Subskrypcja JoVE jest wymagana do oglądania tego materiału. Zaloguj się lub rozpocznij bezpłatny okres próbny.

Artykuł metodologiczny

Stymulacja optyczna komórek neuronalnych wspomagana złotem nanoprętami

9K wyświetleń

⸱

DOI:

10.3791/52566

⸱

27 kwietnia 2015

 ,  , 

W tym artykule

Podsumowanie

Ten protokół opisuje, jak wykorzystać przejściowe ogrzewanie związane z optyczną absorpcją nanoprętów złota do stymulowania różnicowania i wewnątrzkomórkowej aktywności wapnia w komórkach neuronalnych. Wyniki te potencjalnie otwierają nowe zastosowania w protezach neuronalnych i podstawowych badaniach w neurobiologii.

Streszczenie

Ostatnie badania wykazały, że nerwy mogą być stymulowane na różne sposoby przez przejściowe ogrzewanie związane z absorpcją światła podczerwonego przez wodę w tkance neuronalnej. Technika ta ma ogromny potencjał do zastąpienia lub uzupełnienia standardowych technik stymulacji, ze względu na potencjał zwiększenia lokalizacji bodźca i zminimalizowania kontaktu mechanicznego z tkanką. Jednak podejścia optyczne są ograniczone przez niezdolność światła widzialnego do wnikania w głąb tkanek. Co więcej, modelowanie termiczne sugeruje, że skumulowane efekty ogrzewania mogą być potencjalnie niebezpieczne, gdy stosuje się wiele miejsc bodźca lub wysokie częstotliwości powtarzania lasera. Przedstawiony poniżej protokół opisuje ulepszone podejście do stymulacji komórek nerwowych w podczerwieni. Podstawowy mechanizm opiera się na przejściowym ogrzewaniu związanym z optyczną absorpcją nanoprętów złota, co może powodować wyzwalanie różnicowania komórek neuronalnych i zwiększony poziom wewnątrzkomórkowej aktywności wapnia. Wyniki te pokazują, że absorbery nanocząstek mogą usprawnić i/lub zastąpić proces stymulacji neuronalnej w podczerwieni oparty na absorpcji wody, z potencjałem do przyszłych zastosowań w protezach nerwowych i terapiach komórkowych.

Wprowadzenie

Ostatnie badania wykazały, że przejściowe ogrzewanie związane z absorpcją światła podczerwonego przez wodę (długość fali >1,400 nm) może być wykorzystane do indukowania potencjałów czynnościowych w tkance>nerwowej1 i wewnątrzkomórkowych przejściowych stanów wapnia w kardiomiocytach2. Zastosowanie światła podczerwonego wzbudziło duże zainteresowanie zastosowaniami w protezach neuronowych, ze względu na potencjalną lepszą rozdzielczość przestrzenną, brak bezpośredniego kontaktu z tkanką, minimalizację artefaktów stymulacji i wyeliminowanie potrzeby genetycznej modyfikacji komórek przed stymulacją (co jest wymagane w optogenetyce)1. Pomim....

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Protokół

1. Przygotowanie nanoprętów Au

Uwaga: Au NRs można zsyntetyzować zgodnie z wieloma procedurami16 lub zakupić od dostawców komercyjnych.

  1. Zmierz początkową gęstość optyczną (OD) roztworu Au NR za pomocą spektroskopii UV-Vis, rejestrując wartości absorbancji w zakresie od 300 nm do 1 000 nm z rozdzielczością 0,5-2 nm. Dostosuj objętość roztworu do parametrów dostępnej kuwety.
  2. Oceń początkowe stężenie molowe NP odpowiednią techniką17 (np. spektroskopia UV-Vis, spektrometria mas z indukcyjnie sprzężonym plazmą dla pojedynczych cząstek, transmisyjna mikroskopia elektronowa) lub skorzystaj z war....

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Wyniki

Stosując opisane tutaj protokoły 1, 2 i 3, zaobserwowano efekt stymulujący różnicowanie w komórkach neuronalnych NG108-15 hodowanych z Au NPs (Au NRs, Au NRs powleczone poli(styrenosulfonianem) oraz Au NRs powleczone krzemionką) po ekspozycji laserowej w zakresie od 1,25 do 7,5 W·cm−2 . Obrazy konfokalne Au NRs znakowanych rhodaminą B wykazały, że cząstki były internalizowane od 1. dnia inkubacji12. Lokalizację zaobserwowano głównie w cytoplazmie komórek, co wskazuje, że preferowanym mechanizmem pob.......

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Dyskusja

Protokoły przedstawione w tej prezentacji opisują, w jaki sposób hodować, różnicować i optycznie stymulować komórki neuronalne za pomocą absorberów zewnętrznych. Charakterystyki NR (np. wymiary, kształt, długość fali rezonansu plazmonowego i skład chemiczny powierzchni) oraz parametry stymulacji laserowej (takie jak długość fali, długość impulsu, częstotliwość powtarzania itp.) mogą być zmieniane w celu dopasowania do różnych potrzeb eksperymentalnych. Wpływ na zachowanie komórek można monitorować za po.......

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Oświadczenia

Autorzy nie mają żadnych sprzecznych interesów, które mogliby ujawnić.

Podziękowania

Autorzy chcieliby podziękować NanoVentures Australia za wsparcie w finansowaniu podróży oraz prof. Johnowi Haycockowi za częściowe prowadzenie tych badań na Uniwersytecie w Sheffield oraz Pani Jaimee Mayne za jej pomoc podczas kręcenia filmu.

....

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
Au NRSigma Aldrich716812
NG108-15Sigma Aldrich8811230
DMEMSigma AldrichD6546
FCSLife Technologies10100147
L-glutaminaSigma AldrichG7513
Penicylina/streptomycynaLife Technologies15140122
Amfoterycyna BLife Technologies15290018
FormaldehydSigma AldrichF8775
Triton X-100BDHT8532
BSASigma AldrichA2058
Anti-β III-tubulinaPromegaG7121
TRITC-sprzężone przeciwciało anty-mysie IgGSigma AldrichT5393
DAPIInvitrogenD1306
Fluo-4 AMInvitrogenF14201
DMSOSigma Aldrich472301
Pluronic F-127InvitrogenP6867
UV-Vis spektrometrVarian Medical Systems Inc.Wirówka Cary 50 Bio
MiniEppendorfMini Spin
Kąpiel sonicznaUnisonics AustraliaFPX 10D
Inkubator do hodowli komórkowychKendroHera Cell 150
Wirówka do hodowli komórkowychHettichRotofix 32A Dioda laserowa
Optotech780 nm jednomodowa światłowód - sprzężony LD
ŚwiatłowódThorlabs780 HP
Miernik mocyKoherentnytest
ImageJhttp://rsb.info.nih.gov/ij/index.html
Mikroskop epifluorescencyjnyAxon InstrumentsImageX-press 5000A
μ-slide wellIbidi80826
Odwrócony mikroskop konfokalnyCarl Mikroskopia Zeiss Sp. z o.o.LSM 510 mikroskop
OscyloskopTektronixTDS210
laserowymetakonfokalny

Bibliografia

  1. Richter, C. P., Matic, A. I., Wells, J. D., Jansen, E. D., Walsh, J. T. Neural stimulation with optical radiation. Laser. Photonics Rev. 5 (1), 68-80 (2011).
  2. Dittami, G. M., Rajguru, S. M., Lasher, R. A., Hitchcock, R. W., Rabbitt, R. D. Intracellular calcium transients evok....

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Przedruki i uprawnienia

Przeglądaj więcej artykułów

nanopręty złotalaser bliskiej podczerwieniróżnicowanie komórekaktywność wapniowamikroskopia konfokalnabeta-III tubulinabarwnik fluorescencyjnynaświetlanie laserowe