Tolerancja immunologiczna w ciąży wymaga, aby układ odpornościowy matki ulegał charakterystycznym zmianom, aby akceptować i pielęgnować rozwijający się płód. Tolerancja ta jest inicjowana podczas stosunku, ustalana podczas zapłodnienia i zagnieżdżania się i utrzymywana przez całą ciążę. Aktywne mediatory komórkowe i molekularne tolerancji matczyno-płodowej są wzbogacone w miejscu kontaktu między tkankami płodu i matki, znanym jako interfejs matczyno-płodowy, który obejmuje łożysko oraz tkanki macicy i dziesiętne. Ten interfejs składa się z komórek zrębu i naciekających leukocytów, a ich liczebność i cechy fenotypowe zmieniają się w trakcie ciąży. Naciekające leukocyty na granicy matczyno-płodowej obejmują neutrofile, makrofagi, komórki dendrytyczne, komórki tuczne, limfocyty T, limfocyty B, komórki NK i komórki NKT, które razem tworzą lokalne mikrośrodowisko podtrzymujące ciążę. Brak równowagi między tymi komórkami lub jakakolwiek niewłaściwa zmiana w ich fenotypach jest uważana za mechanizm choroby w ciąży. Dlatego badanie leukocytów, które infiltrują granicę matczyno-płodową, jest niezbędne do wyjaśnienia mechanizmów immunologicznych, które prowadzą do powikłań związanych z ciążą. Opisany w niniejszym dokumencie jest protokół, który wykorzystuje kombinację delikatnej dysocjacji mechanicznej, po której następuje silna dezagregacja enzymatyczna z proteolitycznym i kolagenolitycznym koktajlem enzymatycznym w celu wyizolowania naciekających leukocytów z tkanek myszy na granicy matczyno-płodowej. Protokół ten pozwala na izolację dużej liczby żywotnych leukocytów (>70%) o wystarczająco konserwatywnych właściwościach antygenowych i funkcjonalnych. Wyizolowane leukocyty można następnie analizować za pomocą kilku technik, w tym immunofenotypowania, sortowania komórek, obrazowania, immunoblottingu, ekspresji mRNA, hodowli komórkowej i testów funkcjonalnych in vitro, takich jak mieszane reakcje leukocytów, proliferacja lub testy cytotoksyczności.