Artykuł metodologiczny

Generowanie genetycznie zmodyfikowanych organotypowych kultur skóry przy użyciu zdewitalizowanej ludzkiej skóry właściwej

DOI:

10.3791/53280

⸱

14 grudnia 2015

 , 
1Department of Dermatology, UCSD Stem Cell Program, University of California, San Diego, 2Department of Cellular and Molecular Medicine, UCSD Stem Cell Program, University of California, San Diego

W tym artykule

Podsumowanie

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Celem tego artykułu jest dostarczenie wyczerpującego i szczegółowego protokołu generowania genetycznie zmodyfikowanej ludzkiej organotypowej skóry z keratynocytów naskórka i zdewitalizowanej ludzkiej skóry właściwej.

Streszczenie

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Hodowle organotypowe pozwalają na odtworzenie środowiska 3D krytycznego dla kontaktu komórka-komórka i interakcji komórka-matryca, które naśladuje funkcję i fizjologię ich tkankowych odpowiedników in vivo. Przykładem tego są organotypowe kultury skóry, które wiernie odwzorowują program różnicowania i stratyfikacji naskórka. Pierwotne ludzkie keratynocyty naskórkowe są genetycznie manipulowane przez retrowirusy, w których geny mogą być łatwo nadmiernie eksprymowane lub powalone. Te genetycznie zmodyfikowane keratynocyty mogą być następnie wykorzystane do regeneracji ludzkiego naskórka w organtypowych kulturach skóry, zapewniając potężny model do badania szlaków genetycznych wpływających na wzrost, różnicowanie i postęp choroby. Przedstawione tutaj protokoły opisują metody przygotowania zdewitalizowanej ludzkiej skóry właściwej, a także genetycznej manipulacji pierwotnymi ludzkimi keratynocytami w celu wytworzenia organotypowych kultur skóry. Zregenerowana ludzka skóra może być wykorzystywana w dalszych zastosowaniach, takich jak profilowanie ekspresji genów, barwienie immunologiczne i immunoprecypitacja chromatyny, a następnie sekwencjonowanie o wysokiej przepustowości. W związku z tym wytwarzanie tych genetycznie zmodyfikowanych organotypowych kultur skóry pozwoli na określenie genów, które są kluczowe dla utrzymania homeostazy skóry.

Wprowadzenie

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Ludzki naskórek to warstwowy nabłonek, który łączy się z leżącą pod nim skórą właściwą poprzez macierz zewnątrzkomórkową znaną jako strefa błony podstawnej. Naskórek służy nie tylko jako nieprzepuszczalna bariera zapobiegająca utracie wilgoci, ale także jako pierwsza linia obrony chroniąca organizm przed obcymi i toksycznymi substancjami1. Warstwa podstawna, która jest najgłębszą warstwą naskórka, zawiera komórki macierzyste i progenitorowe naskórka, które dają początek zróżnicowanemu potomstwu, które tworzy resztę naskórka2. W miarę różnicowania się komórek progenitorowych naskórka migrują one w górę, tworząc pierwszą warstwę zróżnicowanych komórek, znaną jako warstwa kolczysty3. W warstwie kolczystej komórki włączają ekspresję keratyny 1 i 10, które następnie zapewniają wytrzymałość na wytrzymanie stresu fizycznego dla zróżnicowanych warstw naskórka. W miarę dalszego różnicowania się komórek warstwy kolczystej przemieszczają się one w górę naskórka, tworząc warstwę ziarnistą, która charakteryzuje się tworzeniem keratohialiny i granulek blaszkowatych, a także białek strukturalnych, które są gromadzone poniżej błony plazmatycznej. W miarę jak komórki postępują w procesie różnicowania, białka pod błoną plazmatyczną są ze sobą sieciowane, podczas gdy granulki lamelarne są wytłaczane z komórek, tworząc bogatą w lipidy barierę zwaną warstwą rogowąnaskórka 4.

Choroby, które obejmują zmiany we wzroście i różnicowaniu naskórka, dotykają ~20% populacji5. Zrozumienie mechanizmów tego procesu ma więc ogromne znaczenie. Ponieważ manifestacja wielu z tych chorób jest zależna od kontaktu komórka-komórka lub komórka-macierz, stworzono hodowle organotypowe, w których ludzki naskórek jest odtwarzany w środowisku 3D. Metody te zazwyczaj polegają na użyciu pierwotnych lub przekształconych keratynocytów osadzonych na macierzy zewnątrzkomórkowej, takich jak zdewitalizowana ludzka skóra właściwa, Matrigel lub kolagen.

Aby zrozumieć mechanizmy regulacji genów, które są ważne dla wzrostu i różnicowania naskórka, keratynocyty mogą być genetycznie manipulowane za pomocą wektorów retrowirusowych w celu zniszczenia lub nadekspresji genów w kulturze 2D, a następnie odtworzone w 3D. Metody te były szeroko stosowane do scharakteryzowania genów zaangażowanych w samoodnawianie i różnicowanie komórek macierzystych i progenitorowych naskórka, a także progresję do neoplazji11-21. W tym miejscu przedstawiono szczegółowy protokół dotyczący zmiany ekspresji genów w organotypowych kulturach naskórka za pomocą retrowirusów.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Protokół

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Protokół ludzkiej skóry został przeprowadzony zgodnie z wytycznymi Komitetu Etyki Badań Uniwersytetu Kalifornijskiego w San Diego. Ludzka skóra może być pozyskana z wyrzuconych próbek chirurgicznych lub zakupiona w bankach skóry (bank skóry jest wymieniony w tabeli materiałów/sprzętu). Lokalizacja, od której pochodzi skóra, lub wiek dawcy nie ma decydującego znaczenia dla eksperymentu, o ile białka strefy błony podstawnej (kolagen / laminina) w skórze właściwej nie są zdegradowane.

1. Przygotowanie zdewitalizowanej ludzkiej skóry właściwej

  1. Po otrzymaniu ludzkiej skóry umieść tkankę w kapturze do hodowli tkankowej do rozmrożenia (~3-5 min). W zależności od wielkości skóry rozmrożoną tkankę umieść w sterylnej jednorazowej stożkowej tubie o pojemności 50 ml lub butelce o pojemności 125 ml. Typowy rozmiar skóry z banku skóry to 0,75 stopy kwadratowej.
  2. Napełnij pojemnik w 75% 4x penicyliną i streptomycyną (wstrzykiwacz/paciorkowiec) w 1x PBS. Wstrząsaj energicznie przez 5 minut i wylej płyn. Powtórz ten krok jeszcze 3 razy.
  3. Po ostatnim umyciu przenieś chusteczkę do nowej probówki/butelki i dodaj świeże 4x wstrzykiwacz/paciorkowiec/PBS, aby wypełnić 75% pojemnika. Mieszaninę tę należy inkubować w inkubatorze do hodowli tkankowych w temperaturze 37 °C przez 2 tygodnie, aby umożliwić oddzielenie skóry właściwej od naskórka.
  4. W sterylnych warunkach użyj kleszczy, aby oderwać naskórek od skóry właściwej. Skóra właściwa jest całkowicie biała, podczas gdy naskórek będzie miał zabarwienie w zależności od rasy dawcy (ryc. 1A). Wyrzuć naskórek zgodnie z protokołem postępowania z tkanką ludzką instytucji.
  5. Umieść skórę właściwą w probówce lub butelce i umyj ją w 4x wstrzykiwaczu / paciorkowca rozcieńczonym w 1x PBS energicznym potrząsaniem (5 min mycia przez 4 razy). Po ostatnim myciu przenieś skórę właściwą do nowej tuby/butelki w 4x wstrzykiwaczu/paciorkowcach rozcieńczonych w 1x PBS i przechowuj w temperaturze 4 °C do momentu użycia. Skóra właściwa może być przechowywana w temperaturze 4 °C przez okres do roku.

2. Genetycznie modyfikowane pierwotne ludzkie keratynocyty

UWAGA: Użyj amfotropowych komórek feniksa hodowanych na kompletnych pożywkach DMEM [DMEM +10% płodowej surowicy bydlęcej (FBS)+długopis/paciorkowca] do produkcji wirusów infekujących pierwotne ludzkie keratynocyty. Geny pakowania wirusów, które kodują białka, takie jak gag-pol i otoczka, są stabilnie zintegrowane z genomem komórki feniksa, co pozwala na produkcję wirusa po transfekacji wektorem retrowirusowym. Komórki Phoenix mogą być transfekowane z wysoką wydajnością, co pozwala na wysoką produkcję miana wirusa. Wirus wytwarzany z tej linii pakującej może również infekować wiele różnych komórek ssaków, w tym człowieka.

  1. Dzień 1: Dzień przed transfekcją wysiewaj komórki feniksa na 6-dołkowej płytce o gęstości 800 000 komórek na dołek w kompletnym pożywce DMEM.
  2. Dzień 2: W dniu transfekcji należy użyć 3 μg wektorów retrowirusowych na studzienkę. Podwielokrotność 3 μg wektora retrowirusowego do probówki o pojemności 1,5 ml. Użyj mieszaniny 100 μl DMEM plus 6 μl odczynnika do transfekcji na każde 3 μg wektora. Zmieszać 6 μl odczynnika do transfekcji ze 100 μl DMEM w probówce o pojemności 1,5 ml. (Stosowane wektory retrowirusowe są wymienione w tabeli sprzętu/materiałów).
    1. Inkubować przez 5 minut i dodać mieszaninę o objętości 106 μl do wstępnie porcjowanej probówki zawierającej 3 μg wektora retrowirusowego. Mieszać i inkubować w temperaturze pokojowej przez 30 minut. Dodaj całą tę mieszaninę kroplami do każdej studzienki komórek feniksa.
  3. Dzień 3: Dzień po transfekcji usuń pożywkę z komórek feniksa i dodaj 2 ml świeżej, kompletnej pożywki DMEM. Tego samego dnia wysiewaj pierwotne ludzkie keratynocyty na 6-dołkowe płytki o gęstości 75 000 komórek na dołek. Utrzymuj keratynocyty w pożywce wolnej od keratynocytów w surowicy (KCSFM) z antybiotykami (pen/strep).
    UWAGA: Zakupiono pierwotne keratynocyty ludzkie. Ogniwa można kupić u różnych dostawców (wymienionych w tabeli Materiał/Sprzęt).
  4. Dzień 4: Zbierz pożywkę z transfekowanych komórek feniksa, które teraz zawierają cząsteczki wirusa. Przepuścić pożywkę przez filtr 0,45 μm za pomocą strzykawki (w celu usunięcia wszelkich zanieczyszczających komórek feniksa) i umieścić 2 ml na keratynocytach (posianych w 75 000 komórek/studzienkę poprzedniego dnia: patrz krok 2.3). Dodać bromek heksadimetryny (5 μg/ml) do pożywki, aby pomóc w procesie infekcji. Miana wirusów wynoszą ~1 x 107 TU/ml.
    1. Wirować 6-dołkowe płytki w wirówce o sile 200 x g przez 1 godzinę w temperaturze pokojowej. Po wirowaniu usuń pożywkę zawierającą wirusa i umyj komórki raz 1x PBS przed dodaniem KCSFM.
  5. Dzień 5: Ponownie zainfekuj tę samą partię keratynocytów, jak w kroku 2.4.
    UWAGA: Wybierz keratynocyty za pomocą leku, jeśli na wektorze retrowirusowym znajduje się marker do wyboru i rozwiń do wykorzystania w dalszej analizie lub zastosowaniach, takich jak hodowle organotypowe.

3. Ustawianie organotypowych kultur skóry

  1. Zbuduj kasetę organotypową z typowych materiałów znalezionych w laboratorium lub kasety mogą być wykonane na zamówienie w warsztacie metalowym (rysunek 2A-F). Aby wykonać te kasety z płytki do hodowli tkankowej o średnicy 3,5 cm, użyj kauteryzacji, aby usunąć kwadrat o wymiarach 1,0 cm x 1,0 cm ze środka pokrywki naczynia o średnicy 3,5 cm (ryc. 2A-B). Zrób to w sterylnych warunkach.
    1. Przymocuj kwadratowe kołki do dolnej części kasety (pokrywa naczynia o średnicy 3.5 cm) za pomocą przezroczystego lakieru do paznokci (Rysunek 2C). Odczekaj 5 minut, aż lakier do paznokci wyschnie i odwróć kasetę tak, aby spoczywała na kwadratowych kołkach (Rysunek 2D). Umieść kasetę w naczyniu o średnicy 6 cm.
      UWAGA: Kwadratowe kołki można kupić w różnych sklepach ze sztuką i rękodziełem.
  2. Przygotować pożywkę wzrostu keratynocytów (KGM) składającą się z 66% DMEM, 22% F12 Ham's, 100 jednostek/ml penicyliny, 100 μg/ml streptomycyny, 10% FBS, 2,67 μg/ml adeniny, 40 ng/ml hydrokortyzonu, 10 ng/ml toksyny, 4,94 μg/ml insuliny, 5 μg/ml transferyny, 1,36 ng/ml Trijodo-L-tyroniny, 10 ng/ml EGF, i 10 μg/ml chlorowodorku cyprofloksacyny. Przefiltruj media przez filtr 0,22 μm i przechowuj w temperaturze 4 °C do momentu, gdy będą gotowe do użycia.
  3. Wyjąć skórę właściwą z 4x roztworu wstrzykiwacza/paciorkowca + PBS i przemyć 2 razy w KGM, a następnie inkubować w KGM w temperaturze 37 °C przez dwa dni przed użyciem.
  4. Przeciąć skórę właściwą za pomocą skalpela na kawałki o wymiarach 1,5 cm x 1,5 cm, a następnie umieścić na kasecie organotypowej. Umieść skórę właściwą górną częścią skóry właściwej skierowaną do góry. Górna część skóry właściwej będzie stroną, która styka się z keratynocytami (ryc. 1B).
  5. Umieść wstępnie przyciętą skórę właściwą na kwadratowym otworze kasety organotypowej górną stroną skóry właściwej skierowaną do góry (ryc. 3A).
  6. Odwróć całą organotypową kasetę zawierającą skórę właściwą za pomocą kleszczy (ryc. 3B). Rozmrozić roztwór macierzy zewnątrzkomórkowej na lodzie. Za pomocą igły i strzykawki pobrać 100 μl roztworu macierzy zewnątrzkomórkowej na kasetę. Dodaj 5 kropli na spód skóry właściwej (błyszcząca strona) i lekko wstrząśnij, aby zapewnić równomierne rozprowadzenie w całej skórze właściwej (ryc. 3B).
  7. Odczekaj 5 minut, aż dostępny w handlu roztwór macierzy zewnątrzkomórkowej całkowicie się zestali (ryc. 3C). Po zestaleniu użyj kleszczy, aby odwrócić kasetę z powrotem. Dodać 4 ml KGM do naczynia o średnicy 6 cm.
  8. Umieść 0,5-1 miliona genetycznie zmodyfikowanych keratynocytów na organotypowych kasetach zawierających skórę właściwą (ryc. 3D).
    1. Trypsynizuj keratynocyty, umieszczając 4 ml 0,05% trypsyny na 10 cm płytkach na 5 minut i zapełniając 4 ml kompletnej pożywki DMEM.
    2. Policz keratynocyty za pomocą hemocytometru, a następnie wiruj z prędkością 200 x g przez 5 minut. Ponownie zawieś 0,5-1 milion komórek (w zależności od liczby dostępnych komórek) w 90 μl KGM i umieść wszystkie komórki na skórze właściwej.
      UWAGA: Ważne jest, aby umieścić tę samą liczbę komórek na skórze właściwej w tym samym eksperymencie, aby upewnić się, że wszelkie różnice w grubości zregenerowanego naskórka nie wynikają z różnic w początkowej liczbie komórek. Umieszczenie mniej niż 0,5 miliona komórek w skórze właściwej może prowadzić do słabego rozwarstwienia i różnicowania.
  9. Zmieniaj pożywki KGM na kulturach organotypowych co drugi dzień. Zbierz tkankę 1-14 dni po umieszczeniu keratynocytów na skórze właściwej. Pełne rozwarstwienie i różnicowanie naskórka następuje zwykle po 5 dobie.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Wyniki

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Pierwszym krokiem w tworzeniu organotypowej ludzkiej skóry jest usunięcie naskórka ze skóry właściwej. Dwutygodniowa inkubacja skóry w temperaturze 37 °C w 4x wstrzykiwaczu/paciorkowcu/PBS powinna pozwolić na oddzielenie skóry właściwej od naskórka (ryc. 1A). Jeśli oddzielenie naskórka od skóry właściwej jest trudne, umieść tkankę w temperaturze 37 °C w 4x wstrzykiwaczu/paciorkowiec/PBS na kolejny tydzień, a następnie spróbuj ponownie złuszczyć za pomocą kleszczy.

Jednym z klu...

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Dyskusja

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Manipulacja genetyczna w kulturach organotypowych ludzkiej skóry oferuje wiele korzyści powszechnie badanym komórkom 2D, a także modelom mysim. Hodowle 2D nie mają trójwymiarowych interakcji komórka-komórka i komórka-macierz zewnątrzkomórkowa, które można znaleźć w nienaruszonych tkankach i narządach. Ostatnie badania wykazały również ogromne różnice między komórkami raka skóry hodowanymi w 2D i 3D, przy czym komórki hodowane w 3D wykazują znacznie więcej podobieństw ekspresji genów do pierwotnych ludzkichnowotworów...

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Oświadczenia

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Nie mamy nic do ujawnienia.

Podziękowania

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Ta praca była wspierana przez American Cancer Society Research Scholars Grant (RSG-12-148-01-DDC) oraz CIRM Basic Biology Award (RB4-05779).

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
Ludzka skóraNew York Firefighters Skin Bankhttp://www.cornellsurgery.org/pro/services/burn-surgery/skin-bank.html
PEN/STREPGIBCO15140-122
amfotropowe linie komórkowe feniksaATCCCRL-3213
FUGENE 6 transfekcja odczynnikPromegaE2691
Pożywka keratynocytów (KCSFM)Life Technologies17005042
DMEMGIBCO11995
Ham's F12Cambrex12-615F
FBSGIBCO10437-028
AdeninaSigmaA-9795
ToksynaSigma  C-8052
HydrokortyzonCalbiochem3896
InsulinaSigmaI-1882
EGFInvitrogen13247-051
Transferyna SigmaT-0665
Chlorowodorek cyprofloksacynySerologiczny89-001-1
kauteryzacjaBovie Medical CorporationAA01
MatrigelCorning354234
Przeciwciało Keratyny 1BiolegendPRB-149P
kołki kwadratoweSklepy
człowiek keratynocyty noworodkoweATCCPCS-200-010
ludzkie keratynocyty noworodkoweZastosowania komórkowe102K-05n
Wektor retrowirusowy MSCVClontech634401
Wektor retrowirusowy LZRSAddgene
pSuper.Retro.Puro Wektor retrowirusowyOligoengineVEC-PRT-0002 
Bromek heksadimetryny SigmaH9268-5G
artystyczne i rzemieślnicze

Bibliografia

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Tadeu, A. M., Horsley, V. Epithelial stem cells in adult skin. Current topics in developmental biology. 107, 107-131 (2014).
  2. Sen, G. L. Remembering one's identity: the epigenetic basis of stem cell fate decisions. FASEB J. 25, 2123-2128 (2011).
  3. Segre, J. A. Epidermal barrier formation and recovery in skin disorders. J Clin Invest. 116, 1150-1158 (2006).
  4. Eckert, R. L., Sturniolo, M. T., Broome, A. M., Ruse, M., Rorke, E. A. Transglutaminase function in epidermis. J Invest Dermatol. 124, 481-492 (2005).
  5. Lopez-Pajares, V., Yan, K., Zarnegar, B. J., Jameson, K. L., Khavari, P. A. Genetic pathways in disorders of epidermal differentiation. Trends Genet. 29, 31-40 (2013).
  6. Fuchs, E. Epidermal differentiation: the bare essentials. J Cell Biol. 111, 2807-2814 (1990).
  7. Green, H., Kehinde, O., Thomas, J. Growth of cultured human epidermal cells into multiple epithelia suitable for grafting. Proc Natl Acad Sci U S A. 76, 5665-5668 (1979).
  8. Khavari, P. A. Modelling cancer in human skin tissue. Nat Rev Cancer. 6, 270-280 (2006).
  9. Parenteau, N. L., Bilbo, P., Nolte, C. J., Mason, V. S., Rosenberg, M. The organotypic culture of human skin keratinocytes and fibroblasts to achieve form and function. Cytotechnology. 9, 163-171 (1992).
  10. Oh, J. W., Hsi, T. C., Guerrero-Juarez, C. F., Ramos, R., Plikus, M. V. Organotypic skin culture. J Invest Dermatol. 133, e14(2013).
  11. Sen, G. L., et al. ZNF750 Is a p63 Target Gene that Induces KLF4 to Drive Terminal Epidermal Differentiation. Dev Cell. 22, 669-677 (2012).
  12. Sen, G. L., Webster, D. E., Barragan, D. I., Chang, H. Y., Khavari, P. A. Control of differentiation in a self-renewing mammalian tissue by the histone demethylase JMJD3. Genes Dev. 22, 1865-1870 (2008).
  13. Mistry, D. S., Chen, Y., Wang, Y., Zhang, K., Sen, G. L. SNAI2 controls the undifferentiated state of human epidermal progenitor cells. Stem Cells. 32, 3209-3218 (2014).
  14. Truong, A. B., Kretz, M., Ridky, T. W., Kimmel, R., Khavari, P. A. p63 regulates proliferation and differentiation of developmentally mature keratinocytes. Genes Dev. 20, 3185-3197 (2006).
  15. Kretz, M., et al. Control of somatic tissue differentiation by the long non-coding RNA TINCR. Nature. 493, 231-235 (2013).
  16. Ridky, T. W., Chow, J. M., Wong, D. J., Khavari, P. A. Invasive three-dimensional organotypic neoplasia from multiple normal human epithelia. Nat Med. 16, 1450-1455 (2010).
  17. Mistry, D. S., Chen, Y., Sen, G. L. Progenitor function in self-renewing human epidermis is maintained by the exosome. Cell Stem Cell. 11, 127-135 (2012).
  18. Kretz, M., et al. Suppression of progenitor differentiation requires the long noncoding RNA ANCR. Genes Dev. 26, 338-343 (2012).
  19. Mulder, K. W., et al. Diverse epigenetic strategies interact to control epidermal differentiation. Nat Cell Biol. 14, 753-763 (2012).
  20. Boxer, L. D., Barajas, B., Tao, S., Zhang, J., Khavari, P. A. ZNF750 interacts with KLF4 and RCOR1, KDM1A, and CTBP1/2 chromatin regulators to repress epidermal progenitor genes and induce differentiation genes. Genes Dev. 28, 2013-2026 (2014).
  21. Jameson, K. L., et al. IQGAP1 scaffold-kinase interaction blockade selectively targets RAS-MAP kinase-driven tumors. Nat Med. 19, 626-630 (2013).
  22. Mistry, D. S., Chen, Y., Wang, Y., Sen, G. L. Transcriptional profiling of SNAI2 regulated genes in primary human keratinocytes. Genomics data. 4, 43-46 (2015).
  23. Mali, P., et al. RNA-guided human genome engineering via Cas9. Science. 339, 823-826 (2013).
  24. Doebis, C., et al. Efficient in vitro transduction of epithelial cells and keratinocytes with improved adenoviral gene transfer for the application in skin tissue engineering. Transpl immunol. 9, 323-329 (2002).
  25. Melo, S. P., et al. Somatic correction of junctional epidermolysis bullosa by a highly recombinogenic AAV variant. Mol Ther. 22, 725-733 (2014).
  26. Nanba, D., Matsushita, N., Toki, F., Higashiyama, S. Efficient expansion of human keratinocyte stem/progenitor cells carrying a transgene with lentiviral vector. Stem cell res ther. 4, 127(2013).
  27. Sen, G. L., Reuter, J. A., Webster, D. E., Zhu, L., Khavari, P. A. DNMT1 maintains progenitor function in self-renewing somatic tissue. Nature. 463, 563-567 (2010).
  28. Shamir, E. R., Ewald, A. J. Three-dimensional organotypic culture: experimental models of mammalian biology and disease. Nat Rev Mol Cell Biol. 15, 647-664 (2014).
  29. Krejci, N. C., Cuono, C. B., Langdon, R. C., McGuire, J. In vitro reconstitution of skin: fibroblasts facilitate keratinocyte growth and differentiation on acellular reticular dermis. J Invest Dermatol. 97, 843-848 (1991).
  30. Mathes, S. H., Ruffner, H., Graf-Hausner, U. The use of skin models in drug development. Adv Drug Deliv Rev. 69-70, 81-102 (2014).

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Przedruki i uprawnienia

Poproś o pozwolenie na ponowne wykorzystanie tekstu lub ilustracji tego artykułu JoVE

Poproś o pozwolenie

Tagi

Pierwotne ludzkie keratynocytytransfekcja wektorem retrowirusowymr nicowanie nask rkafrakcja naczyniowo stromalnamonta kasety organotypowejpo ywka wzrostowa dla keratynocyt wprofilowanie ekspresji gen wanaliza immunobarwienia

Powiązane artykuły