Cięcie rdzenia osadowego i ekstrakcja wód porowych w warunkach beztlenowych

Podsumowanie

Przedstawiono protokół podziału rdzeni osadów i wydobywania wód porowych w warunkach beztlenowych, aby umożliwić analizę wrażliwych na redoks gatunków zarówno w ciałach stałych, jak i płynach.

Streszczenie

Pokazujemy metodę dzielenia rdzeni osadów i wydobywania wód porowych przy jednoczesnym zachowaniu warunków beztlenowych. Zbudowany jest prosty, niedrogi system, który można przetransportować do tymczasowej przestrzeni roboczej w pobliżu miejsca pobierania próbek w terenie, aby ułatwić szybką analizę. Rdzenie są wytłaczane do przenośnego worka rękawicowego, gdzie są dzielone na części, a każdy odcinek o grubości 1-3 cm (w zależności od średnicy rdzenia) jest zamykany w probówkach wirówkowych o pojemności 50 ml. Wody porowe są oddzielane przez odwirowanie na zewnątrz worka rękawicowego, a następnie zawracane do worka rękawicowego w celu oddzielenia od osadu. Te wyekstrahowane próbki wody porowej można natychmiast przeanalizować. Natychmiastowe analizy gatunków wrażliwych na redoks, takich jak specjacja siarczkowa, specjacja żelaza i specjacja arsenu, wskazują, że utlenianie wód porowych jest minimalne; niektóre próbki wykazują około 100% zredukowanych gatunków, np. 100% Fe(II) bez wykrywalnego Fe(III). Zarówno próbki osadu, jak i wody porowej mogą być przechowywane w celu zachowania związków chemicznych do dalszej analizy po powrocie do laboratorium.

Wprowadzenie

Badacze często chcą badać stan redoks i geomikrobiologię systemu osadowo-wodnego. W tym celu idealnie wykorzystuje się dane zarówno z osadów, jak i wód porowych, ponieważ wody porowe są często wrażliwymi monitorami systemu i są częstym, choć nie jedynym źródłem, ekologicznego narażenia na wrażliwe na redoks metale ciężkie¹, takie jak arsen i uran. Dane dotyczące wody porowej można uzyskać in situ za pomocą filtrów równowagi dyfuzyjnej, znanych również jako "podglądacze", zainstalowanych w osadzie². Podglądacze są najczęściej stosowane w miejscach, w których teren jest znany przed rozpoczęciem prac terenowych i gdzie można odbyć wiele wizyt w terenie przez dłuższy czas, np. Shotyk³. W związku z tym wiele kontekstów nie zezwala na korzystanie z podglądaczy, takich jak miejsca dostępne tylko przez krótki czas lub miejsca, w których pobiera się wiele próbek eksploracyjnych w celu określenia, gdzie należy przeprowadzić dalsze badania⁴. Ponadto obserwatorzy nie pobierają próbek osadu jednocześnie z pobieraniem próbek wody.

Gdy pożądane jest pobieranie próbek osadu i wody razem, lub w miejscach, gdzie instalacja podglądacza nie jest możliwa, najczęstszą metodą uzyskania osadu i wody jest rdzeniowanie osadów. Uzyskanie niezmieszanego rdzenia jest kluczowym wstępem do procedury opisanej w tej pracy⁵. Po uzyskaniu rdzenia wody porowe można uzyskać przez wyciskanie⁶ lub wirowanie; Oba mają zalety i wady. Wirowanie jest ogólnie uważane za najbardziej niezawodną metodę ekstrakcji wód porowych z rdzeni osadów,7 chociaż należy zachować ostrożność, aby zapobiec utlenianiu osadów lub wód porowych.

W tej metodzie opisujemy wytłaczanie rdzeni i wirowanie w celu wydobycia wody porowej przy minimalnym utlenianiu. Autorzy zastosowali opisaną tu metodę w różnych kontekstach, w tym w morzu⁸, zanieczyszczonym jeziorze⁹ i terenach podmokłych¹⁰. Przedstawione reprezentatywne dane pokazują, że warunki redukcyjne mogą być zachowane. Z wyjątkiem wirówki, użyte materiały są niedrogie, a metoda ta może być stosowana do szerokiej gamy badań geochemicznych i geomikrobiologicznych.

Protokół

1. Przygotowanie sprzętu

1. Przygotowanie wkładek rdzeniowych
   1. Oblicz grubość warstwy rdzenia, która zostanie uzyskana, używając opcji Objętość = πr² x grubość; końcowa objętość musi wynosić <50 cm³. Przy średnicy rdzenia 10 cm można uzyskać plastry o grubości 2 cm.
      UWAGA: Nie jest konieczne, aby objętość wynosiła pełne 50 ml, ale uzyskane objętości wody porowej będą proporcjonalnie mniejsze.
   2. Za pomocą wyrzynarki (lub podobnej) pokrój jedną wkładkę rdzeniową lub plastikową rurkę o identycznej średnicy na pierścienie o średnicy 2 cm (lub inną grubość, jeśli używasz rdzenia o innej średnicy). Zdobądź 3-5 pierścieni.
   3. Wyczyść wszystkie tworzywa sztuczne, które będą miały kontakt z osadem, w tym wkładki rdzeniowe, nasadki rdzeniowe, pierścienie, krajalnice do rdzeni, probówki wirówkowe, strzykawki i jednorazowe łyżki. (Namocz tworzywa sztuczne w 10% HCl przez 24 godziny, spłucz tworzywa sztuczne 3x w nanoczystej (22 MΩ) wodzie i pozostaw materiały do wyschnięcia na powietrzu, najlepiej w okapie z przepływem laminarnym, przed zapakowaniem.)
2. Przygotowanie podnośnika laboratoryjnego
   1. Wytnij kawałek sklejki za pomocą wyrzynarki, aby pokryć rozmiar 6" x 6" górnej płyty podnośnika laboratoryjnego i wywierć otwór w środku tej sklejki za pomocą otwornicy do wiertła.
      UWAGA: Ten otwór powinien być tylko nieznacznie większy niż średnica przedłużaczy z PVC; W przypadku zastosowanych tutaj rozmiarów otwór powinien wynosić 2 3/4".
   2. Wywierć cztery małe otwory w krawędziach tej sklejki, aby dopasować je do otworów w górnej płycie podnośnika laboratoryjnego za pomocą zwykłego wiertła na wiertarce ręcznej lub wiertarce. Przymocuj sklejkę do podnośnika laboratoryjnego za pomocą opasek zaciskowych.
      UWAGA: W tej sklejce nie powinno być "drgań".
3. Wywierć otwór w środku sklejki o wymiarach około 2 'x 1.5' nieco większy niż zewnętrzna średnica wkładek rdzeniowych za pomocą otwornicy. W przypadku wkładek rdzeniowych o średnicy 10 cm odpowiedni będzie otwór o średnicy 10,5-11,5 cm. To drewno jest rdzeniową płytą prowadzącą.
4. Przygotowanie wytłaczarki rdzeniowej (tłoka)
   1. Zaopatrz się w gumowy korek laboratoryjny, który ściśle przylega do wkładek rdzenia. Jeśli żaden z nich nie jest dostępny, ogol go na odpowiedni rozmiar za pomocą maszynki do golenia. Nie należy używać zbyt małego korka.
   2. Przykręć korek laboratoryjny do kołka lub trzonka miotły o długości około 1'-1.5' i średnicy 1". Zakryj na powierzchni korka wodoodporną taśmą izolacyjną.
      UWAGA: Większa strona korka powinna być skierowana w stronę przeciwną do kołka.
5. Przetnij rurę PVC o długości około 1,5 cala na odcinki o długości ~ 6 cali.
   UWAGA: Średnica wewnętrzna powinna być większa niż kołek w kroku 1.4.2, ale mniejsza niż korek w kroku 1.4.1. Protokół ten zakłada użycie standardowego 2-calowego PVC o rzeczywistej średnicy zewnętrznej 2,375". Te kawałki PVC są przedłużaczami rdzenia.
6. Zmontuj wszystkie inne potrzebne urządzenia wymienione na Liście Materiałów.
   UWAGA: Należy go zebrać w domowym laboratorium i przynieść do laboratorium terenowego.

2. Ustawianie Stanowiska Laboratorium Polowego

1. Ustawianie torby na rękawiczki
   1. Clamp płytę prowadzącą rdzeń do powierzchni roboczej (blat, powierzchnia laboratoryjna itp.). Upewnij się, że otwór na wkładkę rdzenia znajduje się nad powierzchnią roboczą, ale jest otwarty.
   2. Umieść jednorazową torbę na rękawice na płytce prowadzącej rdzeń i poprowadź rurkę od wejścia rurki w torbie na rękawice do regulatora zbiornika N₂. Upewnij się, że zbiornik jest bezpiecznie zabezpieczony za pomocą clamp stołu butli.
   3. Przyklej rurkę do worka na rękawiczki, aby uszczelnić ten punkt wejścia, otaczając torbę wokół zewnętrznej części rurki taśmą izolacyjną. Upewnij się, że około 8 cali rurki wystaje do wnętrza torby rękawicowej. Wsuń rurkę clamp na rurkę wewnątrz torby na rękawiczki; Pozostaw ten zacisk otwarty.
   4. Wytnij literę "X" na dnie worka na rękawice nad otworem w płytce prowadzącej rdzeń za pomocą noża do pudełek lub prostej brzytwy. To x powinno być mniejsze niż średnica wkładki rdzeniowej.
   5. Załaduj do torby na rękawiczki przedmioty znajdujące się w Tabeli 1.
2. Konfiguracja rdzenia
   1. Umieść podnośnik laboratoryjny na podłodze pod obszarem roboczym, do którego przymocowana jest torba na rękawice. Umieść rdzeń w nacięciu "X" na dnie worka rękawicowego w kroku 2.1.4, trzymając go w pozycji pionowej.
      UWAGA: Około 4-6 cali rdzenia powinno wystawać ponad płytę stabilizacyjną rdzenia.
   2. Przytrzymaj rdzeń stabilnie, aby umożliwić badaczowi 2 wykonanie kroków od 2.2.3 do 2.2.6.
   3. Przyklej rdzeń do plastikowej torby na rękawiczki wokół "X", używając dużej ilości dobrej taśmy uszczelniającej izolacyjnej.
   4. Włóż uchwyt wytłaczarki rdzeniowej do przekładki PVC o średnicy 2 cali i długości ~ 6 cali, a następnie złączki o długości ~ 3 cali, a następnie kolejnej przekładki. Kontynuuj ten wzór, aż PVC całkowicie zakryje uchwyt; Może wystawać na niewielką odległość poza koniec uchwytu. Umieść ekstruder rdzeniowy (z przekładkami i złączkami PVC) pod spodem rdzenia.
   5. Podeprzyj wytłaczarkę rdzeniową za pomocą podnośnika laboratoryjnego, aby wytłaczarka mogła podeprzeć rdzeń. W tym momencie utrzymuj podnośnik jak najniżej i w miarę możliwości używaj podkładek dystansowych rdzenia.
   6. Użyj noża do pudełek, aby ostrożnie przeciąć wokół dolnej nasadki rdzenia. To cięcie powinno skutkować pozostawieniem pierścienia nasadki rdzenia na zewnątrz wkładki rdzenia i płaską okrągłą częścią nasadki rdzenia przylegającą do materiałów rdzenia.
   7. Włóż ręce do torby na rękawiczki (badacz 1). Trzymaj rdzeń stabilnie, aby nie przesuwał się dalej ponad płytę stabilizującą rdzenia, podczas gdy badacz 2 zacznie powoli obracać podnośnik laboratoryjny, aby podnieść rdzeń. Wytłaczarka rdzeniowa powinna wejść do wkładki rdzenia i zacząć wypychać osad w górę jak push pop.
   8. W razie potrzeby lekko porusz ekstruderem rdzeniowym na boki, aby włożyć go do wkładki rdzenia (badacz 2). Przygotuj się na lekki trzask, gdy wejdzie.
   9. Kontynuuj podnoszenie rdzenia, aż górna część rdzenia znajdzie się na lub w pobliżu górnej części wkładki rdzenia (badacze 1 i 2). Należy pamiętać, że podczas tej procedury nasadka rdzenia powinna pozostać na górze rdzenia.
3. Zamykanie worka na rękawiczki
   1. Dokładnie sprawdź, czy wszystkie niezbędne materiały znajdują się w torbie na rękawiczki; włącz przenośny miernik tlenu.
   2. Otwórz wszystkie probówki wirówkowe, butelki z wodą i inne przedmioty zawierające uwięzione powietrze. Jeśli rdzeń ma przestrzeń nad stojącą wodą, otwórz górną nasadkę, aby oczyścić tę przestrzeń nad głową.
   3. Włącz regulator tak, aby przepływ azotu przez rurkę do worka na rękawiczki był umiarkowany. Generalnie odpowiednie jest ciśnienie ~15 psi na ostatnim etapie regulatora przy otwartych wszystkich zaworach.
      UWAGA: Powinien być wystarczająco szybki, aby poczuć silny wiatr na skórze, ale nie tak silny, aby rozproszył zapasy rękawiczek.
   4. Skieruj azot do wszystkich obszarów worka rękawicowego i wypchnij azot przez główny otwór najlepiej jak potrafisz. Wyłącz azot.
   5. Trzykrotnie przeoczyść worek rękawicowy, powtarzając trzykrotnie kroki od 2.3.6 do 2.3.9.
      UWAGA: Jedna osoba może to osiągnąć, ale może to być łatwiejsze dla dwóch osób, dzięki czemu jedna może trzymać ręce w rękawicach, które są częścią torby na rękawiczki.
   6. Uszczelnij główny otwór torby na rękawice, owijając go kilkakrotnie 1-2 linkami bungee. Włączyć azot do podobnego przepływu jak w ppkt 2.3.3. Umieść dłonie badacza 1 we wbudowanych rękawicach w torbie z rękawiczkami.
   7. Przenieś rurkę z azotem z jednego obszaru worka do drugiego, aby napełnić worek rękawicowy azotem. Skieruj probówkę w wszelkie szczeliny, takie jak otwarta probówka wirówkowa, nad wodą w butelce ze spryskiwaczem itp.
   8. Wyłącz azot, zamykając rurkę clamp. Zauważ, że można to zrobić bez wyjmowania rąk badacza 1 z torby na rękawice.
   9. Otwórz przód torby z rękawiczkami i używając ciała badacza 1, wypchnij z niej jak najwięcej gazu.
      UWAGA: W tym momencie torba powinna być płaska wokół znajdujących się w niej zapasów.
   10. Napełnij torbę rękawicową do wygodnego ciśnienia i wyłącz azot za pomocą rurki clamp. Może być konieczne wykonanie kilku prób i błędów, aby znaleźć wygodny nacisk, ponieważ jest zbyt pełny i trudno jest poruszać rękami, a jednocześnie zbyt pusty i trudno jest widzieć i manipulować przedmiotami. Otwórz rurkę azotową clamp na krótkie okresy, aby napełnić worek, jeśli wydaje się, że ma powolny wyciek lub z jakiegokolwiek powodu staje się bardziej pusty. Otwórz przód torby, aby wypuścić niewielkie ilości azotu, jeśli stanie się nieprzyjemnie pełny.
   11. Sprawdź poziom tlenu rozpuszczonego w przenośnym tlenomierzu. Powinien wynosić poniżej 1%.
   12. Włóż rękawice z worka na rękawiczki do rękawiczek jednorazowych. Poprawią one zręczność. Zmieniaj je, gdy się zabrudzą lub rozerwą; Wyrzucić do pojemnika na odpady w worku.

3. Podział rdzenia na sekcje

UWAGA: ta część procedury jest znacznie łatwiejsza do wykonania przez dwóch badaczy.

1. Usunąć stojącą wodę za pomocą strzykawki. Przefiltruj tę wodę strzykawką i umieść ją w probówkach wirówkowych o pojemności 50 ml.
2. Usuwanie sekcji podstawowej
   1. Umieść pierścień do cięcia rdzenia powyżej górnej części wkładki rdzenia. Podnieś rdzeń do góry (sekcja 3.3), aż górna część osadu znajdzie się na szczycie pierścienia.
   2. Włóż krajalnicę rdzeniową między górną część wkładki rdzeniowej a pierścień. Sekcja osadu znajduje się teraz na szczycie krajalnicy rdzeniowej.
   3. Przenieś osad do probówki o pojemności 50 ml za pomocą jednorazowych łyżek. Zakręć szczelnie rurkę, gdy jest pełna.
   4. Opłucz krajalnicę rdzeniową i pierścień do cięcia rdzenia wodą nanoczystą; spryskaj brudne odpady do pojemnika na odpady wewnątrz worka na rękawiczki. Jednorazowe łyżki można również wypłukać lub wyrzucić, w zależności od potrzebnej liczby. Osusz krajalnicę i pierścień do cięcia rdzenia ręcznikami papierowymi.
   5. Powtarzaj krok 3.2, aż nie pozostanie już żaden materiał rdzenia.
3. Podnoszenie rdzenia
   1. W całym 3.2 konieczne jest podniesienie rdzenia. Rób to małymi krokami za pomocą podnośnika laboratoryjnego. Wykonaj następujące trzy kroki, gdy podnośnik laboratoryjny jest całkowicie wysunięty.
   2. Przytrzymaj rdzeń na miejscu w torbie na rękawiczki (badacz 1).
   3. Obniż podnośnik laboratoryjny do najniższego ustawienia, gdy jest całkowicie ściśnięty (badacz 2). Upewnij się, że rdzeń jest utrzymywany na miejscu, ręce badacza 1 znajdują się w torbie na rękawice, a ręce badacza 2 są podparte od spodu.
   4. Wypełnij przestrzeń między dolnym końcem wytłaczarki rdzeniowej a podnośnikiem za pomocą przekładek i złączek z PVC. Upewnij się, że rdzeń jest bezpiecznie podparty przez przedłużacz rdzenia przed puszczeniem górnej części rdzenia.

4. Wydobywanie porów

1. Otwórz worek na rękawiczki i wyjmij stojak z probówkami wirówkowymi.
2. W razie potrzeby wyczyść torbę na rękawice, usuwając brud, płyny lub kondensację, wycierając wnętrze ręcznikami papierowymi, wodą itp. Pusty pojemnik na odpady.
3. Ponownie luźno zamknij torbę na rękawiczki za pomocą linków bungee.
4. Zważyć probówki wirówkowe, które teraz zawierają pokrojony osad (w razie potrzeby).
5. Owiń górne części probówek wirówkowych taśmą izolacyjną, aby uszczelnić połączenie nasadka/probówka.
6. Zrównoważyć probówki do odwirowania, ważąc je po zaklejeniu taśmą. Dodaj lub usuń taśmę izolacyjną, aby uzyskać obciążniki z dokładnością do 0,5 g.
   UWAGA: Ogólnie rzecz biorąc, rurki od góry rdzenia będą lżejsze niż te od dołu.
7. Umieścić probówki w wirówce i odwirować z maksymalnym przyspieszeniem (zalecane 1 100 x g) przez 20 min.
   UWAGA: Wyższe szybkości wirowania pozwolą na większą separację wód porowych.
8. Usuń taśmę izolacyjną z probówek wirówkowych, odklejając je lub krojąc brzytwą przed włożeniem probówek z powrotem do worka na rękawice. Po odwirowaniu należy odłożyć probówki wirówkowe do stojaka i wrzucić z powrotem do worka na rękawice.
9. Dodaj kolejny zestaw probówek wirówkowych, strzykawek i filtrów strzykawkowych do worka na rękawiczki. Te nowe rurki będą przechowywać wody porowe i mogą być wstępnie oznakowane.
10. Ponownie wyczyść worek na rękawice, jak w kroku 2.3.5. Jeśli worek rękawicowy został otwarty tylko na chwilę w celu wyjęcia rurek i nie został wyczyszczony, dopuszczalne będzie jego wyczyszczenie tylko dwa razy. Jeśli używany jest monitor tlenu, należy upewnić się, że atmosfera w worku rękawicowym wynosi <1%_O2. Nie zapomnij otworzyć nowo dodanych probówek wirówkowych i je oczyścić.
11. Włóż ręce do rękawic w torbie na rękawiczki; tak jak poprzednio, przykryj je rękawiczkami jednorazowymi.
12. Otwórz jedną rurkę. Usunąć wody porowe znad osadu za pomocą strzykawki, a następnie przymocować filtr strzykawkowy do końcówki strzykawki. Jeśli wody porowe i osady są dobrze oddzielone, wody porowate można wlewać bezpośrednio do strzykawki z wyjętą lufą i filtrem strzykawkowym na końcówce.
13. Przepchnąć wodę przez filtr strzykawkowy do odpowiedniej probówki wirówkowej.
    UWAGA: Potrzebna będzie pewna siła; Może być wymagany więcej niż jeden filtr strzykawkowy na próbkę.
14. Załóż nakrętki na probówkę wirówki zawierającą osad i probówkę zawierającą wody porowe.
15. Powtórzyć kroki od 4.13 do 4.15 dla każdej próbki.
16. Otwórz worek rękawicowy i wyjmij próbki. Zarówno rurki z osadem, jak i wodą porową można ponownie zważyć.
17. W razie potrzeby natychmiast przeanalizuj wody porowe. Analizy mogą obejmować (ale nie ograniczają się do) chromatografii jonowej dla głównych jonów¹¹, ferrozyny dla specjacji żelaza¹², specjacji arsenu metodą woltamperometrii¹³ i specjacji siarczkowej¹⁴.
18. Zamrozić wody porowe i osady w suchym zbiorniku (około -80 °C) w celu zachowania specjacji do późniejszych analiz, jeśli jest to właściwe dla planowanych analiz. Właściwe może być również przechowywanie próbek w chłodnym miejscu w hermetycznych pojemnikach lub w aluminiowych workach oczyszczonych azotem.
19. W razie potrzeby ponownie użyć torby rękawicowej na drugi rdzeń (począwszy od 2.2.2). Po dwóch rdzeniach zwykle należy wymienić torbę na rękawice.

Wyniki

Rodzaj uzyskanych wyników zależy od przeprowadzonych analiz oraz od środowiska geochemicznego, z którego pobrano rdzeń. Tlen rozpuszczony można zmierzyć w ekstrahowanych wodach porowych, jednak w wielu środowiskach jego stężenie poniżej pierwszych kilku cm rdzenia będzie wynosić zero. Analizy, które zazwyczaj dostarczają bardziej istotnych informacji, obejmują specjację żelaza (Fe II/Fe III)¹², specjację arsenu (As III/As V)¹³ oraz zawartość siarczków¹⁴. O...

Dyskusja

Opisana tutaj technika jest elastyczna, którą można dostosować do szerokiego zakresu lokalizacji, rozmiarów rdzenia, grubości sekcji rdzenia itp. System ten składa się z trzech podstawowych elementów.

Po pierwsze, należy przygotować system wytłaczania rdzenia o odpowiednich wymiarach do analizy rdzenia. Instrukcje tutaj są podane przy założeniu rdzenia około 30"; znacznie dłuższe rdzenie mogą wymagać większej liczby przedłużaczy z PVC i złączek PVC do pełnego wytłaczania. Dokładnie za...

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule

Nazwa	Firma	Numer katalogowy	Komentarze
Jednorazowe torby na rękawiceSigma-Aldrich		Z106089-1EA	Zwykle wystarcza jeden na dwa rdzenie do przetworzenia.
Zbiornik N2	Praxair		Często firmy dostarczające gaz mogą dostarczyć je bezpośrednio do laboratorium terenowego.
Regulator azotu gazowego	VWR	55850-478	Lub podobny
stóp rurki pasującej do regulatora	VWR	89403-862	Lub podobny
Sprzęt zabezpieczający zbiornik	VWR	60142-006
Regulowany zacisk rurki	VWR	62849-112
Wodoodporna, dobrze uszczelniająca taśma izolacyjna	Scotch	Super 33+	Szeroko Dostępne
2-4 krótkie linki			Powszechnie dostępne
Butelki z natryskową wodą nanoczystą	VWR	16650-082	Każda podobna butelka jest w porządku; Zapakuj dodatkowy zapas wody nanoczystej, aby je napełnić.
Duży zapas ręczników papierowych i chusteczek Kimwipes			Powszechnie dostępne
probówki wirówkowe o pojemności 50 ml	VWR	21008-951	Oczyszczone kwasem zgodnie z opisem w protokole. Wymagana jest co najmniej 2 sekcje rdzenia.
Kilka trwałych w markerach.			Powszechnie dostępne
Kilka prostych żyletek i noży do pudełek.			Powszechnie dostępna
wirówka	Beckman-Coulter	Allegra X-22	Szybszy wirnik pozwala na większą separację.
Rotor do probówek 50 ml	Beckman-Coulter	SX-4250
Plastikowe strzykawki 50 ml bez czarnej gumowej końcówki na cylindrze	VWR	66064-764	Oczyszczony kwasem zgodnie z opisem w protokole. Wymagana jest co najmniej 1/sekcja rdzenia plus 1 dla wody leżącej.
Filtry strzykawkowe kompatybilne z roztworami wodnymi.	VWR	28143-310	Albo 0,45 μ m lub 0,20  μ Można użyć m rozmiarów porów. Zaplanuj pięć filtrów na każdą przetworzoną sekcję rdzenia.
Łyżki plastikowe (jednorazowe).			Powszechnie dostępne; Oczyszczony kwasem zgodnie z opisem w protokole.
Kilka pudełek jednorazowych rękawiczek.			Powszechnie dostępne
duże plastikowe zlewki lub inne pojemniki na odpady do umieszczenia w torbie na rękawiczki.	VWR	13890-148
Waga laboratoryjna	VWR	10205-008	Dostępna waga będzie w porządku; wysoka precyzja nie jest wymagana
Transporter suchy, wstępnie napełniony ciekłym azotem	VWR	82005-416	Wymagany tylko wtedy, gdy próbki są zwracane do laboratorium macierzystego w celu przeprowadzenia delikatnych analiz.
Notatniki laboratoryjne Wodoodporny			może być przydatny
Wkładki do rdzenia	Znak wodny	77280	Dostępne u dostawców leśnych
Czapki rdzeni	Ben Meadows	218105
Krajalnice do rdzeni	McMaster Carr	8707K111	Pokrój to na 9 3 x 3 kwadraty
Przekładki PCV	McMaster Carr	48925K96	Pokrój to na krótkie odcinki
Złączki PVC	McMaster Carr	4880K76	Około 12 potrzebnych
kołków			Szeroko dostępny
Korek laboratoryjny	VWR	59580-400	Sprawdź, czy rozmiar jest prawidłowy, aby ściśle przylegał do wkładek rdzenia
Sklejka na płytę prowadzącą rdzeń i górną część podnośnika			Powszechnie dostępny
Podnośnik laboratoryjny	VWR	89260-826
Zaciski			Szeroko dostępne
Przenośny monitor tlenu	Przyrządy RKI	OX-07

Kilka bungee laboratoryjnego