Artykuł metodologiczny

Procedury biopsji mięśni szkieletowych człowieka z wykorzystaniem zmodyfikowanej techniki Bergströma

DOI:

10.3791/51812

⸱

10 września 2014

 ,  ,  ,  ,  , 
1Human Performance Laboratory, North Carolina Research Campus, Appalacian State University, 2College of Health Sciences, Appalachian State University, 3Department of Emergency Medicine, Carolinas Medical Center NorthEast

W tym artykule

Podsumowanie

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Celem tego filmu jest przedstawienie zmodyfikowanej techniki biopsji mięśni szkieletowych Bergströma na ludziach.

Streszczenie

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Technika przezskórnej biopsji umożliwia badaczom i klinicystom pobieranie próbek tkanki mięśni szkieletowych. Technika jest bezpieczna i wysoce skuteczna. Ten film opisuje technikę biopsji przezskórnej z użyciem zmodyfikowanej igły Bergströma w celu uzyskania próbek tkanki mięśni szkieletowych z mięśnia obszernego bocznego u ludzi. Igła Bergströma składa się z zewnętrznej kaniuli z małym otworem ("okienkiem") z boku końcówki i wewnętrznego trokaru z ostrzem tnącym na dystalnym końcu. W znieczuleniu miejscowym i w warunkach aseptycznych igła jest wprowadzana do mięśnia szkieletowego przez nacięcie w skórze, tkance podskórnej i powięzi. Następnie ssanie jest przykładane do wewnętrznego trokaru, zewnętrzny trokar jest odciągany do tyłu, tkanka mięśni szkieletowych jest wciągana do okna zewnętrznej kaniuli przez ssanie, a wewnętrzny trokar jest szybko zamykany, przecinając w ten sposób lub przycinając próbkę tkanki mięśni szkieletowych. Igła jest obracana o 90° i wykonywane jest kolejne cięcie. Proces ten można powtórzyć jeszcze trzy razy. Ta technika wielokrotnego cięcia zazwyczaj wytwarza próbkę 100-200 mg lub więcej u zdrowych osób i może być wykonana bezpośrednio przed, w trakcie i po treningu lub innej interwencji. Po opatrunku pobiopsyjnym w miejscu nacięcia, pacjenci zazwyczaj od razu wznawiają swoje codzienne czynności i mogą w pełni uczestniczyć w energicznej aktywności fizycznej w ciągu 48-72 godzin. Pacjenci powinni unikać ciężkich ćwiczeń oporowych przez 48 godzin, aby zmniejszyć ryzyko przepukliny mięśnia przez nacięcie w powięzi.

Wprowadzenie

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Technika przezskórnej lub 'półotwartej' biopsji jest stosowana do pobierania próbek tkanki mięśni szkieletowych od pacjentów i uczestników badań. Duchenne (1806-1875) jest uznawany za pierwszego, który skonstruował igłę z trokarem w celu uzyskania mięśni szkieletowych od żywych osób za pomocą przezskórnej biopsji1. W latach sześćdziesiątych Bergström wprowadził igłę do biopsji przezskórnej, podobną do tej opisanej przez Duchenne'a2-4. Dwadzieścia lat później Evans i wsp.5 zmodyfikował technikę, stosując odsysanie przez trokar tnący igły Bergströma. Modyfikacja ta może zwiększyć wydajność tkanki od 3 do 5 razy6,7 i jest stosowana w badaniach klinicznych i biomedycznych. Technika ta przyczyniła się i będzie nadal wspierać diagnostykę miopatii oraz nasze zrozumienie struktury i funkcji mięśni szkieletowych.

Technika przezskórnej biopsji mięśni jest prosta. Przy prawidłowym wykonaniu, przy ścisłym przestrzeganiu techniki aseptycznej, związane z tym ryzyko jest minimalne. Procedura biopsji mięśni jest uważana za narzędzie badawcze dla projektów badawczych. Niektóre instytucje akademickie pozwalają wyszkolonym badaczom wydziałowym z doktoratem, pod bezpośrednim nadzorem lekarza, na uzyskanie biopsji mięśni, a inne wymagają certyfikowanego lekarza do wykonania tej techniki. Zespół biopsji ASU z powodzeniem przeprowadził ponad 1600 biopsji mięśni w ciągu ostatnich 13 lat(8-15). Celem tego filmu jest opisanie zmodyfikowanej techniki przezskórnej biopsji mięśni metodą igłowąBergströma 5 w celu uzyskania próbek tkanki mięśni szkieletowych z mięśnia obszernego bocznego u ludzi.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Protokół

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Opisana procedura dotycząca mięśni szkieletowych jest zgodna z wytycznymi Instytucjonalnej Komisji Rewizyjnej Uniwersytetu Stanowego Appalachów.

UWAGA: Zespół składa się z operatora (doktora lub doktora medycyny przeszkolonego w technice biopsji) i co najmniej jednego, a najlepiej trzech lub więcej techników. Operator jest odpowiedzialny za przeprowadzanie i nadzorowanie wszystkich aspektów procedury biopsji mięśni szkieletowych. Jeden technik (technik #1) jest bezpośrednio odpowiedzialny za pomoc operatorowi we wszystkich aspektach ekstrakcji mięśni. Obejmuje to bycie "niesterylnymi rękami" i odsysanie za pomocą sterylnej strzykawki. Drugi technik (technik #2) angażuje się w rozmowę z badanym i masuje przeciwległą nogę podmiotu podczas zabiegu, aby zminimalizować niepokój podmiotu. Trzeci technik (technik #3) jest odpowiedzialny za obsługę i przetwarzanie próbki mięśni szkieletowych. Dalsze pomiary analityczne określają, ilu dodatkowych techników jest potrzebnych do przetworzenia/przygotowania próbki mięśni szkieletowych.

1. Przygotowanie do przedmiotu

  1. Zbierz, przygotuj i uporządkuj materiały przeznaczone do procedury biopsji mięśni (Tabela 1). Odkazić i wysterylizować igłę Bergströma (kaniulę zewnętrzną i trokar wewnętrzną) oraz tłok zgodnie ze standardową praktyką16.
  2. Zapoznaj się z formularzem zgody z osobą, której dotyczy temat. Część formularza zgody na uczestnictwo w biopsji mięśni szkieletowych używanego na Uniwersytecie Stanowym Appalachów znajduje się w suplemencie online 1.
    1. Porozmawiaj z pacjentem o ogólnych aspektach procedury biopsji mięśni, koncentrując się na możliwych zagrożeniach związanych z zabiegiem, przygotowaniu skóry, zastosowaniu środka znieczulającego, typowych odczuciach. Poinstruuj uczestnika, aby uważnie przeczytał formularz zgody na udział i podpisał go w celu potwierdzenia, że projekt badania i procedury są zrozumiałe.
  3. Upewnij się, że pacjent nie jest uczulony na leki typu "___caine" (np. lidokainę).
  4. Poinstruuj badanego, aby położył się na wznak na wyściełanym stole z odsłoniętym udem. Umieść dwie jednorazowe chłonne podkładki z plastikowym podkładem pod nogą badanego. Ułóż nogę w zrelaksowany sposób z małym ręcznikiem zwijanym pod piętą, tak aby kolano było całkowicie wyprostowane (uniesione ~1 cm), umieszczając w ten sposób obszerny boczny w skróconej pozycji.
  5. Poproś operatora, aby poinstruował pacjenta, aby chwilowo skurczył odsłonięty mięsień uda, aby można było uwidocznić miejsce biopsji. Uwaga: Miejsce biopsji obszernego bocznego znajduje się tuż przed powięzią szeroką (pasmo kości piszczelowej), około jednej trzeciej odległości między górną częścią rzepki a krętarzem większym7.
  6. Poproś operatora, aby oznaczył miejsce nacięcia tuż poniżej (~0,5 cm) markerem permanentnym z drobnym punktem.
  7. Poproś operatora, aby określił przybliżoną grubość fałdu skórnego poprzez ściśnięcie fałdu skórnego.
  8. Poproś operatora i techników, aby umyli ręce mydłem i ciepłą wodą oraz założyli jednorazowe rękawiczki.
  9. Poproś operatora o usunięcie włosów z obszaru o wymiarach ~15 cm x 15 cm wokół miejsca biopsji (za pomocą maszynki do strzyżenia). Uwaga: strzyżenie włosów z miejsca biopsji zapobiega przedostawaniu się włosów do nacięcia podczas zabiegu i podczas zamykania, a depilacja pozwala na lepszy kontakt między zamknięciami taśmy a skórą (patrz 3.4).
  10. Poproś operatora o wysterylizowanie obszaru za pomocą wacików nasączonych miejscowym środkiem antyseptycznym (takim jak glukonian jodowidonu lub chlorheksydyny w przypadku osób uczulonych na jod/skorupiaki). Zacznij od środka i pracuj koncentrycznie w kierunku zewnętrznej krawędzi przyciętego obszaru. Powtórz co najmniej dwa razy za każdym razem za pomocą nowego, wstępnie namoczonego wacika.

2. Procedura biopsji

  1. Poproś operatora o zdjęcie rękawiczek jednorazowych, umycie rąk mydłem i ciepłą wodą oraz założenie sterylnych rękawic chirurgicznych z zachowaniem zasad aseptyki.
  2. Poproś technika #1 o przedstawienie operatorowi sterylnej zasłony z okienkami. Poproś operatora, aby przy użyciu techniki aseptycznej umieścił serwetę na miejscu biopsji, aby utrzymać sterylne pole.
  3. Poproś technika #1, aby przedstawił operatorowi strzykawkę o pojemności 5 ml wyposażoną w igłę 21 G, zachowując przy tym technikę aseptyczną. Wyczyść górną część fiolki z lidokainą wacikiem nasączonym alkoholem.
    1. Proszę operatora o natychmiastowe pobranie 5 ml lidokainy. Wyjąć igłę 21 G ze strzykawki i wyrzucić igłę do pojemnika na ostre przedmioty.
    2. Poproś technika #1, aby przedstawił operatorowi igłę 1-1/2 cala 25 G, zachowując przy tym technikę aseptyczną. Poproś operatora, aby umieścił igłę 1-1/2 cala na strzykawce i usunął pęcherzyki powietrza ze strzykawki.
  4. Niech technik #1 rozpyli chlorek etylu w miejscu nacięcia (~0,5 cm powyżej nieusuwalnego śladu atramentu na skórze), aż skóra wydaje się "blednąć".
    1. Poproś operatora, aby wbił igłę mniej więcej poziomo do skóry do skóry właściwej, odessał igłę, a następnie naciekł ~100 μl lidokainy, aby wytworzyć "pęcherzyk" o średnicy 2-4 mm.
      1. Poprosić operatora o zassanie igły (nieznaczne wycofanie tłoka strzykawki) w celu upewnienia się, że igła nie została umieszczona w naczyniu krwionośnym. Jeśli w strzykawce pojawi się krew, wyjąć igłę, wyrzucić do pojemnika na ostre przedmioty i rozpocząć ponownie od 2.3.
      2. Poproś operatora, aby wsunął igłę w tkankę podskórną, odessał igłę, a następnie nacieknął tkankę ~1 ml lidokainy, aby utworzyć pęcherzyk. Gdy pęcherzyk ustąpi, włóż igłę 1-1/2 cala na strzykawkę z lidokainą pionowo w miejsce nacięcia, zatrzymując się powierzchownie do powięzi. Uwaga: Pacjent może odczuwać lekkie chwilowe kłucie po pierwszym wstrzyknięciu lidokainy (podobne do użądlenia pszczoły).
    2. Upewnij się, że operator nie infiltruje mięśnia lidocoine, ponieważ jest on miotoksyczny17-19.
    3. Poproś operatora o odessanie igły, a następnie powoli wstrzyknąć pozostałe 4 ml lidokainy, jednocześnie wyjmując igłę z uda. Umieść sterylną gazę w miejscu wstrzyknięcia i pozwól pacjentowi zrelaksować się, podczas gdy znieczulenie miejscowe zacznie działać.
  5. Po 2-3 minutach poproś technika #1 o przedstawienie operatorowi skalpela, zachowując przy tym technikę aseptyczną.
    1. Poproś operatora, aby delikatnie zbadał miejsce biopsji końcówką skalpela, aby upewnić się, że obszar jest znieczulony. W razie potrzeby wstrzyknąć kolejne 3-4 ml lidokainy w miejsce nacięcia, patrz 2.4.1.2.
  6. Poproś operatora, aby wykonał proste 1-centymetrowe nacięcie przez skórę i tkanki podskórne (~ 2-3 mm powyżej śladu atramentu) równolegle do kości udowej.
    1. Poproś operatora, aby wbił skalpel głębiej, aby wykonać nacięcie przez powięź w mięśniu. Zrób to raz w każdym kierunku. Uwaga: Osoba badana może odczuwać ukłucie lub ucisk przy głębszym cięciu, jeśli ostrze skalpela wbije się w mięsień.
    2. Poproś technika #2, aby zaangażował się w rozmowę i masował przeciwną nogę.
  7. Poproś operatora, aby umieścił dużą ilość sterylnej gazy na miejscu nacięcia i biopsji i wywarł bezpośredni nacisk na nacięcie, aby zmniejszyć krwawienie.
    1. Poproś technika #1 o podłączenie 3-kierunkowego metalowego kranu do jednorazowej strzykawki o pojemności 60 ml i rurki przedłużającej o długości 30 cm (Rysunek 1).
    2. Poproś technika #1, aby połączył jeden koniec stożkowego plastikowego łącznika rurki z wolnym końcem rurki przedłużającej i mocno włożył drugi koniec stożkowego plastikowego łącznika rurki do dużego końca końcówki pipety o pojemności 200 μl z odciętą końcówką o długości ~15-18 mm.

figure-protocol-1
Rysunek 1. Igła Bergströma. (A) Igła Bergströma (5 mm) składa się z (a) zewnętrznej kaniuli i (b) wewnętrznego trokaru, powiązane elementy obejmują (c) tłok, (d) końcówkę pipety 200 μl z odcięciem ~15-18 mm, (e) stożkowy łącznik z tworzywa sztucznego, (f) 3-drożny metalowy kran, (g) rurkę przedłużającą 30 cm i (h) jednorazową strzykawkę o pojemności 60 ml. (B) Igła Bergströma (5 mm) i związane z nią elementy zmontowane. (C) Wewnętrzny trokar igły Bergströma (5 mm) cofnięty o około 1 cm otwiera okienko zewnętrznej kaniuli.

  1. Po ustąpieniu krwawienia poproś technika #1 o otwarcie wysterylizowanej torebki autoklawu i przedstawienie operatorowi igły do biopsji 5 mm i trokara wewnętrznego (ryc. 1), zachowując technikę aseptyczną.
    1. Poproś operatora o zmontowanie igły (kaniula zewnętrzna i trokar wewnętrzny), sprawdzenie wyrównania i przesuwania.
  2. Niech operator mocno przytrzyma zespół igły (kaniulę zewnętrzną i trokar wewnętrzny) obiema rękami, aby zapobiec obracaniu się trokaru wewnętrznego. Poproś technika #1, aby mocno włożył odciętą końcówkę pipety w górną część wewnętrznej części trokarowej igły do biopsji, lekko skręcając w dół. Upewnij się, że technik #1 nie dotyka operatora ani igły do biopsji, a jedynie końcówki pipety.
  3. Poproś operatora o wprowadzenie igły do biopsji do tkanki przez nacięcie. Zlokalizuj nacięcie w powięzi (nabyte "czucie") za pomocą końcówki igły do biopsji. Przesuń igłę tuż obok powięzi, a następnie skieruj igłę w dół w kierunku podłogi, gdy igła jest wprowadzana do mięśnia. Uwaga: Pacjenci mogą odczuwać lekki dyskomfort (np. "głęboki ucisk" lub łagodne uczucie skurczów), ponieważ nacięcie przez powięź znajduje się końcówką igły do biopsji, a igła jest wprowadzana do mięśnia.
    1. Niech technik #2 poinstruuje testera, aby pozostał "zrelaksowany" i nie napinał mięśni ud, podczas gdy operator wsuwa igłę w mięsień.
  4. Gdy igła do biopsji znajdzie się na swoim miejscu, poproś operatora, technika sygnałowego #1, aby otworzył jednorazową strzykawkę o pojemności 60 ml.
    1. Poproś technika #1, aby szybko otworzył jednorazową strzykawkę o pojemności 60 ml do znaku 40-50 cm3, aby wytworzyć ssanie w igle do biopsji.
    2. Poproś operatora, aby wyciągnął trokar wewnętrzny na około 1 cm, aby otworzyć okienko kaniuli zewnętrznej, utrzymując jednocześnie pozycję trokaru zewnętrznego w mięśniu. Niech operator szybko zamknie wewnętrzny trokar, aby przeciąć (przypiąć) i pobrać próbkę mięśni. Poproś operatora technika sygnałowego #1 o zwolnienie ssania.
    3. Poproś technika #1 o otwarcie kranu do pomieszczenia, aby zwolnić ssanie.
    4. Poproś operatora, aby obrócił igłę do biopsji o 90° i powtórzył proces. W razie potrzeby poproś operatora o powtórzenie procedury obracania do 3 razy (w sumie 4 klipsy).
  5. Poproś operatora, aby przyłożył bezpośredni przeciwnacisk do miejsca nacięcia za pomocą sterylnej gazy podczas wyjmowania igły do biopsji z uda, uważając, aby nie zaczepić powięzi lub skóry. Jeśli odczuwalny jest znaczny opór, należy ponownie przeciąć, wykonując ruch skręcający na wewnętrznym trokarze.
  6. Po wyjęciu igły do biopsji z uda poproś operatora, aby odciągnął wewnętrzny trokar o 1 cm do tyłu, aby wizualnie sprawdzić światło zewnętrznej kaniuli i ocenić, czy pobrano odpowiednią ilość tkanki.
    1. Poproś operatora, aby przekazał igłę do biopsji technikowi #1. Aby zachować technikę aseptyczną, upewnij się, że technik #1 dotyka tylko igły, a nie operatora. Poproś technika #1 o przekazanie igły do biopsji technikowi #3.
  7. Poproś technika #3 o usunięcie tkanki z igły do biopsji.
    1. Poproś technika #3 o użycie tłoka (Rysunek 1) i pary kleszczyków z cienką końcówką, aby upewnić się, że cała tkanka mięśniowa została usunięta z wewnętrznego trokaru i zewnętrznej kaniuli.
    2. Poproś technika #3, aby szybko zważył próbkę, aby potwierdzić, że pobrano odpowiednią ilość tkanki mięśniowej i umieścił próbki na lodowatym bloku preparacyjnym
      3. .
  8. Poproś technika #3 o dokładne wycięcie widocznej tkanki łącznej i tłuszczu z próbek mięśni. Poproś technika #3 o przygotowanie próbek mięśni do przechowywania zgodnie z dalszymi analizami. Na przykład natychmiast umieść próbki w kriowiale i błyskawicznie zamroź w ciekłym azocie, zamontuj i zamroź do histologii lub umieść w kriowiale z inhibitorem RNazy itp.
  9. W razie potrzeby powtórz procedurę z drugą wysterylizowaną igłą do biopsji, zachowując technikę aseptyczną.

3. Zamknięcie

  1. Poproś operatora, aby zastosował bezpośredni ucisk na miejsce biopsji za pomocą sterylnej gazy i okładu z lodu przez 10-15 minut.
  2. Po osiągnięciu hemostazy poproś operatora o użycie wacików nasączonych alkoholem, aby usunąć zaschniętą krew z obszaru wokół nacięcia.
  3. Poproś technika #1 o przedstawienie operatorowi tubki z miejscowym klejem chirurgicznym i aplikatorem. Poproś operatora, aby zmontował tubkę z klejem chirurgicznym i aplikatorem bez dotykania końcówki aplikatora lub górnej części tubki.
  4. Poproś operatora, aby jedną ręką zamknął nacięcie, a drugą ręką nałożył pojedynczą warstwę kleju chirurgicznego na wierzch suchego nacięcia. Po utwardzeniu kleju (~ 90 sek) należy nałożyć taśmę zamykającą prostopadle do nacięcia. Alternatywnie zamknij nacięcie dwoma sterylnymi szwami 4-0.
  5. Poproś operatora o bezpośredni nacisk, umieszczając 3-4 niesterylne gaziki o wymiarach 2 x 2 cale w miejscu nacięcia i zabezpiecz samoprzylepną folią samoprzylepną.
  6. Poproś operatora, aby przekazał pacjentowi ustne i pisemne instrukcje dotyczące prawidłowej pielęgnacji rany, normalnych i nieprawidłowych reakcji oraz wytyczne dotyczące aktywności na następne 1 do 4 dni (patrz suplement online 2).

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Wyniki

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Procedura biopsji mięśni, opisana powyżej, pozwala badaczowi na szybkie i konsekwentne pobieranie próbek tkanki mięśni szkieletowych. Typowa wydajność u zdrowych, wysportowanych osób wynosi 200 mg lub więcej w jednym przejściu z 3-4 klipami. Zabieg trwa 15-20 minut, z czego większość poświęca się na przygotowanie do nacięcia. W badaniach opartych na ćwiczeniach próbki mięśni są często pobierane przed i po wysiłku, przy czym jedna lub dwie próbki są pobierane podczas regeneracji. Dzięki temu projektowi włosy na udzie po w...

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Dyskusja

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Ten film zawiera podsumowanie krok po kroku procedury biopsji mięśni szkieletowych stosowanej w Laboratorium Wydajności Człowieka ASU. Ta procedura, z niewielkimi modyfikacjami, została wykorzystana do pobrania około 1600 biopsji mięśni w ciągu ostatnich 13 lat. Próbki z biopsji mięśni dostarczyły ważnych danych w badaniach opartych na żywieniu sportowym, prowadząc do ważnych odkryć badawczych.

Istnieje wiele kluczowych technik, o których należy pamiętać podczas wykonywania zmodyfikowanej tech...

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Oświadczenia

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Autorzy nie pozostają w konflikcie interesów.

Podziękowania

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Brak funduszy do zadeklarowania.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
Bergströ m Igła do biopsji, 5 x 100 mmStille Surgical Inc.119-29187-501 szt
Niebieska podkładka DurasorbFisher22-031-340opakowanie 300
jednorazowych maszynek do goleniaMoore Medical897601
Krem do goleniaMoore Medical928691 puszka
Wacik nasączony alkoholemMoore Medical98721pudełko/200
patyczków jodowo-powidonowych (3 sztuki)Moore Medical90691opakowanie 50
szt. Maski na twarzFisher19-039-690Opakowanie 50
szt. Sterylne rękawiczki; sz 6.5Moore Medical68128pudełko zawierające 50 par
Sterylne rękawice; sz 7.0Moore Medical68129pudełko zawierające 50 par
Sterylne rękawice; sz 8.5Moore Medical68132pudełko 50 par Zasłona
na ręcznik z okienkiemMoore Medical92712Opakowanie 50
lidokainy (1% HCl, bez Epi)Dealmed427902fiolkę 30 cc
chlorek etylu w sprayuDealmed3860203,5 fl. Butelka
5 ml strzykawka z igłą 21 GFisher14-827-48skrzynka 100
igły 25 G 5/8"Fisher14-826AAskrzynka 100
igły 25 G 1 1/2"Fisher14-826-49skrzynka 100
jednorazowych skalpeli z ostrzem #11Fisher0-8927-5Bpudełko zawierające 20
strzykawek 60 mlFisher13-689-8etui z
rurką przedłużającą 40 ~ 30 caliFisher14-169-7A rolka50 stóp
Metalowy kranFisher01-290-38każdy
Łącznik rurki polipropylenowej ze stożkowymi końcami, 3,2 do 5,5 mmFisher15-315-28Apudełko 100
Żółte końcówki do pipet (1-200 i mikro; l)Fisher02-681-2odciąć ~ 15-18 mm końcówki
Miejscowy klej chirurgicznyMedlineMSC091076przypadku 36 tubek
Miejscowy klej chirurgicznyMedlineMSC091076Zpudełko z 6 tubkami
Szwy motylkowe (paski samoprzylepne) 1/2 "x 4" (6 w opakowaniu)Moore Medical93050pudełko / 300
Bandadge, pasek, 3/4 x 3 cale.Fisher19-027-202opakowanie 100
szt. Bandaż samoprzylepny (rolki 5 m)Fisher19-027-768etui 36
1-calowa taśma chirurgicznaFisher19-027-761skrzynka 12
szwów (4-0 odwrotne cięcie, FS2)Moore Medical82926pudełko 36
4 x 4 Sterylne gazikiMoore Medical66949opakowanie/50
2 x 2 Niesterylne gazikiMoore Medical37336opakowanie/200
3 x 4 Nieprzywierające podkładkiMoore Medical74389bx/100
Worki autoklawowe 3,5 x 9Moore Medical40390pudełko 200
worków autoklawowych 5,25 x 10Moore Medical40391pudełko 200
wskaźnikowych do autoklawuMoore Medical31608pudełko 250
Lab Płaszcze— małyFisher23-900-520A 10/pk
Fartuchy laboratoryjne— średniFisher23-900-520B 10/pk
Fartuchy laboratoryjne— dużyFisher23-900-520C 10/pk
Bakteriobójcze jednorazowe chusteczki szmatkąMoore Medical62879Can/160
. szt. papierowa taśm

Bibliografia

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Duchene, G. B. A. Recherches sur la paralysie musculaire pseudohypertrophique ou paralysie myo-sclerosique. Arch Gen Med. 11 (30), (1868).
  2. Bergstrom, J. Muscle electrolytes in man. Determined by neutron activation analysis on needle biopsy specimens. Scand J Clin Lab Invest (England). 14, (1962).
  3. Bergstrom, J. Percutaneous needle biopsy of skeletal muscle in physiological and clinical research). Scand J Clin Lab Invest. 35, 609-616 (1975).
  4. Bergstrom, J., Hultman, E. A study of the glycogen metabolism during exercise in man. Scand J Clin Lab Invest. 19, 218-228 (1967).
  5. Evans, W. J., Phinney, S. D., Young, V. R. Suction applied to a muscle biopsy maximizes sample size. Med Sci Sports Exerc. 14, 101-102 (1982).
  6. Hennessey, J. V., Chromiak, J. A., Della Ventura, S., Guertin, J., MacLean, D. B. Increase in percutaneous muscle biopsy yield with a suction-enhancement technique. J Appl Phys. 82, 1739-1742 (1997).
  7. Tarnopolsky, M. A., Pearce, E., Smith, K., Lach, B. Suction-modified Bergstrom muscle biopsy technique: experience with 13,500 procedures. Muscl., & Nerve. 43, 717-725 (2011).
  8. Nieman, D. C., et al. Carbohydrate ingestion influences skeletal muscle cytokine mRNA and plasma cytokine levels after a 3-h run. J Appl Physiol. 94, 1917-1925 (2003).
  9. Nieman, D. C., et al. Influence of carbohydrate ingestion on immune changes after 2 h of intensive resistance training. J Appl Physiol. 96, 1292-1298 (2004).
  10. Utter, A. C., et al. Carbohydrate supplementation and perceived exertion during prolonged running. Med Sci Sports Exerc. 36, 1036-1041 (2004).
  11. Nieman, D. C., et al. Muscle cytokine mRNA changes after 2.5 h of cycling: influence of carbohydrate. Med Sci Sports Exerc. 37, 1283-1290 (2005).
  12. Nieman, D. C., et al. Effects of quercetin and EGCG on mitochondrial biogenesis and immunity. Med Sci Sports Exerc. 41, 1467-1475 (2009).
  13. Nieman, D. C., et al. Quercetin's Influence on Exercise Performance and Muscle Mitochondrial Biogenesis. Med Sci Sports Exerc. 42, 338-345 (2010).
  14. Dumke, C. L., et al. Quercetin's effect on cycling efficiency and substrate utilization. Appl Physiol Nut Metab. 34, 993-1000 (2009).
  15. Nieman, D. C., et al. Quercetin's influence on exercise-induced changes in plasma cytokines and muscle and leukocyte cytokine mRNA. J Appl Physiol. 103, 1728-1735 (2007).
  16. Guideline for Disinfection and Sterilization in Healthcare Facilities. http://www.cdc.gov/hicpac/Disinfection_Sterilization/toc.html. , Centers for Disease Control and Prevention. (2008).
  17. Faria, F. E., et al. The onset and duration of mobilization affect the regeneration in the rat muscle. Histol Histopath. 23, 565-571 (2008).
  18. Carlson, B. M., Shepard, B., Komorowski, T. E. A histological study of local anesthetic-induced muscle degeneration and regeneration in the monkey. J Ortho Res. 8, 485-494 (1990).
  19. Yagiela, J. A., Benoit, P. W., Buoncristiani, R. D., Peters, M. P., Fort, N. F. Comparison of myotoxic effects of lidocaine with epinephrine in rats and humans. Anesth Analg. 60, 471-480 (1981).
  20. Coyle, E. F., Coggan, A. R., Hemmert, M. K., Ivy, J. L. Muscle glycogen utilization during prolonged strenuous exercise when fed carbohydrate. J Appl Physiol. 61, 165-172 (1986).
  21. Gibala, M. J., et al. Brief intense interval exercise activates AMPK and p38 MAPK signaling and increases the expression of PGC-1alpha in human skeletal muscle. J Appl Physiol. 106, 929-934 (1985).
  22. Phillips, S. M., Tipton, K. D., Ferrando, A. A., Wolfe, R. R. Resistance training reduces the acute exercise-induced increase in muscle protein turnover. Am J Physiol. 276, 118-124 (1999).
  23. Davis, J. M., Murphy, E. A., Carmichael, M. D., Davis, B. Quercetin increases brain and muscle mitochondrial biogenesis and exercise tolerance. Am J Physiol Regul Integr Comp Physiol. 296, 1071-1077 (2009).
  24. Vissing, K., Andersen, J. L., Schjerling, P. Are exercise-induced genes induced by exercise. FASEB J. 19, 94-96 (2005).
  25. Lundby, C., et al. Gene expression in human skeletal muscle: alternative normalization method and effect of repeated biopsies. Eur J Appl Physiol. 95, 351-360 (2005).
  26. Coyle, E. F., Coggan, A. R., Hemmert, M. K., Ivy, J. L. Muscle glycogen utilization during prolonged strenuous exercise when fed carbohydrate. J Appl Physiol. 61, 165-172 (1985).

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Przedruki i uprawnienia

Poproś o pozwolenie na ponowne wykorzystanie tekstu lub ilustracji tego artykułu JoVE

Poproś o pozwolenie

Tagi

Zmodyfikowana technika Bergstromami sie obszerny bocznyznieczulenie miejscowepobieranie tkanekpobieranie pr bek mi niowychanaliza histologicznazmiany biochemicznefizjologia wysi kupiel gnacja ran

Powiązane artykuły