żywe komórki^17,2,18, wirusa mozaiki tytoniu³ oraz manipulację i rozciąganie nici DNA przytwierdzonych na końcach do dużych cząstek dielektrycznych¹⁹; jednak bezpośrednie wychwytywanie mniejszych próbek biologicznych bez ich przytwierdzania pozostaje wyzwaniem. Ta konfiguracja pułapki jest zdolna do wychwytywania małych cząstek dielektrycznych przy niższych intensywnościach światła niż konwencjonalne pęsety optyczne i okrągłe nanootwory, co pozwala na utrzymywanie małych cząstek biologicznych przez dłuższy czas bez ich uszkadzania lub przytwierdzania. Ponadto zdarzenia wychwytywania charakteryzują się wysokim stosunkiem sygnału do szumu, co pozwala temu układowi działać jako czuły sensor i wykrywać najmniejsze cząstki biologiczne, takie jak wirusy i białka. W rzeczywistości sfery polistyrenowe o średnicy 20 nm mają współczynnik załamania światła wynoszący 1,59, co jest porównywalne z najmniejszymi cząstkami biologicznymi, takimi jak wirusy. Metoda ta mogłaby stać się niezawodną i dojrzałą techniką immobilizacji i manipulacji nanocząstkami, w tym cząstkami biologicznymi.

Zastosowania tej techniki obejmują integrację z układem mikrofluidycznym. Zamiast pojedynczej komory mikrofluidycznej, do dynamicznej kontroli środowiska wykorzystano by kanał, co byłoby idealne do pomiaru współczynnika załamania światła. Taka konfiguracja zostałaby zaimplementowana w jednym chipie mikrofluidycznym, co prowadziłoby do uzyskania bardziej stabilnego i wytrzymałego układu oraz szybszej analizy substancji rozpuszczonych. Innym rozwiązaniem jest opracowanie schematu detekcji fluorescencyjnej do charakterystyki pojedynczych wirusów znakowanych fluorescencyjnie, półprzewodnikowych kropek kwantowych i zielonych białek fluorescencyjnych. Układ ten ma również potencjał do przekształcenia w biosensor dla pojedynczego wirusa lub białka, co pozwalałoby na analizę bardzo małych próbek. Detekcja pojedynczego białka byłaby pomocna w procesie odkrywania leków²¹ oraz wykrywania chorób i infekcji²². W celu detekcji sygnałów Ramanowskich cząstek i pojedynczych zdarzeń wiązania można włączyć spektroskopię Ramanowską. Struktura podwójnej nanodziurki umożliwia silne lokalne wzmocnienie pola na krawędziach, co jest odpowiednie dla spektroskopii Ramanowskiej z wzmocnieniem końcówką (TERS)²³. Dzięki spektroskopii Ramanowskiej²⁴ możliwa byłaby również wysoce specyficzna, bezznacznikowa metoda charakterystyki materiałów.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule

Nazwa	Firma	Numer katalogowy	Komentarze
olej immersyjny	Cargille Labs	16484	Ilość: 1
Zestaw elastomeru silikonowego Sylgard 184	Dow Corning Canada		Ilość: 1 Zawiera zarówno bazę PDMS, jak i czynnik sieciujący
Preparaty testowe powlekane złotem	EMF Corp	Cr/Au	Ilość: 1 Można również zastosować warstwę adhezyjną z Ti
Kryształy okrywkowe nr 1,5	Fisher Scientific	12-541-B	Ilość: 1
System wiązki jonowej zogniskowanej	Hitachi	FB-2100
Przenośny moduł akwizycji danych	Omega Engineering	USB-4711A	Ilość: 1
Stół liniowy	Parker	4034M	Ilość: 1
Głowica i kontroler diody laserowej	Sacher Lasertechnik Group	TEC 120	Ilość: 1 Ręcznie strojony system lasera Littrowa
Cyfrowy oscyloskop	Tektronics	TDS1012	Ilość: 1
Standardy wielkości nanokulek 20 nm	Thermo Scientific	3020A	Ilość: 1
1" Mocowanie obiektywu	Thorlabs	LMR1	Ilość: 1
0.3" Tuba soczewki	Thorlabs	SM1L03	Ilość: 2
Filtr absorpcyjny ND 4,0	Thorlabs	NE40A	Ilość: 1
Aluminiowa płyta montażowa	Thorlabs	MB1824	Ilość: 1
Fotodioda lawinowa	Thorlabs	APD110A	Ilość: 1
Cyfrowy miernik mocy optycznej	Thorlabs	PM100	Ilość: 1 Przestarzałe, inne będą wystarczające
Moduł pomiaru siły	Thorlabs	OTKBFM	Ilość: 1
Kinematyczny uchwyt lustra	Thorlabs	KM200-E03	Ilość: 1 Z lustrem wysokiej jakości dla laserów bliskiej podczerwieni (Near IR)
Sterownik prądu stałego dla diody laserowej	Thorlabs	LD1255R	Ilość: 1
Płyta montażowa do stołu optycznego LD1255	Thorlabs	LD1255P	Ilość: 1
Montowana achromatyczna płytka półfalowa	Thorlabs	AHWP05M-980	Ilość: 1 690 – 1200 nm
Zestaw do pęsety optycznej	Thorlabs	OTKB/M	Ilość: 1 System metryczny czy imperialny
Podstawa uchwytu do prętów	Thorlabs	BA2	Ilość: 2
Zasilacz	Thorlabs	PS-12DC-US	Ilość: 1
Kabel zasilający	Thorlabs	LD1255-CAB	Ilość: 1
Płyta kątowa	Thorlabs	AP90	Ilość: 1
Kątowy zacisk do słupka	Thorlabs	RA90	Ilość: 1
Stalowy trzpień optyczny	Thorlabs	TR3	Ilość: 1
Zacisk stołowy	Thorlabs	CL1	Ilość: 2 Przestarzałe, inne będą wystarczające
Czujnik termiczny	Thorlabs	PM210	Ilość: 1 Dla cyfrowego pomiarowego miernika mocy optycznej
Kondensator 100 pF			Ilość: 1 Dowolna marka, niekrytyczne
Rezystor 200 kΩ			Ilość: 1 Dowolna marka, nieistotne
Arkusz akrylowy			Ilość: 3" x 1" Dowolna marka, nieistotne
Zestaw kabli koncentrycznych, przewodów i złączy			W razie potrzeby
Płytka stykowa			Ilość: 1 Dowolna marka, niekrytyczne
Soczewka rozpraszająca			Ilość: 1 Dowolna marka, nieistotne
Nożyk diamentowy			Ilość: 1 Dowolna marka, niekrytyczne
Taśma dwustronna			Dowolna marka, niekrytyczne
Żyletka			Ilość: 1 Dowolna marka, niekrytyczne
Pinceta			Ilość: 1 Dowolna marka, z cienkim wkładem