$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Najpierw opisujemy syntezę i oczyszczanie PEG-MM B z 3 kDa O-(2-aminoetylo)glikolu polietylenowego (PEG-NH2) i estru norbornen-N-hydroksysukcynimidylu (NHS). Ten pierwszy związek można nabyć w firmie Sigma Aldrich Inc. lub otrzymać metodą polimeryzacji anionowej zgodnie z procedurami literaturowymi22,23. Ten ostatni związek można przygotować w dwóch etapach zgodnie z opublikowaną procedurą21. Następnie opisujemy syntezę katalizatora A z dostępnego na rynku katalizatora Grubbsa 2. generacji. Następnie demonstrujemy zastosowanie tego kompleksu do syntezy BASP najpierw pędzlem. W tym eksperymencie szczegółowo opisano procedurę tworzenia BASP z N = 10, 15 i 20 z BI z DP = 10. Wszystkie reakcje przeprowadzono w dygestorii przy użyciu standardowych fiolek scyntylacyjnych.
UWAGA: Zawsze noś rękawice, fartuch laboratoryjny i okulary laboratoryjne oraz przestrzegaj powszechnych praktyk bezpieczeństwa w laboratorium podczas pracy z niebezpiecznymi chemikaliami. Z każdym rozpuszczalnikiem organicznym należy obchodzić się pod wyciągiem. Cząstki stałe można ważyć na wadze znajdującej się na zewnątrz dygestorium. Chemikalia nie powinny mieć kontaktu ze skórą, oczami ani ustami. Zdecydowanie zaleca się przeczytanie karty charakterystyki dla każdego rozpuszczalnika i ciała stałego użytego w tej procedurze przed rozpoczęciem.
1. Przygotowanie PEG-MM B
- Dodać PEG-NH2 (300 mg, 0,0001 mol, 1,0 eq) do 40 ml fiolki scyntylacyjnej wyposażonej w mieszadło.
- Rozpuścić PEG-NH2 w 3 ml bezwodnego N,N-dimetyloformamidu (DMF).
- Dodać 36 mg estru norbornenu-NHS (0,000105 mol, 1,05 eq)21.
- Zamknąć fiolkę i mieszać mieszaninę reakcyjną przez noc w temperaturze pokojowej.
- Usunąć mieszadło i dodać eter dietylowy do roztworu reakcyjnego w celu wytrącenia PEG-MM B.
- Przefiltrować biały puszysty osad i obficie przemyć eterem dietylowym. Alternatywnie można przenieść zawiesinę do probówki wirówkowej o długości 50 m, odwirować z prędkością 4 000 obr./min przez 5 minut w temperaturze pokojowej, a następnie zdekantować supernatant. Dodać świeży eter dietylowy, odwirować i ponownie zdekantować. Zalecamy powtórzenie tej procedury 3 razy, co daje w sumie 5 razy.
- Suszyć osad w próżni przez 24 godziny w celu usunięcia pozostałości eteru dietylowego.
2. Oczyszczanie PEG-MM
W naszym poprzednim raporcie, PEG-MM B został przygotowany z komercyjnie dostępnego PEG-NH2 i był używany do syntezy BASP bez dalszego oczyszczania po wysuszeniu (tj. po kroku 1.7). W tym badaniu zmieniamy źródło PEG-NH2 (komercyjne i domowe) i porównujemy wyniki tworzenia BASP przed i po bardziej rygorystycznym oczyszczaniu MM metodą preparatywnej wysokosprawnej chromatografii cieczowej (prep-HPLC). W pozostałej części tego badania wysuszony MM uzyskany po kroku 1.7 jest określany jako B1. Prep-HPLC użyto do oczyszczenia B1 w celu uzyskania B2. Analogiczny oczyszczony MM pre-HPLC syntetyzowany w naszym laboratorium poprzez polimeryzację anionową jest określany jako B3. Prep-HPLC przeprowadzono przy użyciu HPLC Beckmann Coulter (moduł rozpuszczalnika 127p i moduł detektora 166p) z pętlą próbki o pojemności 1 ml i kolumną Agilent Zorbax 300SB-C18 PrepHT z odwróconymi fazami w temperaturze pokojowej.
- Skonfigurować HPLC z rozpuszczalnikiem A: woda dejonizowana (system oczyszczania Millipore, 18,2 Ω) z 1% kwasem octowym; rozpuszczalnik B: acetonitryl.
- Zalać pompy i kolumnę równoważącą 95% A i 5% B.
- Rozpuścić PEG-MM w acetonitrylu lub MeOH (150 mg/ml).
- Przefiltrować przez nylonowy filtr strzykawkowy 13 mm 0,45 μm.
- Ustaw metodę HPLC:
- Natężenie przepływu: 20 ml/min
- 0-1 min: gradient liniowy do 10% B i 90% A
- 1-10 min: gradient liniowy do 90% B i 10% A
- 10-13 min: przełącz się na warunki początkowe (5% B i 95%) i ponownie wyrównaj kolumnę
- Ustaw detektor UV tak, aby wykrywał absorbancję przy 256 nm
- Załadować 0,8 ml próbki do pętli próbki.
- Wstrzyknąć próbkę.
- Zebrać główny pik absorpcji (w określonych warunkach produkt wymywa się między 5-7 minutami).
- Powtórz w razie potrzeby. Połączyć ze sobą czyste frakcje w kolbie okrągłodennej.
- Usuń cały rozpuszczalnik przez odparowanie obrotowe.
- Ponownie rozpuścić produkt w dichlorometanie i dodać siarczan sodu. Delikatnie wstrząsać lub mieszać kolbę okresowo przez ≅ 1 godzinę.
- Przefiltrować mieszaninę za pomocą filtra ze spiekanego szkła.
- Koncentrat poprzez odparowanie rotacyjne. Suszyć w odkurzaczu przez noc.
- PEG-MM można scharakteryzować za pomocą 1H-NMR w CD2Cl2 (15-20 mg/0,7 ml CD2Cl2, zalecane jest 500 MHz lub wyższe przy ponad 128 skanach i opóźnieniu relaksacji, d1 = 2,0 s) oraz MALDI-TOF przy użyciu trybu jonizacji dodatniej i kwasu 2-(4-hydroksyfenyloazo)benzoesowego jako matrycy MALDI.
- PEG-MM może być przechowywany przez wiele miesięcy w fiolce scyntylacyjnej w temperaturze 4 °C.
3. Przygotowanie katalizatora A
- Dodać katalizator Grubbs 2. generacji (500 mg, 0,589 mmol) do 20 ml fiolki wyposażonej w mieszadło.
- Dodać pirydynę (około 0,474 ml, 5,89 mmol, 10 eq) do fiolki. Kolor roztworu powinien natychmiast zmienić się z czerwonego na zielony. Pozwól reakcji mieszać, aż cały czerwony kolor zniknie, a roztwór stanie się lepki (15-30 min).
- Napełnij fiolkę reakcyjną zimnym pentanem, aby wytrącić kompleks A.
- Przefiltrować zawiesinę, aby zebrać zielony osad (katalizator A). Przemyć 4x 15 ml zimnego pentanu.
- Wysuszyć zielone ciało stałe w próżni przez noc.
- Kompleks A może być przechowywany przez wiele miesięcy w temperaturze pokojowej w eksykatorze laboratoryjnym bez znacznej utraty aktywności. Dla dodatkowych środków ostrożności zazwyczaj przechowujemy kompleks w zamrażarce w temperaturze -20 °C w schowku na rękawiczki. Dla wygody wstępnie ważymy znane ilości A do 4 ml fiolek scyntylacyjnych natychmiast po wysuszeniu (krok 3.5). Następnie przechowujemy te fiolki w zamrażarce w komorze rękawicowej. Gdy jesteśmy gotowi do przeprowadzenia reakcji ROMP, po prostu wyjmujemy jedną fiolkę z komory rękawicowej i używamy zgodnie z opisem poniżej (krok 4.4).
4. Przygotowanie roztworu podstawowego żywego polimeru pędzla (BI) o DP = 10
- W fiolce o pojemności 3 ml z gazoszczelną nakrętką wyposażoną w mieszadło odważyć 65 mg (0,020 mmol, 10 eq) MM B. Ilość ta odpowiada 20 mg MM dla każdej z 3 różnych wielkości BASP i 5 mg pozostałym do analizy GPC BI. Za pomocą szpatułki dodać MM bezpośrednio na dno fiolki. Należy starać się zapobiegać przywieraniu materiału do ścianek fiolki, ponieważ taki scenariusz może prowadzić do zanieczyszczenia MM w końcowym produkcie BASP.
- Rozpuścić MM B w 158 μl THF. Po dodaniu THF należy natychmiast zakryć fiolkę, aby uniknąć odparowania rozpuszczalnika. Uwaga: Końcowe stężenie MM podczas polimeryzacji powinno wynosić 0,05 M. Jeśli doda się tutaj 158 μl THF, to zostanie dodane 243 μl roztworu katalizatora, krok 4.4, aby uzyskać 401 μl całkowitego THF, co odpowiada [MM] = 0,05 M. Ilość rozpuszczalnika na tym etapie może być zmieniana, o ile ilość rozpuszczalnika na etapie 4.4 jest również zróżnicowana tak, aby uzyskać [MM] 0,05. Odkryliśmy, że polimerizacje przeprowadzane za pomocą [MM] < 0,05 czasami nie przechodzą do pełnej konwersji.
- Pozwól roztworowi mieszać, aż cały MM się rozpuści. W razie potrzeby lekko podgrzej. Należy unikać rozpryskiwania lepkiego roztworu na boki lub wieczko fiolki.
- Następnie dodać znaną ilość (w tym przykładzie 2,8 mg) katalizatora A do fiolki o pojemności 3 ml (lub uzyskać fiolkę z wstępnie zważonym katalizatorem A). Dodać bezwodny THF (w tym przykładzie 466 μl), aby otrzymać roztwór katalizatora o stężeniu 6 mg/ml. Natychmiast zamknąć fiolkę. Pozwól katalizatorowi całkowicie się rozpuścić; W razie potrzeby delikatnie wstrząsnąć fiolką. Ten roztwór katalizatora należy natychmiast zużyć do ROMP. Uwaga 1: Roztwór katalizatora powinien mieć kolor leśnej zieleni. Jeśli jest lub zielonkawo-brązowy, to prawdopodobnie uległ rozkładowi i prawdopodobnie nie przyniesie zadowalających wyników ROMP. Jeśli dojdzie do rozkładu, sugerujemy przygotowanie świeżego katalizatora (zgodnie z sekcją 3 powyżej) lub użycie świeżo destylowanego THF. Uwaga 2: Ilość THF dodawana do A jest tak dobrana, aby zapewnić, że końcowa wartość [MM] wynosi ~0,05. Ilość tę można dostosować, o ile w kroku 4.2 zostaną dokonane korekty kompensacyjne roztworu MM.
- Szybko (nie kroplami) dodać 243 μl (1,46 mg; 1 eq do B) roztworu katalizatora do mieszającego roztworu MM. Staraj się, aby końcówka igły znajdowała się tuż nad roztworem MM podczas dodawania do fiolki. Należy unikać rozpryskiwania mieszaniny reakcyjnej na boki i nakrętkę fiolki, ponieważ rozpryskiwanie może prowadzić do pozostałości MM i BI w końcowym BASP.
- Natychmiast zakryj fiolkę i pozwól mieszaninie reakcyjnej mieszać się przez 15 minut, aby utworzyć makroinicjator pędzelkowy (BI).
5. Tworzenie BASP
- Dodać 3,6±0,1 mg (6,18 μmol, 10 eq do ilości BI do przeniesienia w kroku 5.2), 5,5 ± 0,1 mg (9,28 μmol,15 eq do ilości BI do przeniesienia w kroku 5.2) i 7,3±0,1 mg (12,4 μmol, 20 eq do ilości BI do przeniesienia w kroku 5.2) środka sieciującego C do trzech oddzielnych fiolek o pojemności 3 ml wyposażonych w mieszadła. Spróbować zważyć środek sieciujący bezpośrednio na dnie fiolki, aby zapobiec przywieraniu materiału do ścianek fiolki. Uwaga: Środek sieciujący C nie jest dobrze rozpuszczalny w THF. Z tego powodu bryła jest używana bezpośrednio na tym etapie. W przypadkach, gdy środek sieciujący jest rozpuszczalny, można przygotować skoncentrowany roztwór podstawowy środka sieciującego i przenieść różne ilości tego roztworu do fiolek. Ponownie stężenie końcowych polimeryzacji powinno wynosić >0,05 M; Jeżeli do środka sieciującego dodaje się rozpuszczalnik, wówczas kompensacyjną redukcję rozpuszczalnika należy przeprowadzić w innym miejscu.
- Dodać 123 μl (0,618 μmol) roztworu BI do każdej z trzech fiolek zawierających C. Staraj się, aby końcówka igły znajdowała się tuż nad solidnym środkiem sieciującym podczas dodawania do fiolki. Dodaj rozwiązanie analizy biznesowej za jednym razem, a nie kroplami.
- Zakręć fiolki i mieszaj reakcje w temperaturze pokojowej aż do zakończenia. Dzięki tej specyficznej kombinacji MM i środka sieciującego reakcja jest zakończona w ciągu ~ 4 godzin; Ciągłe mieszanie przez okres do 24 godzin nie ma zauważalnego wpływu na wzrost BASP. Monitorowanie przez GPC w celu zapewnienia pełnej konwersji BI.
- Reakcje schładzać przez dodanie jednej kropli eteru etylowo-winylowego do pozostałego roztworu BI i każdej z mieszanin reakcyjnych N = 10, 15 i 20 BASP. Mieszaj przez 10 minut, aby zapewnić całkowite hartowanie.
6. Przygotowanie próbki GPC
Wyniki GPC-MALLS uzyskano na systemie Agilent 1260 LC wyposażonym w kolumnę Shodex GPC KD-806M, detektor Wyatt Dawn Heleos-II MALLS oraz detektor indeksu refrakcji Wyatt Optilab t-rEX w temperaturze pokojowej. Jako eluent zastosowano DMF o stężeniu 0,025 M LiBr i natężeniu przepływu 1,0 ml/min. Wyniki zostały przeanalizowane za pomocą oprogramowania Astra 6 dostarczonego przez firmę Wyatt.
- Używając nowej szklanej pipety do każdej fiolki reakcyjnej, zanurzyć końcówkę pipety w roztworze reakcyjnym, aby pobrać małą próbkę reakcji. Przepłukać wnętrze pipety 250 μl 0,025 M LiBr w DMF, aby uzyskać końcowe stężenie około 3 mg/ml.
- Przefiltrować rozcieńczoną próbkę przez filtr politetrafluoroetylenowy 0,45 μm przed umieszczeniem próbki w fiolce GPC.
- Skonfiguruj przebiegi GPC-MALLS i przeanalizuj wyniki po ich zakończeniu.
Lista skrótów:
A: Katalizator bis-pirydynowy3-ciej generacji Grubbsa
B: makromonomer poli(glikolu etylenowego) (PEG) (MM)
B1: PEG MM przygotowany przy użyciu dostępnego na rynku (Aldrich) PEG-NH2 i używany bez oczyszczania HPLC.
B2: PEG MM przygotowany przy użyciu dostępnego na rynku (Aldrich) PEG-NH2 i użyty po oczyszczeniu metodą HPLC.
B3: PEG MM przygotowany przy użyciu nowo zsyntetyzowanego PEG-NH2 i użyty po oczyszczeniu metodą HPLC.
BASP: polimer gwiaździsty z ramieniem szczotki
BI: żywy inicjator pędzla
C: fotodegradowalny środek sieciujący
Ð: wskaźnik dyspersji masy molowej
DMF: N,N-dimetyloformamid
DP: liczba średniego stopnia polimeryzacji
GPC: chromatografia żelowa
Prep-HPLC: preparatywna chromatografia cieczowa o wysokiej wydajności
MALLS: wielokątowe rozpraszanie światła laserowego
MM: makromonomer
MW: masa cząsteczkowa
Mw: średnia masa molowa
N: liczba odpowiedników sieciujących (stosunek C do A)
NHS: N-hydroksysukcynimidyl
PEG: glikol polietylenowy
PEG-MM: makromonomer norbornen-PEG (określany również jako związek B)
ROMP: polimeryzacja metatezy z otwarciem pierścienia
THF: tetrahydrofuran