$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
U roślin kwitnących, przejście od losu komórek somatycznych do rozrodczych jest zaznaczone przez specyfikację komórek macierzystych zarodników (SMC) w organach kwiatowych dorosłej rośliny. Samica SMC (komórka macierzysta megaspory, MMC) różnicuje się w zawiązku zalążka i ulega mejozy. Wyselekcjonowana haploidalna megaspora przechodzi następnie mitozę, tworząc wielokomórkowy żeński gametofit, który da początek gametom, komórce jajowej i komórce centralnej, wraz z komórkami dodatkowymi. Ograniczona dostępność MMC, mejocytów i żeńskiego gametofitu wewnątrz zalążka stanowi techniczne wyzwanie dla analiz cytologicznych i cytogenetycznych na poziomie pojedynczej komórki. W szczególności bezpośrednia lub pośrednia immunodetekcja epitopów komórkowych lub jądrowych jest upośledzona przez słabą penetrację odczynników do wnętrza komórki roślinnej, a obrazowanie pojedynczych komórek jest utrudnione przez brak przejrzystości optycznej w tkankach pełnomocowanych.
Dlatego opracowaliśmy skuteczną metodę analizy organizacji jądra i modyfikacji chromatyny w wysokiej rozdzielczości pojedynczej komórki w zalążkach Arabidopsis osadzonych w całości. Polega ona na rozwarstwieniu i zatopieniu utrwalonych zalążków w cienkiej warstwie żelu akrylowego na mikroskopijnym szkiełku. Osadzone zalążki poddawane są zabiegom chemicznym i enzymatycznym mającym na celu poprawę klarowności tkanek i przepuszczalności odczynników do barwienia immunologicznego. Zabiegi te zachowują organizację komórkową i chromatynę, DNA i epitopy białek. Próbki mogą być wykorzystywane do różnych dalszych analiz cytologicznych, w tym barwienia immunologicznego chromatyny, fluorescencyjnej hybrydyzacji in situ (FISH) i barwienia DNA do analizy heterochromatyny. Obrazowanie konfokalnej laserowej mikroskopii skaningowej (CLSM) o wysokiej rozdzielczości, a następnie rekonstrukcja 3D pozwala na pomiary ilościowe w rozdzielczości pojedynczej komórki.