Artykuł metodologiczny

Cystografia fotoakustyczna

DOI:

10.3791/50340

⸱

11 czerwca 2013

 ,  , 
1Department of Biomedical Engineering, University at Buffalo, The State University of New York, 2Department of Creative IT Engineering, Pohang University of Science and Technology (POSTECH) , 3School of Electrical Engineering and Computer Science, Kyungpook National University

W tym artykule

Podsumowanie

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Cystografia fotoakustyczna (PAC) ma ogromny potencjał do mapowania pęcherzy moczowych, wrażliwego na promieniowanie narządu wewnętrznego u pacjentów pediatrycznych, bez użycia promieniowania jonizującego lub toksycznego środka kontrastowego. Tutaj demonstrujemy zastosowanie PAC do mapowania pęcherzy moczowych z wstrzyknięciem nieprzezroczystych optycznie znaczników u szczurów in vivo.

Streszczenie

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Konwencjonalna cystografia dziecięca, która opiera się na diagnostycznym promieniowaniu rentgenowskim przy użyciu barwnika nieprzezroczystego dla promieniowania, cierpi z powodu stosowania szkodliwego promieniowania jonizującego. Ryzyko raka pęcherza moczowego u dzieci z powodu narażenia na promieniowanie jest większe niż w przypadku wielu innych nowotworów. W tym miejscu pokazujemy wykonalność niejonizującego i nieinwazyjnego obrazowania fotoakustycznego (PA) pęcherzy moczowych, określanego jako cystografia fotoakustyczna (PAC), przy użyciu absorbentów optycznych bliskiej podczerwieni (NIR) (tj. błękitu metylenowego, nanostruktur złota plazmonicznego lub jednościennych nanorurek węglowych) jako znacznika zmętnienia optycznego. Udało nam się zobrazować pęcherz szczura wypełniony optycznymi środkami absorpcyjnymi za pomocą konfokalnego systemu PAC w ciemnym polu. Po przezcewkowym wstrzyknięciu środków kontrastowych, pęcherze szczura zostały fotoakustycznie uwidocznione, osiągając znaczne wzmocnienie sygnału PA. Akumulację potwierdzono za pomocą spektroskopowego obrazowania PA. Co więcej, wykorzystując jedynie energię impulsu laserowego mniejszą niż 1 mJ/cm2 (1/20 limitu bezpieczeństwa), nasz obecny system obrazowania może mapować pęcherz szczura wypełniony błękitem metylenowym na głębokości ponad 1 cm w tkankach biologicznych in vivo. Zarówno wyniki obrazowania PA in vivo, jak i ex vivo potwierdzają, że środki kontrastowe były naturalnie wydalane z moczem. W związku z tym nie ma obaw o długotrwałą akumulację czynników toksycznych, co ułatwi translację kliniczną.

Wprowadzenie

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Cystografia rentgenowska1 to proces obrazowania do identyfikacji chorób związanych z pęcherzem, takich jak rak pęcherza moczowego, refluks pęcherzowo-moczowodowy, zablokowanie moczowodów, pęcherz neurogenny, itp. 2-5 Zazwyczaj mocz jest oddawany w mocz, a przez cewnik wstrzykiwany jest środek nieprzezroczysty dla promieni rentgenowskich. Następnie wykonywane są fluoroskopowe obrazy rentgenowskie w celu wyznaczenia pęcherzy moczowych. Jednak kluczową kwestią bezpieczeństwa jest to, że w tej procedurze stosuje się szkodliwe promieniowanie jonizujące. Odsetek skumulowanego ryzyka zachorowania na raka do 75 roku życia w wyniku diagnostycznych zdjęć rentgenowskich waha się od 0,6 do 1,8%. 6 Ponadto zagrożenie rakotwórcze jest znaczne u pacjentów pediatrycznych. Badanie przeprowadzone w Wielkiej Brytanii wykazało, że spośród 9 głównych narządów wewnętrznych, średnia roczna dawka promieniowania z diagnostycznych promieni rentgenowskich była najwyższa w pęcherzu moczowym u dzieci płci żeńskiej poniżej 4 roku życia i druga co do wielkości u dzieci płci męskiej poniżej 4 roku życia. 7 Wskazuje to, że ryzyko raka pęcherza moczowego jest największe u pacjentów pediatrycznych. Chociaż radiolodzy dziecięcy dążą do zmniejszenia narażenia na promieniowanie tak nisko, jak jest to racjonalnie osiągalne, nie można całkowicie wykluczyć promieniowania jonizującego. W związku z tym ograniczenie stwarza potrzebę całkowicie wolnej od promieniowania, czułej, opłacalnej i wysokorozdzielczej metody obrazowania z nieradioaktywnymi środkami kontrastowymi w cystografii.

Ostatnio, tomografia fotoakustyczna (PAT) stała się główną metodą obrazowania biomedycznego, ponieważ PAT może zapewnić silne kontrasty absorpcji optycznej i wysoką rozdzielczość przestrzenną ultradźwięków w tkankach biologicznych. 8 Zasada działania PAT polega na tym, że fale ultradźwiękowe są indukowane w wyniku termoelastycznego rozszerzania się celu, po którym następuje absorpcja światła. Poprzez detekcję czasowo rozdzielczych fal akustycznych rozchodzących się przez ośrodek, powstają dwu- lub trójwymiarowe obrazy fotoakustyczne (PA). Ponieważ ultradźwięki (US) są znacznie mniej rozproszone w tkankach w porównaniu ze światłem (zwykle dwa lub trzy rzędy wielkości), głębokość obrazowania PAT może sięgać nawet ~8 cm w tkankach, podczas gdy rozdzielczość przestrzenna jest utrzymywana na poziomie 1/200 głębokości obrazowania. 9 Do najważniejszych zalet PAT w zastosowaniach cystograficznych należą: (1) PAT jest całkowicie wolny od promieniowania jonizującego. (2) Systemy obrazowania klinicznego US można łatwo dostosować do dostarczania dwumodalnych możliwości obrazowania PA i US. W związku z tym dwumodalny system obrazowania PA/US może być stosunkowo przenośny, ekonomiczny i szybki, co jest kluczowym kryterium szybkiej translacji klinicznej. Wykorzystując zarówno kontrasty endogenne, jak i egzogenne, PAT zapewnił obrazowanie morfologiczne, funkcjonalne i molekularne tkanek w wysokiej rozdzielczości w celu zbadania fizjopatologii guza, hemodynamiki mózgu, narządów wewnętrznych, okulistyki, angiografii itp. 10-16

W tym artykule demonstrujemy eksperymentalne protokoły niejonizującej cystropografii fotoakustycznej (PAC) przy użyciu absorbentów optycznych bliskiej podczerwieni (NIR) (np. błękitu metylenowego, nanoklatek złotych lub jednościennych nanorurek węglowych) jako nietoksycznych znaczników mętności optycznej. Pęcherze szczurów wypełnione środkami kontrastowymi zostały oznaczone fotoakustycznie i spektroskopowo in vivo. W pęcherzach i nerkach szczurów nie gromadziły się trwale żadne środki. W ten sposób można wykluczyć toksyczność długotrwałą, która może być spowodowana nagromadzeniem środka. Wynik ten sugeruje, że PAC w połączeniu z absorberami optycznymi może być potencjalnie nieszkodliwą metodą cystograficzną dla pacjentów pediatrycznych. W tym artykule omówiono konfigurację systemu, wyrównanie systemu oraz procedury obrazowania in vivo / ex vivo.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Protokół

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

1. System cystografii fotoakustycznej (PAC) w trybie głębokiego odbicia

  1. Konfiguracja systemu17, 18
    1. Laser Nd:YAG z przełączaniem Q (SLII-10; Kontinuum; 532 nm) pompuje laser o regulowanej długości fali (Surelite OPO PLUS; Kontinuum; zakres regulacji długości fali: od 680 do 2 500 nm).
    2. Czas trwania impulsu każdego strzału laserowego wynosi ~5 nsec, a częstotliwość powtarzania lasera to 10 Hz.
    3. Długość fali zależy od piku absorpcji optycznej zastosowanego środka kontrastowego. Jeśli błękit metylenowy służy jako środek kontrastowy, stosuje się długość fali optycznej 667 nm, gdzie występuje absorpcja szczytowa. Plazmoniczne nanostruktury złota mogą mieć przestrajalny zlokalizowany powierzchniowy rezonans plazmonowy w obszarze widmowym NIR, w oparciu o ich właściwości fizyczne i chemiczne. Co więcej, szerokie spektrum absorpcyjne jednościennych nanorurek węglowych może zapewnić szeroką opcję wyboru długości fali.
    4. Światło wychodzące z przestrajalnego lasera jest dostarczane do sferycznej soczewki stożkowej przez pryzmaty kąta prostego (PS908, Thorlabs).
    5. Wzór wiązki światła w kształcie pączka jest generowany po przejściu światła przez sferyczną soczewkę stożkową. Domowa soczewka stożkowa wykonana jest z soczewki BK7, a kąt stożka wynosi 152°. Średnica soczewki wynosi 2,5 cm.
    6. Rozchodząca się wiązka światła w kształcie pączka jest przekierowywana przez kondensator optyczny, wykonany z przezroczystego arkusza akrylowego. Średnice górnej i dolnej powierzchni wynoszą odpowiednio 6,1 i 4,8 cm. Grubość skraplacza wynosi 2,5 cm. Przekierowana wiązka światła w kształcie pierścienia tworzy na powierzchni tkanki kształt pączka z ciemnym środkiem.
    7. Wykorzystaj mały pojemnik na wodę, aby wzmocnić sprzężenie akustyczne. Pojemnik na wodę ma dolny otwór owinięty przezroczystą cienką folią polietylenową, która jest optycznie i akustycznie przezroczysta. Małe zwierzęta są umieszczane pod pojemnikiem na wodę.
    8. Generowane fale PA są wykrywane przez sferycznie zogniskowany przetwornik ultradźwiękowy (V308; Olympus NDT; 5 MHz częstotliwości centralnej), który jest zamontowany w środku kondensatora optycznego. Średnica elementu i ogniskowa przetwornika wynoszą odpowiednio 1,9 i 2,5 cm. Zatem liczba f przetwornika wynosi ~1,3.
    9. Rozdzielczość poprzeczna i osiowa wynoszą odpowiednio 590 i 144 μm.
    10. Wykryte fale PA są najpierw wzmacniane przez szerokopasmowy impulsator/odbiornik ultradźwiękowy (5072PR; Olympus NDT; Szerokość pasma 35 MHz i wzmocnienie RF 59 dB), a następnie uzyskane za pomocą oscyloskopu (TDS5054; Tektronix).
    11. Uzyskaj jednowymiarowe obrazy rozdzielcze w czasie (zwane linią A), mierząc czasy nadejścia fal PA. Obecnie przyjmuje się, że prędkość fal PA wynosi 1480 m/s w całej akwizycji obrazu. Dwu- (zwane B-skanami) i trójwymiarowe obrazy PA można uzyskać, mechanicznie przesuwając liniowy stolik skanowania rastrowego (XY6060; Danaher Dover).
    12. Czas obrazowania wynosi ~25 min dla jednego wolumetrycznego obrazu PA o pojedynczej długości fali o polu widzenia (FOV) 2,5 x 2,4x 1,5cm3 w płaszczyznach x-y-z. Pobraliśmy 125 próbek wzdłuż kierunku x z krokiem 0,2 mm, 60 próbek wzdłuż kierunku y z krokiem 0,4 mm. Uzyskano 500 punktów danych z częstotliwością próbkowania 50 MHz wzdłuż kierunku z. Skanowanie mechaniczne jest kontrolowane przez domowy system oprogramowania NI LabVIEW.
    13. Dane objętościowe są reprezentowane przez projekcję maksymalnej amplitudy (MAP) za pomocą systemu oprogramowania MathWorks MATLAB.
  2. Wyrównanie systemu
    1. Po sferycznej soczewce stożkowej upewnij się, że wzór wiązki ma idealny kształt pierścienia. Jeśli wzór wiązki w kształcie pączka nie jest prawidłowo generowany, dominujące są sygnały PA pochodzące z powierzchni skóry. W związku z tym trudno jest uzyskać głębokie obrazowanie tkanek.
    2. Skupienie światła w kształcie linii w wodzie powinno być współosiowo wyrównane ze strefą ogniskową ultradźwięków. Jeśli nie są one wyrównane współosiowo, system cierpi z powodu niskiego stosunku sygnału do szumu.
    3. Energia napromieniowanego impulsu laserowego na powierzchni skóry waha się od ~1 - 2 mJ/cm2, gdy długość fali jest dostrojona odpowiednio od 680 do 1,000 nm. Te energie impulsów laserowych są znacznie niższe niż limit bezpieczeństwa American National Standards Institute i wahają się odpowiednio od 20 do 80 mJ/cm2 w całym zakresie widmowym.

2. Procedury obrazowania in vivo i ex vivo

  1. Przygotowanie zwierząt
    1. We wszystkich eksperymentach obrazowania PA należy używać samic szczurów Spraque-Dawley o masie ciała 200 - 250 g.
    2. Na początek znieczulij szczura przez dootrzewnowe wstrzyknięcie mieszaniny ketaminy (85 mg/kg masy ciała) i ksylazyny (15 mg/kg).
    3. Zrób depilację włosów w okolicy brzucha.
    4. Umieść szczura na szczycie wykonanego na zamówienie uchwytu na zwierzęta.
    5. Pokryj cewnik o rozmiarze 22 smarem, aby poprawić wprowadzanie cewnika.
    6. Trzymaj cewnik pionowo nad otworem cewki moczowej. Następnie włóż dystalny koniec cewnika poziomo do cewki moczowej, aż piasta cewnika w końcu dotrze do otworu.
    7. Mocz w pęcherzu moczowym będzie odprowadzany przez cewnik.
  2. Obrazowanie PAC in vivo
    1. Umieść szczura, znajdującego się na górze uchwytu na zwierzę, poniżej pojemnika na wodę w systemie PAC.
    2. Nałóż żel ultradźwiękowy (Sonotech) między powierzchnię skóry zwierzęcia a membranę z tworzywa sztucznego, aby poprawić sprzężenie akustyczne.
    3. W pełni znieczulić szczura za pomocą odparowanego izofluranu (1 l / min tlenu i 0,75% izofluranu) podczas eksperymentów obrazowania PA in vivo.
    4. Uzyskaj kontrolny obraz PA przed wstrzyknięciem środków kontrastowych.
    5. Wprowadzić do pęcherza moczowego przez cewnik wodny roztwór błękitu metylenowego (0,8 μl/g masy ciała o stężeniu 30 mM), złotych nanokątek (1,2 μl/g masy ciała o stężeniu 2 nM) lub jednościennych nanorurek węglowych (0,8 μl/g masy ciała o stężeniu 0,3 μM). Użyj strzykawki o pojemności 1 ml z cewnikiem o rozmiarze 22.
    6. Zrób serię obrazów PA.
  3. Obrazowanie PAC ex vivo
    1. Ofiarować szczura po obrazowaniu PAC in vivo, wstrzykując nadmiar pentobarbitalu.
    2. Usuń dwa główne narządy, pęcherze i nerki, aby zbadać biodystrybucję, i na szklanej płytce.
    3. Umieść szklaną płytkę pod zbiornikiem na wodę w systemie PAC.
    4. Nałożyć żel ultradźwiękowy (Sonotech) między wycięte narządy a plastikową membranę, aby poprawić sprzężenie akustyczne.
    5. Pozyskiwanie obrazów PA.
    6. Fotoakustycznie zobrazuj narządy pobrane od zdrowego szczura jako kontrolę.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Wyniki

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Rycina 1 przedstawia niejonizującą i nieinwazyjną metodę PAC in vivo z wykorzystaniem optycznie mętnego błękitu metylenowego (MB). Kontrolny obraz PA uzyskano przy 667 nm, w szczycie absorpcji optycznej dla MB (Rycina 1A). Chociaż naczynia krwionośne w polu widzenia (FOV) są wyraźnie widoczne, pęcherz jest niewidoczny, ponieważ przy tej długości fali jest on optycznie przezroczysty. Jak pokazano na Rycynie 1B, pęcherz jest wyraźnie widoczny na obrazie PA utrwalo...

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Dyskusja

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Podsumowując, pokazaliśmy możliwość niejonizacji PAC za pomocą nietoksycznych absorberów optycznych w modelu szczurzym in vivo. Udało nam się zobrazować pęcherz szczura wypełniony absorbentami optycznymi przy użyciu naszego niejonizującego i nieinwazyjnego systemu PAC. W naszym podejściu rozwiązano dwie krytyczne kwestie bezpieczeństwa: (1) wykorzystanie promieniowania niejonizującego do zastosowań cystograficznych oraz (2) brak akumulacji środków kontrastowych w organizmie.

Nasze zai...

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Oświadczenia

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Wszystkie eksperymenty na zwierzętach były zgodne z zaleceniami Uniwersytetu Stanowego Nowego Jorku w Buffalo Institutional Animal Care and Use Committee.
Autorzy nie mają nic do ujawnienia.

Podziękowania

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Ta praca była częściowo wspierana przez grant z programu badań pilotażowych Centrum Badań Klinicznych i Translacyjnych Uniwersytetu w Buffalo oraz Buffalo Translational Consortium, grant od Roswell Park Alliance Foundation, fundusze startowe z Uniwersytetu w Buffalo, IT Consilience Creative Program of MKE i NIPA (C1515-1121-0003) oraz grant NRF MEST (2012-0009249).

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
Q-switched Nd:YAG laserContinuumSLII-10pompa
laser OPOContinuumSurelite OPO PLUSprzestrajalny laser
PryzmatyThorlabsPS908światło dostarczają
Przetwornik ultradźwiękowyOlympus NDTV3085 MHz
Ultraoundpulser/odbiornikWzmacniacz Olympus NDT5072PR
OscyloskopTektronixTDS5054akwizycja danych
Etap skanowaniaDanaher DoverXY6060skanowanie rastrowe
Błękit metylenowySigma-AldrichM9140-25G
środek kontrastowy SzczuryHarlanSpague-Dawleyzwierzę temat
Waporyzator izoflouranEuthanexEZ-155znieczulenie
Żel ultradźwiękowySonotechClear Image pojedyncze sprzężenie akustyczne

Bibliografia

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Riccabona, M. Cystography in infants and children: a critical appraisal of the many forms with special regard to voiding cystourethrography. Eur. Radiol. 12 (12), 2910-2918 (2002).
  2. Khattar, N., Dorairajan, L. N., Kumar, S., Pal, B. C., Elangovan, S., Nayak, P. Giant obstructive megaureter causing contralateral ureteral obstruction and hydronephrosis: a first-time report. Urology. 74 (6), 1306-1308 (2009).
  3. Lim, R. Vesicoureteral reflux and urinary tract infection: evolving practices and current controversies in pediatric imaging. AJR Am. J. Roentgenol. 192 (5), 1197-1208 (2009).
  4. Scardapane, A., Pagliarulo, V., Ianora, A. A., Pagliarulo, A., Angelelli, G. Contrast-enhanced multislice pneumo-CT-cystography in the evaluation of urinary bladder neoplasms. Eur. J. Radiol. 66 (2), 246-252 (2008).
  5. Verpoorten, C., Buyse, G. M. The neurogenic bladder: medical treatment. Pediatr. Nephrol. 23 (5), 717-725 (2008).
  6. Ron, E. Let's not relive the past: a review of cancer risk after diagnostic or therapeutic irradiation. Pediatr. Radiol. 32 (10), 739-744 (2002).
  7. Berrington De Gonzalez, A., Darby, S. Risk of cancer from diagnostic X-rays: estimates for the UK and 14 other countries. Lancet. 363 (9406), 345-351 (2004).
  8. Kim, C., Favazza, C., Wang, L. V. In vivo photoacoustic tomography of chemicals: high-resolution functional and molecular optical imaging at new depths. Chem. Rev. 110 (5), 2756-2782 (2010).
  9. Ke, H., Erpelding, T. N., Jankovic, L., Liu, C., Wang, L. V. Performance characterization of an integrated ultrasound, photoacoustic, and thermoacoustic imaging system. J. Biomed. Opt. 17 (5), 056010(2012).
  10. Akers, W. J., Kim, C., Berezin,, et al. Noninvasive Photoacoustic and Fluorescence Sentinel Lymph Node Identification using Dye-Loaded Perfluorocarbon Nanoparticles. Acs Nano. 5 (1), 173-182 (2011).
  11. Jiao, S. L., Jiang, M. S., Hu, J., et al. Photoacoustic ophthalmoscopy for in vivo retinal imaging. Opt. Express. 18 (4), 3967-3972 (2010).
  12. Kim, C., Cho, E. C., Chen, J., et al. In vivo molecular photoacoustic tomography of melanomas targeted by bioconjugated gold nanocages. Acs Nano. 4 (8), 4559-4564 (2010).
  13. Kim, C., Song, H. M., Cai, X., Yao, J., Wei, A., Wang, L. V. In vivo photoacoustic mapping of lymphatic systems with plasmon-resonant nanostars. J. Mater. Chem. 21 (9), 2841-2844 (2011).
  14. Wang, X., Pang, Y., Ku, G., Xie, X., Stoica, G., Wang, L. V. Noninvasive laser-induced photoacoustic tomography for structural and functional in vivo imaging of the brain. Nat. Biotechnol. 21 (7), 803-806 (2003).
  15. Xie, Z., Roberts, W., Carson, P., Liu, X., Tao, C., Wang, X. Evaluation of bladder microvasculature with high-resolution photoacoustic imaging. Opt. Lett. 36 (24), 4815-4817 (2011).
  16. Zhang, H. F., Maslov, K., Stoica, G., Wang, L. V. Functional photoacoustic microscopy for high-resolution and noninvasive in vivo imaging. Nat. Biotechnol. 24 (7), 848-851 (2006).
  17. Kim, C., Jeon, M., Wang, L. V. Nonionizing photoacoustic cystography in vivo. Opt. Lett. 36 (18), 3599-3601 (2011).
  18. Homan, K., Kim, S., Chen, Y. S., Wang, B., Mallidi, S., Emelianov, S. Prospects of molecular photoacoustic imaging at 1064 nm wavelength. Opt. Lett. 35 (15), 2663-2665 (2010).
  19. Chang, S. L., Shortliffe, L. D. Pediatric urinary tract infections. Pediatr. Clin. N. Am. 53 (3), 379(2006).
  20. Stratton, K. L., Pope, J. C., Adams, M. C., Brock, J. W., Thomas, J. C. Implications of Ionizing Radiation in the Pediatric Urology. 183 (6), 2137-2142 (2010).
  21. Ermilov, S. A., Khamapirad, T., Conjusteau, A., et al. Laser optoacoustic imaging system for detection of breast cancer. J. Biomed. Opt. 14 (2), 024007(2009).
  22. Erpelding, T. N., Kim, C., Pramanik, M., et al. Sentinel lymph nodes in the rat: noninvasive photoacoustic and US imaging with a clinical US system. Radiology. 256 (1), 102-110 (2010).
  23. Kim, C., Erpelding, T. N., Jankovic, L., Wang, L. V. Performance benchmarks of an array-based hand-held photoacoustic probe adapted from a clinical ultrasound system for non-invasive sentinel lymph node imaging. Philos. Transact. A. Math Phys. Eng. Sci. 369 (1955), 4644-4650 (1955).
  24. Kim, C., Song, K. H., Gao, F., Wang, L. V. Sentinel lymph nodes and lymphatic vessels: noninvasive dual-modality in vivo mapping by using indocyanine green in rats--volumetric spectroscopic photoacoustic imaging and planar fluorescence imaging. Radiology. 255 (2), 442-450 (2010).
  25. Kruger, R. A., Kiser, W. L., Reinecke, D. R., Kruger, G. A. Thermoacoustic computed tomography using a conventional linear transducer array. Medical Physics. 30 (5), 856-860 (2003).
  26. Kruger, R. A., Lam, R. B., Reinecke, D. R., Del Rio, S. P., Doyle, R. P. Photoacoustic angiography of the breast. Med. Phys. 37 (11), 6096-6100 (2010).
  27. Manohar, S., Kharine, A., Van Hespen, J. C., Steenbergen, W., Van Leeuwen, T. G. The Twente Photoacoustic Mammoscope: system overview and performance. Phys. Med. Biol. 50 (11), 2543-2557 (2005).

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Przedruki i uprawnienia

Poproś o pozwolenie na ponowne wykorzystanie tekstu lub ilustracji tego artykułu JoVE

Poproś o pozwolenie

Tagi

obrazowanie w bliskiej podczerwienikontrast z b kitu metylenowegooscylator parametrycznyprzetwornik ultrad wi kowyobrazowanie p cherza moczowego szczuraobrazowanie nieinwazyjneenergia impulsu laserowegospektroskopowe obrazowanie PAobrazowanie ex vivo

Powiązane artykuły