Subskrypcja JoVE jest wymagana do oglądania tego materiału. Zaloguj się lub rozpocznij bezpłatny okres próbny.

Artykuł metodologiczny

Pomiar aktywności autonomicznego układu nerwowego serca (ANS) u małych dzieci - wyzwania związane z odpoczynkiem i rozwojem

14.6K wyświetleń

DOI:

10.3791/53652

25 lutego 2016

W tym artykule

Podsumowanie

Opisujemy metody ciągłego monitorowania autonomicznego układu nerwowego w warunkach spoczynku i prowokacji u 18-miesięcznych dzieci. Wyniki ujawniły, że protokół ten może wywoływać znaczące reakcje fizjologiczne w obu gałęziach autonomicznego układu nerwowego i wywoływać znaczną indywidualną zmienność we wzorcach reakcji.

Streszczenie

Autonomiczny układ nerwowy (ANS) składa się z dwóch gałęzi, przywspółczulnego i współczulnego układu nerwowego, i kontroluje funkcje organów wewnętrznych (np. tętno, oddychanie, trawienie) i reaguje na codzienne i niekorzystne doświadczenia 1. Stwierdzono, że pomiary ANS u dzieci są związane z problemami z zachowaniem, regulacją emocji i zdrowiem 2-7. Dlatego ważne jest zrozumienie czynników, które wpływają na rozwój ANS we wczesnym dzieciństwie. Obie gałęzie ANS wpływają na reakcje sercowo-naczyniowe małych dzieci na bodźce i zostały zmierzone nieinwazyjnie, za pomocą zewnętrznego sprzętu monitorującego, przy użyciu ważnych i wiarygodnych miar zmian fizjologicznych 8-11. Istnieje jednak niewiele badań z udziałem bardzo małych dzieci z jednoczesnym pomiarem przywspółczulnego i współczulnego układu nerwowego, co ogranicza zrozumienie zintegrowanego funkcjonowania tych dwóch układów. Ponadto większość istniejących badań nad małymi dziećmi informuje o pomiarach spoczynkowych ANS u niemowląt lub ich reaktywności na powszechnie stosowane paradygmaty interakcji matka-dziecko, a mniej wiadomo o reaktywności ANS na inne trudne warunki. Przedstawiamy projekt badania i ustandaryzowany protokół do nieinwazyjnej i szybkiej oceny autonomicznej kontroli serca u 18-miesięcznych dzieci. Opisujemy metody ciągłego monitorowania gałęzi przywspółczulnych i współczulnych ANS w warunkach spoczynku i prowokacji podczas wizyty domowej lub laboratoryjnej oraz przedstawiamy opisowe wyniki z naszej próby 140 etnicznie zróżnicowanych maluchów przy użyciu zwalidowanego sprzętu i oprogramowania do oceniania. Wyniki wykazały, że protokół ten może wywoływać szereg reakcji fizjologicznych zarówno w warunkach spoczynkowych, jak i trudnych rozwojowo, na co wskazują zmiany częstości akcji serca i wskaźników aktywności przywspółczulnej i współczulnej. Osoby wykazały zmienność poziomów spoczynku, odpowiedzi na wyzwania i reaktywność wyzwania, co dostarcza dodatkowych dowodów na to, że protokół ten jest przydatny do badania indywidualnych różnic ANS u małych dzieci.

Wprowadzenie

Indywidualne różnice w reaktywności autonomicznego układu nerwowego (ANS) u dzieci odgrywają ważną rolę w rozwoju i utrzymywaniu problemów ze zdrowiem fizycznym i psychicznym 12-16. Coraz więcej dowodów wskazuje, że indywidualne różnice w pomiarach ANS w spoczynku i reaktywności są predyktorami różnic w internalizującej i eksternalizującej psychopatologii dzieci 4,9,17-19 oraz zdrowiu fizycznym 7,20. Oprócz tych bezpośrednich lub głównych skutków funkcjonowania ANS, coraz więcej badań wykazało, że reaktywność dzieci może wchodzić w interakcje z kontekstowymi czynnikami ryzyka, takimi jak zdarzenia niepożądane lub konflikty małżeńskie, w celu złagodzenia tych skutków dla dobrostanu i zdrowia dzieci (zob. odnośnik 21 w celu zapoznania się z przeglądem). Pomimo coraz większej liczby dowodów na to, że reaktywność autonomiczna dzieci odgrywa rolę w zdrowiu przez całe życie, oraz towarzyszącego jej zainteresowania tymi procesami, istnieje potrzeba przeprowadzenia dodatkowych badań nad rozwojem funkcjonowania ANS u dzieci poniżej trzeciego roku życia.

ANS składa się z dwóch gałęzi, przywspółczulnego i współczulnego układu nerwowego. Reguluje funkcje narządów wewnętrznych (np. tętno, oddychanie, trawienie i podniecenie seksualne), w dużej mierze poprzez nieświadome mechanizmy, w odpowiedzi na codzienne i niekorzystne doświadczenia 1. Przywspółczulny układ nerwowy (PNS) to system "odpoczynku i regeneracji", który utrzymuje niskie tętno spoczynkowe i stan regeneracyjny podczas snu lub relaksu Współczulny układ nerwowy (SNS) to system "walki lub ucieczki", który reaguje na sytuacje awaryjne lub zagrażające, przyspieszając tętno 23. Zatokowa arytmia oddechowa (RSA) jest wiarygodnym wskaźnikiem wpływu PNS na czynność serca, a okres przedwyrzutowy (PEP) jest wiarygodnym wskaźnikiem wpływu SNS na czynność serca. Stwierdzono, że zarówno RSA, jak i PEP są ważnymi środkami poprzez eksperymentalną blokadę farmakologiczną w próbkach od dorosłych 24,25. Ostatnio prace te zostały rozszerzone na próbki dzieci i młodzieży, co jeszcze bardziej ugruntowało znaczenie RSA i PEP jako ważnych i wiarygodnych miar aktywności ANS w całym okresie rozwoju 8,26,27. Wiarygodne pomiary kardiografii impedancyjnej (PEP) przy użyciu elektrod pasmowych i punktowych są stosowane od dłuższego czasu w próbkach dorosłych 28. Ostatnio wykazano również, że pomiary równoległe i techniki analityczne są wiarygodne i ważne w próbkach dzieci 11,29,30, chociaż zbieranie pomiarów PEP u małych dzieci jest rzadkie.

Istnieje obszerna literatura na temat funkcjonowania PNS u niemowląt i małych dzieci, w tym pomiary napięcia błędnego i arytmii zatok oddechowych. Istnieje mniej badań nad SNS z wykorzystaniem PEP i bardzo niewiele jednocześnie badających zarówno przywspółczulny, jak i współczulny układ nerwowy, co ma kluczowe znaczenie dla zrozumienia ich wysoce zintegrowanego funkcjonowania. Spośród niewielu badań nad PEP u małych dzieci, większość stwierdza, że ich protokoły nie powodują znaczących zmian w PEP na poziomie grupy w odpowiedzi na wyzwania 8,31. Badania wykazały, że istnieje stabilność w pomiarach spoczynkowych PNS począwszy od niemowlęctwa i mają one związek z temperamentem, zachowaniem i zdrowiem,13,16,26,32,33, ale istnieje ograniczone zrozumienie reakcji SNS i jego stabilności w czasie, związku z rozwojem i czynników, które kształtują jego trajektorię rozwojową. Odpowiedzi PNS przypisano przede wszystkim zaangażowaniu społecznemu16, a odpowiedzi SNS zaproponowano tak, aby odzwierciedlały "reakcje walki lub ucieczki"1, a także wrażliwość na nagrodę (patrz odniesienie 34 w celu przeglądu). U małych dzieci trudno jest symulować konkretne wyzwania w laboratorium i angażować je ze względu na krótki czas koncentracji. Istnieją również wyzwania pomiarowe dla małych dzieci, które mogą odczuwać dyskomfort związany z siedmioma elektrodami punktowymi potrzebnymi do jednoczesnego pomiaru PNS i SNS. Ponadto w dziedzinach nauk o rozwoju istnieje niewiele standardów dotyczących tego, jak wystarczająco wywołać "reaktywność na stres", jednocześnie szanując potrzeby rozwojowe dzieci i etykę w pracy z dziećmi. W artykule przedstawiono informacje na temat podawania i oceniania standardowego protokołu składającego się z warunków spoczynkowych i trudnych, mających na celu wywołanie reakcji przywspółczulnego i współczulnego układu nerwowego u 18-miesięcznych dzieci.

reaktywność ANS jest zazwyczaj konceptualizowana jako fizjologiczna reakcja na dyskretny bodziec zewnętrzny w stosunku do porównania lub stanu spoczynku, która różni się u poszczególnych organizmów 22. Badanie etiologii problemów ze zdrowiem psychicznym i fizycznym we wczesnym okresie życia skłoniło naukowców do szczególnego zainteresowania zrozumieniem reakcji dzieci na sytuacje, które wywołują reakcję adaptacyjną lub mogą być uważane za stresujące wyzwania. W literaturze przeważa zjawisko to określa się mianem "reaktywności na stres", chociaż napotkanie trudnych bodźców może wywołać reakcje w szerokim zakresie dziedzin. W związku z tym opisany poniżej protokół został zaprojektowany w celu wywołania reakcji ANS w wielu domenach, w tym w dwóch formach odpoczynku (podczas słuchania kojącej kołysanki i podczas oglądania spokojnego, neutralnego filmu) oraz trzech odpowiednich dla rozwoju wyzwań dla 18-miesięcznych dzieci: przewidywanie/przerażenie (sok z cytryny), sensoryczne (sok z cytryny) i społeczno-emocjonalne (słuchanie płaczu chorego niemowlęcia). Protokół został zaadaptowany z naszych istniejących protokołów dla 12-miesięcznych dzieci w wieku 8 lat i 3-5-latków w wieku 11 lat, aby uczynić go wymagającym rozwojowo, angażującym i znośnym dla małych dzieci (18-21 miesięcy).

Tutaj prezentujemy Protokół Wyzwań Rozwojowych (DCP) oraz dane ANS z 18-miesięcznej wizyty studyjnej w ramach Studium Stresu, Jedzenia i Wczesnego Rozwoju (SEED) kobiet w ciąży i ich potomstwa. Uczestniczki ze zdrowymi ciążami zostały zrekrutowane w latach 2013-14 do badania przyrostu masy ciała w ciąży i stresu prenatalnego i miały nadwagę, niskie dochody oraz były zróżnicowane rasowo i etnicznie. Świadoma zgoda rodziców na badanie jej potomstwa została uzyskana tuż po urodzeniu i ponownie przed rozpoczęciem zbierania danych do opisywanego tutaj badania, gdy potomstwo miało 18-21 miesięcy w latach 2014-2015.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Protokół

Badanie to zostało zatwierdzone przez Komisję ds. Badań nad Ludźmi Uniwersytetu Kalifornijskiego w San Francisco.  

1. Przygotowanie przed rozpoczęciem protokołu (pełna lista sprzętu znajduje się w arkuszu materiałów)

  1. Przygotuj sprzęt, włączając komputer i podłączając jednostkę akwizycji danych ANS do źródła zasilania.
    UWAGA: Nie włączaj jednostki akwizycji.
  2. Przed rozpoczęciem zbierania danych skonfiguruj oprogramowanie do gromadzenia danych ANS. Wybierz ustawienia zgodne z rysunkami 1.

figure-protocol-1
Rysunek 1. Ustawienia konfiguracji oprogramowania BioLab. Na tym rysunku przedstawiono zrzut ekranu ustawień konfiguracji, które należy zastosować podczas gromadzenia danych ANS, zgodnie z opisem w kroku 1.2.

  1. Przechowywać elektrody punktowe w szczelnym opakowaniu do momentu ich użycia, ponieważ ich jakość pogarsza się z czasem pod wpływem kontaktu z powietrzem. Przymocować elektrody punktowe do każdego z 7 przewodów typu snap, dociskając je do twardej powierzchni. Upewnić się, że przewody nie są splątane i są mocno połączone z elektrodami.
  2. Włączyć tablet i przygotować aplikacje audio oraz wideo (patrz Krok 4 poniżej). Ustawić głośność tabletu na 80% maksymalnej wartości, a głośnik ustawić na pełną głośność.
  3. Ustawić statyw i kamerę w miejscu, które nie będzie przeszkadzać.
  4. Przed rozpoczęciem protokołu przygotować elementy niezbędne do zadania z sokiem z cytryny. Nalać niewielką ilość wody do małego papierowego kubka w celu wypłukania ust po zadaniu z sokiem z cytryny (około 3 uncji). Wlać bardzo małą ilość soku z cytryny z saszetki do innego kubka i napełnić jednorazową plastikową pipetę 2 kroplami soku z cytryny (ilość ta sięga pierwszego zwężenia pipety i odpowiada około 0.1 ml). Położyć pipetę na ręczniku papierowym lub w kubku z sokiem z cytryny i odstawić w miejsce, gdzie nie będzie przeszkadzać.

2. Protokół przygotowania matki i potomstwa do wyzwań rozwojowych

  1. Upewnij się, że dwie osoby – Oceniający Dziecko (CA) oraz Operator Komputera (CO) – są przygotowane do przeprowadzenia protokołu. Przedstaw personel matce i dziecku oraz zadbaj o ich komfort. Nawiąż kontakt wzrokowy i rozmawiaj z dzieckiem, aby zbudować relację zaufania między matką, dzieckiem a personelem. Pozwól dziecku na oswojenie się z CA i CO. Nie przytłaczaj małego dziecka nadmierną uwagą.
  2. Zapytaj matkę, czy dziecko musi zostać nakarmione lub czy wymaga zmiany pieluchy przed umieszczeniem elektrod, aby uniknąć zakłóceń w późniejszym etapie. Pozwól matce zaspokoić potrzeby dziecka przed rozpoczęciem protokołu.
  3. Podczas zapoznawania się pozwól dziecku bawić się na podłodze lub w otwartej przestrzeni. Po rozpoczęciu protokołu poleć matce, aby trzymała dziecko na kolanach aż do jego zakończenia.
  4. Omów protokół z matką, odczytując Skrypt A (patrz: informacje uzupełniające). Porozmawiaj również bezpośrednio z dzieckiem o tym, co będzie działo się podczas wizyty.

3. Podłączenie sprzętu do akwizycji ANS do dziecka

  1. Poleć asystentowi badaniu (CA) przyłożenie elektrod do szyi i tułowia dziecka (patrz Rysunek 2), podczas gdy koordynator badania (CO) odwraca uwagę dziecka. W razie potrzeby, aby zainteresować dziecko, użyj białych okrągłych naklejek, by zaprezentować rozmieszczenie elektrod na lalku. Działaj szybko i umieść elektrody pod koszulką dziecka, aby zminimalizować prawdopodobieństwo, że dziecko ich dotknie lub je usunie.

figure-protocol-2
Rysunek 2. Konfiguracja elektrod dla 18-miesięcznych dzieci. Uwaga: dwie elektrody EKG są rozmieszczone w konfiguracji odprowadzenia II. Przedstawiono również alternatywne rozmieszczenie elektrod w okolicy karku.

  1. Przykleić elektrody bezpośrednio do skóry. Docisnąć palcami papierową taśmę wokół żelu, aby upewnić się, że elektroda punktowa przylga do skóry. Wszystkie elektrody muszą być rozmieszczone w odległości co najmniej 3 cm od siebie, aby zapewnić prawidłowe przewodzenie sygnału. W przypadku odległości trudnych do określenia, użyć centymetra krawieckiego, aby zmierzyć i zweryfikować tę minimalną odległość, mierząc dystans między środkami każdej elektrody.
    UWAGA: Następująca kolejność rozmieszczania elektrod u dzieci okazała się skuteczna i dobrze tolerowana przez maluchy.
    1. Umieścić elektrodę podłączoną do czerwonego prowadnika (-) na środku dolnego odcinka pleców.
    2. Umieścić elektrodę podłączoną do białego prowadnika (-) tuż nad wyrostkiem mieczowatym, który znajduje się na złączu mieczowatym (dolna końcówka mostka; miejsce, w którym spotykają się lewa i prawa klatka piersiowa). Upewnić się, że ta elektroda znajduje się co najmniej 3 cm powyżej czerwonej elektrody punktowej (-).
    3. Umieścić elektrodę podłączoną do białego prowadnika (+) tuż po lewej stronie wcięcia nadmostkowego (po prawej stronie oceniającego), na krawędzi obojczyka.
      1. Użyć centymetra krawieckiego, aby zmierzyć, zweryfikować i zapisać odległość w cm między dwiema przednimi elektrodami (białą (+) i białą (-)) do późniejszego wykorzystania w programie oceny impedancji.
    4. Umieścić pierwszą elektrodę EKG podłączoną do brązowego prowadnika (-) na prawym obojczyku w miejscu, gdzie kość obojczyka łączy się z kością łopatki. Docisnąć piankę wokół elektrody i wyczuć kość obojczyka. Umieścić elektrodę wzdłuż kości.
    5. Umieścić drugą elektrodę EKG podłączoną do brązowego prowadnika (+) na lewym dolnym żebrze. Docisnąć piankę wokół elektrody i wyczuć kość żebra.
    6. Umieścić elektrodę uziemiającą podłączoną do czarnego prowadnika (-) na prawym dolnym żebrze dziecka, w linii z płaszczyzną poziomą elektrody dolnego lewego żebra.
  2. Zebrać i przypiąć dolne końce prowadników do ubrania dziecka, aby zminimalizować ich przemieszczanie się. Polecić operatorowi komputera (CO) monitorowanie komputera. Polecić asystentowi (CA) nawiązanie kontaktu z dzieckiem i omówienie z matką czynności przewidzianych w protokole (patrz Skrypt B w informacjach uzupełniających).
  3. Włączyć jednostkę akwizycji danych ANS w celu zarejestrowania sygnałów impedancji i elektrokardiogramu (EKG). Nacisnąć „Redetect”, aby rozpocząć analizę EKG, a następnie kliknąć raz „Start” znajdujący się obok zielonej lampki w prawym dolnym rogu okna programu.
    1. Odczekać 5 min po rozmieszczeniu elektrod, aby żel w pełni przylgnął do skóry dziecka, co zapewni optymalne przewodnictwo sygnałów EKG i impedancji. Po 5 min sprawdzić ekran komputera, aby przejrzeć sygnały i upewnić się, że wyglądają prawidłowo (CO). Włączyć kamerę wideo (CO).
      1. Unikać luźnych rozmów z dzieckiem w tym czasie. Jeśli dziecko wydaje się niekomfortowo, zaoferować mu ustandaryzowaną „opcjonalną” miękką zabawkę do trzymania (zaplanować zabranie zabawki z ręki tuż przed rozpoczęciem protokołu).
        UWAGA: Wyjaśnić dziecku i matce, że konieczne jest chwilowe odczekanie, aby upewnić się, że sprzęt działa prawidłowo.
      2. Pokazać matce obraz aktywności serca dziecka na komputerze i wyjaśnić, co reprezentuje każdy sygnał. Przypomnieć matce, że aktywność ta nie jest wykorzystywana do diagnozowania problemów zdrowotnych. Zapewnić ją, że jeśli zespół badawczy zauważy coś niepokojącego, zostanie ona o tym powiadomiona. Postępować zgodnie ze Skryptem B (patrz informacje uzupełniające).

4. Przeprowadzanie zadań w protokole wyzwań rozwojowych

  1. Otwórz odtwarzacz multimedialny na tablecie. Odtwórz pierwszą 1-minutową kołysankę. Trzymaj tablet poza zasięgiem dziecka.
  2. Trzymaj pozytywkę w formie pudełka (jack-in-the-box) przed dzieckiem. Powoli obracaj korbką i odtwarzaj muzykę, aż wyskoczy małpka z skarpetki, tak aby jedna pełna runda trwała 15 sec. Powtórz czynność cztery razy.
  3. Rozpocznij zadanie z sokiem z cytryny zgodnie ze Skryptem C (patrz informacje uzupełniające). Nanieś 2 krople skoncentrowanego soku z cytryny na środek języka dziecka, nieco za jego przednią częścią, aby sok nie spłynął z języka.
    UWAGA: Jeśli pipeta znajdowała się w kubku z sokiem, przed naniesieniem go na język strząśnij nadmiar kropel z zewnętrznej strony pipety.
    1. Przez 10 sec zachowaj ciszę, utrzymując przyjazny, neutralny wyraz twarzy. Jeśli dziecko będzie potrzebować zapewnienia, zapytaj: „Jaki to był smak?”.
      UWAGA: Zadanie z sokiem z cytryny musi trwać co najmniej 20 sec, licząc od poinformowania dziecka o płynie, poprzez oczekiwanie po podaniu kropel do ust, aż po obserwację reakcji.
    2. Co najmniej 10 sec po podaniu soku z cytryny powiedz: „Teraz czas napić się wody” i podaj dziecku łyk wody. Jeśli dziecko odmówi, odczekaj kilka sekund i spróbuj ponownie, mówiąc: „Teraz możesz napić się wody”. Naciśnij klawisz F4 w momencie, gdy oceniający zaczyna oferować wodę (CO).
  4. Odtwórz na tablecie za pomocą odtwarzacza multimedialnego 30-sekundowe nagranie płaczącego chorego niemowlęcia. Trzymaj tablet poza zasięgiem dziecka.
  5. Odtwórz na tablecie za pomocą odtwarzacza multimedialnego drugą 1-minutową kołysankę. Trzymaj tablet poza zasięgiem dziecka.
  6. Odtwórz na tablecie za pomocą odtwarzacza multimedialnego 2-minutowy neutralny film. Trzymaj tablet w odległości około 12 cali od twarzy dziecka, ale nie pozwól mu go chwycić ani trzymać.

5. Oznaczanie segmentów protokołu podczas podawania wyzwań rozwojowych (CO) 

  1. Poinstruuj operatora (CO), aby naciskał klawisze funkcyjne (F) (ustalone wcześniej przez użytkownika w celu zidentyfikowania zadań lub potencjalnych problemów podczas oceny danych), aby oznaczyć ważne kroki protokołu w danych ANS (patrz Tabela 1). Naciśnij klawisz F11, aby wskazać, że zadanie zakończyło się przedwcześnie (wpisz „ended task early” oraz wyjaśnienie w polu tekstowym) lub w przypadku poważnych problemów lub naruszeń protokołu, takich jak odpadnięcie elektrody lub wejście kogoś do pomieszczenia i rozproszenie dziecka (wpisz wyjaśnienie w polu tekstowym).
Legenda markerówZdarzenieCzas od rozpoczęcia
F1Lullaby 1 start60 s
F2Start zestawu Jack-in-the-box60 s
F3Skrypt dotyczący soku z cytryny startPrzynajmniej 20 s
F4Koniec podawania soku z cytryny (podano wodę do picia)Przynajmniej 10 sesji
F5początek płaczu niemowlęcia30 s
F6Rozpoczęcie Lullaby 260 s
F7Start wideo120 s
F10Koniec DCP (koniec filmu)
F11Poważne zdarzenia niepożądane

Tabela 1: Klucze markerów do oznaczania zdarzeń protokołu podczas zadań prowokacyjnych. Przedstawiono klucze markerów opisane w kroku 5.1, używane do wskazywania ważnych zdarzeń protokołu oraz rzadkich wystąpień w pliku danych ANS.

6. Protokół wyzwań pozarozwojowych

  1. Asystent Badania (CA) powinien powiedzieć matce: „Jak Pani ocenia ten etap? (pauza na odpowiedź) Ciekawe jest to, jak dzieci reagują na te różne aktywności. Teraz nadszedł czas, aby delikatnie odłączyć elektrody ze skóry dziecka”.
  2. Wyłącz system akwizycji danych ANS przed dotykaniem lub usuwaniem elektrod.
    UWAGA: Wyłączone urządzenie nie przewodzi ani nie transmituje prądu elektrycznego.
  3. Usuń elektrody z ciała dziecka, używając jednego palca do napinania skóry, podczas gdy druga ręka usuwa elektrodę. Pociągnij za zakładkę elektrody w kierunku przeciwnym do tego, w którym jest ona skierowana. Elektrody z miejsc najbardziej wrażliwych (przód i tył szyi) usuwaj na samym końcu. Pozwól matce usunąć elektrody, jeśli dziecko jest szczególnie zdenerwowane lub jeśli ona sama wyrazi taką chęć. Użyj wilgotnej chusteczki, aby usunąć pozostałości elektrod ze skóry, oraz suchego gazika, jeśli skóra jest mokra lub znajduje się na niej żel.
  4. Wyłącz kamerę wideo. Zapisz plik danych ANS, wyjdź z programu i wyłącz komputer.
    UWAGA: Oprogramowanie do akwizycji danych ANS tworzy dwa pliki danych: plik „.mw” (surowe dane ANS) oraz plik „.event”, który jest plikiem tekstowym z zapisem naciśniętych klawiszy funkcyjnych.

7. Ocena arytmii zatokowej związanej z oddychaniem

  1. Otwórz program do analizy zmienności rytmu serca (HRV), aby oczyścić dane EKG oraz wyznaczyć tętno (HR), RSA i częstotliwość oddechów (RR).

figure-protocol-3
Rycina 3. Główny ekran nawigacji oprogramowania do analizy HRV. Wyświetlone są ustawienia służące do oceny danych ANS u małych dzieci przy użyciu oprogramowania do analizy HRV. Aby ocenić segmenty, należy przeciągnąć zdarzenia do pól „Event Type”.

  1. Przejrzyj dostępne notatki terenowe z etapu gromadzenia danych, aby zidentyfikować ewentualne nietypowe okoliczności lub błędy, które mogły wystąpić. Zlokalizuj i dwukrotnie kliknij plik „.mw” przeznaczony do analizy w oknie wyskakującym („Choose or Enter Path of File”).
    UWAGA: Nazwa pliku z danymi uczestnika poddawanego analizie powinna pojawić się w białym polu u góry ekranu.
    1. Ustaw „Channel Labels” w następujący sposób: Channel 1- ECG, Channel 2- Zo, Channel 3- DZ/dt. Zweryfikuj, czy częstotliwość próbkowania (Sampling Frequency) jest ustawiona na 1,000. Kliknij „ok” na dole ekranu, aby otworzyć główny ekran nawigacji (Rycina 3).
      UWAGA: Kanały te powinny być zgodne z tymi ustawionymi podczas gromadzenia danych.
    2. Wybierz ustawienia zgodne z tymi przedstawionymi na rycinie. Ustaw Mode na „Event”. Ustaw Event Identifier na „Name”, aby wyświetlić nazwę zadania (np. „jack-in-the-box”). Ustaw „Post Event Time(s)” na 30 sec.
      UWAGA: Długość pliku (File Length) będzie różnić się dla każdego dziecka. „Type” odnosi się do klawisza funkcji (F), który został naciśnięty podczas protokołu przez CO. Jeśli tryb Mode nie jest ustawiony na Event, lecz na Time, „Segment Time” można ustawić na różne przedziały czasowe w sekundach (np. 30 lub 60).
    3. Kliknij kartę „HRV Calibration Settings”. Ustaw metodę obliczeń (calculation method) na „Entire”. Ustaw sygnał oddechowy (respiratory signal) na „Zo” (nie dZ/dt). Ustaw funkcję okna (windowing Function) na „Hamming”. Ustaw zakres pasma VLF na 0.003 do 0.04 Hertz (Hz), zakres pasma niskiej częstotliwości LF na 0.04 do 0.15 Hz oraz zakres pasma wysokiej częstotliwości HF na 0.15-1.04 Hz dla niemowląt i małych dzieci.
    4. Kliknij następną kartę, „R Peak & Artifact Settings”. Ustaw IBI oraz MAD MED na „on”. Ustaw maksymalną częstotliwość akcji serca (Maximum Heart Rate) na 230 uderzeń na minutę (BPM) oraz minimalną częstotliwość akcji serca (Minimum Heart Rate) na 40 BPM. Ustaw suwak czułości wykrywania szczytów R (R Peak Detection Sensitivity) na 1. Ustaw manual override na OFF. Włącz filtr linii bazowej i szumów mięśniowych (Baseline and Muscle Noise Filter – kolor jasny zielony) oraz wyłącz filtr notch (kolor ciemnoszary). Ustaw filtr szumów na 60 Hz.
    5. Kliknij następną kartę, „Additional Settings”. Kliknij pole tak/nie w sekcji ustawień wyjściowych („Use default output path”), aby wybrać domyślną lokalizację zapisu pliku wyjściowego. Zaznacz przycisk „Show report” (kolor jasny zielony).
      UWAGA: Synchronizowane wideo można wyświetlić, klikając pole „Yes/No” pod „use default video path”. Wcześniej edytowany plik danych można wyświetlić, klikając pole „use edited data” Yes/No.
    6. Wróć do karty „Events and Modes”. Kliknij przycisk „analyze”.
    7. Wybierz „yes” lub „no” w odpowiedzi na pytanie „Is the ECG inverted? No/Yes”.
      UWAGA: Większość zapisów ECG nie jest odwrócona. Otworzy się okno analizy, wyświetlające 30 sec danych. Program analizy HRV oznacza każdy szczyt R jasnoniebieską kropką, a potencjalną wartość odstającą lub nieregularny wzorzec oznacza żółtą gwiazdką. Wartości odstające mogą być zaznaczone, gdy odległość między dwoma szczytami R różni się od regularnego odstępu R-R dla danej osoby.
    8. Przejrzyj wszystkie wartości odstające (żółte gwiazdki), aby zidentyfikować przyczynę ich pojawienia się (patrz opcje edycji w 7.1.1.9). Po wprowadzeniu niezbędnych poprawek zapisz interesujące zmienne w dzienniku danych.
      UWAGA: Pole w prawym dolnym rogu okna analizy wyświetla wartości obliczone dla tego segmentu, w tym HR, RR i RSA.
    9. Kliknij „Edit R’s” (zielony przycisk w oknie Controls), aby zbadać wartości odstające. Kliknij ikonę lupy, aby zwiększyć powiększenie.
    10. Użyj czerwonego przycisku „delete”, aby usunąć błędnie umieszczone żółte gwiazdki, oraz białego przycisku „insert”, aby zaznaczyć szczyty R.
      UWAGA: Zazwyczaj jasno widać, gdzie szczyty R powinny zostać usunięte lub zaznaczone ręcznie. Bardzo zaszumione sekcje można usunąć za pomocą żółtego przycisku „Remove Data Portion”, po przesunięciu jasnoniebieskich kursorów x wokół sekcji do usunięcia. Należy to robić wyłącznie na początku lub na końcu segmentu; do obliczenia poprawnych wyników dla 30 sec segmentu wymagane są 20 następujących po sobie sec danych.
    11. Kliknij „OK” na dole ekranu, aby zapisać zmiany, powrócić do poprzedniego ekranu i wyświetlić edytowane dane. Kliknij „Write” (biały przycisk na górnym pasku narzędzi), aby wyeksportować przeanalizowane dane do pliku Excel. Powtórz ten proces dla każdego 30 sec odstępu lub zadania poddawanego analizie.
      UWAGA: „Cancel” zamyka program bez zapisywania zmian.
    12. Po edycji i zapisaniu wszystkich 30 sec segmentów danych kliknij „Done” w panelu „Controls”.
      UWAGA: W oknie wyskakującym pojawi się prośba o podanie nazwy pliku dla edytowanych danych. Wszystkie edytowane i przeanalizowane dane dla każdego dziecka zostaną zapisane w jednym pliku .edh.

8. Ocena okresu przedwyrzutowego

UWAGA: Program Impedance (IMP) Analysis umożliwia oczyszczanie danych impedancyjnych oraz wyznaczenie wartości HR i PEP.

figure-protocol-4
Rysunek 4. Ekran ustawień kalibracji impedancji w analizie IMP. Wyświetlono ustawienia do oceny danych ANS u małych dzieci przy użyciu oprogramowania do oceny analizy impedancji.

  1. Otwórz program IMP Analysis. Kliknij dwukrotnie program IMP Analysis i wybierz ten sam plik .mw, który został wcześniej oceniony w programie HRV Analysis. Wybierz te same kanały dla każdej pozycji „Channel Label:”: Channel 1- ECG, Channel 2- Zo, Channel 3- dZ/dt. Naciśnij „OK”. W zakładce Events and Modes wybierz te same ustawienia, co w programie HRV Analysis.
    1. Kliknij zakładkę „Impedance Calibration Settings” (Rysunek 4). Wybierz ustawienia zgodne z tymi przedstawionymi na rysunku. Ustaw „Electrode Type” na „spot”. Wprowadź odległość między elektrodami (odległość między białymi elektrodami zmierzoną i zapisaną podczas zbierania danych). Ustaw „Ensemble Length (ms)” na 400 dla małych dzieci.
    2. Ustaw „Q point calculation method” na „Minimum value K-R interval”. Ustaw wartość K na 25 dla dzieci w wieku 18 miesięcy (wartość K może być dostosowana indywidualnie dla każdego dziecka, jeśli jest to konieczne). Ustaw „B point calculation method” na „percent of dZ/dt time + C”. Ustaw wartość percent dZ/dt peak na „55”, a stałą na „4”. Ustaw „dZ/dt source” na „measured”. Zweryfikuj, czy kontrolka „Detrend dZ/dt” jest zapalona dla stacjonarnego modułu akwizycji.
    3. Kliknij zakładkę „R Peak & Artifact Settings”. Zweryfikuj, czy kontrole IBI min/max oraz MAD MED są włączone („on”). Ustaw Maximum Heart Rate (BPM) na 230 dla małych dzieci, a Minimum Heart Rate (BPM) na 40. Ustaw Peak Detection Sensitivity na 1. Wyłącz funkcję Manual Override. Włącz filtr „Baseline and Muscle Noise Filter” (jasnozielony). Wyłącz „notch filter” (ciemnozielony). Wyłącz ustawienie 60 Hz.
    4. Kliknij zakładkę „Additional Settings”. Nie zaznaczaj przycisku „Auto Analyze All Data Segments”. Wybierz „YES” w polu tak/nie „Use Edited Data”, jeśli w programie HRV wprowadzono jakiekolwiek poprawki. Kliknij dwukrotnie edytowany plik (.edh) w wyskakującym oknie. Wybierz „Excel” jako tryb wyjściowy. Kliknij jasnozielony przycisk „Analyze (Enter)”.
      UWAGA: Jeśli podczas oceny HRV nie wprowadzono poprawek, użycie edytowanych danych w tym kroku nie jest konieczne (ani możliwe).
    5. Kliknij „Ensemble Editor”, aby zobaczyć pełnoekranowy widok fali zespołowej (ensemble wave), która jest obrazem uśredniającym wszystkie przebiegi z danego segmentu.
    6. Sprawdź położenie punktu Q, które jest określone przez wartość K wprowadzoną podczas konfiguracji. Przewiń wszystkie segmenty, aby zweryfikować położenie punktu Q.
      UWAGA: Punkt Q powinien być najniższym punktem tuż przed momentem, w którym czerwona linia (EKG) zaczyna rosnąć w stronę szczytu R. Jeśli występuje obszar „pre-Q” o łagodnym nachyleniu, punkt Q należy zaznaczyć w miejscu, w którym nachylenie w stronę R zaczyna gwałtownie rosnąć.
    7. Wróć do zakładki Impedance Calibration Settings i zwiększ wartość K o 5, jeśli zaznaczenie punktu Q jest nieprawidłowe przy K=25. Ponownie przejrzyj segmenty. Kontynuuj zmiany wartości K, aż zaznaczenie punktu Q będzie optymalne.
      UWAGA: Wartość K musi być spójna dla każdego dziecka; nie wybieraj różnych wartości dla różnych segmentów i nie przesuwaj żadnych oznaczeń ręcznie.
    8. Zapisz wartość PEP dla każdego ocenionego segmentu.
      UWAGA: PEP jest dość stabilny u danej osoby i zazwyczaj waha się w granicach 4-6 ms podczas oceny każdego dziecka. Jednakże wartości PEP mogą się znacznie różnić między dziećmi.
    9. Kliknij przycisk „Write”, aby wyeksportować dane z oceny do pliku Excel. Powtórz ten proces dla każdej sekcji przeznaczonej do oceny.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Wyniki

Do badania SEED zakwalifikowano  162 par matka-dziecko (37% Afroamerykanek; 30% Latynosek; 16% białych; 17% innych lub wielorasowych). Podczas wizyty w 18. miesiącu przeprowadzono osobistą ocenę u 140 dzieci (87% zakwalifikowanej próby); 6 uczestników wyprowadziło się, a pozostali byli nieosiągalni lub niedostępni w terminie tej wizyty. Wskaźnik odmowy udziału w komponencie zbierania danych ANS podczas wizyty wyniósł 3/140 (2%) wśród matek dostępnych w tym terminie. Trzy wizyty odbyły się po 21 miesiącach (więc...

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Dyskusja

Badanie to wykazało, że w próbie 18-miesięcznych dzieci standaryzowane zadania odpoczynkowe i prowokacyjne, mające na celu wywołanie reakcji z różnych domen (zaskoczenie, sensoryczne, społeczne, odpoczynek) doprowadziły do szeregu reakcji ANS. Średnie odpowiedzi ANS stwierdzone w tych warunkach spoczynku i prowokacji były podobne do wartości ANS zgłaszanych przez inne osoby, które mierzyły reakcję ANS u małych dzieci wykonujących podobne zadania 8,11,27,29. Średnie poziomy pomiarów ANS znalezione w naszej prób...

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Oświadczenia

Autorzy oświadczają, że nie mają konkurencyjnych interesów finansowych.

Podziękowania

To badanie było wspierane przez NIH 1 U01 HL097973, NHLBI 5 R01 HL116511-02, UCSF-CTSI Grant Number UL1 TR000004, Robert Wood Johnson Health and Society Scholars Program oraz Lisa and John Pritzker Family Foundation. Autorzy pragną również podziękować Michelle Stephens za jej pomoc w ocenie danych ANS, a także Vanessie Tearnan, Marialmie Gonzales-Cruz, Yurivii Cervantes, Amy Engler, Stephanie Grover i Karen Jones-Mason za ich pomoc w zbieraniu danych ANS oraz Michaelowi Coccia za pomoc w tworzeniu danych. Jesteśmy również wdzięczni rodzinom za ich hojny udział w tym badaniu oraz wolontariuszom, którzy pomogli nam przetestować i udoskonalić ten protokół, w tym dwójce dzieci pierwszego autora. Chcemy podziękować naszym mentorom, którzy nauczyli nas mierzenia ANS i dlaczego pomiar responsywności ANS ma znaczenie u małych dzieci: W. Thomasa Boyce'a, Gary'ego Bernstona i Dave'a Lozano.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
Sprzęt
Laptop i przewód zasilający Oprogramowanie Dell60-0107-3.0Mindware BioLab wymaga komputera z 2 portami USB
Oprogramowanie do zbierania danych ANSMindwareskontaktuj się z firmąBioLab program akwizycyjny ANS
akwizycyjna i przewodyMindware50-3711-08Obudowa BioNex 8-slotowa
Przewody zatrzaskoweMindware93-0498-002 białe, 2 czerwone, 2 brązowe, 1 czarne
Elektrody punktoweKendall31112496model 130; 7 dla każdej oceny + dodatki - zawsze do zamknięcia w torbie strunowej )
Oprogramowanie do oceniania/edycji ANSMindwareskontaktuj się z firmąHRV Analysis, wersja 3.1.0F i IMP Analysis, wersja 3.1.0I
Sprzęt
tabletAppleiPad; do odtwarzania audio i wideo klipsy
przenośny głośnikPolariodPBT510
Jack in the BoxSchyllingSMJBSkarpeta Motyw małpy
Sok z cytrynyReaLemon980770,14 uncji Opakowania stabilne na półce
Pipety pastwiskoweGrainger6FAV9Rozmiar 1 ml, jednorazowe
kubki na porcjeDart Solo Con250PC2.5 uncji, jednorazowe, plastikowe
pliki audio z płaczem dzieckaAlkon lab30-sekundowy klip nagrany na oddziale intensywnej terapii noworodków
plik audio kołysankiRockabye Baby Music60 sekund utworu "Across the Universe" w utworze "Rockabye Baby Lullaby Renditions of the Beatles"
Plik audio na płycie CD z finałową kołysankąRockabye Baby Music60 sekund utworu "Here Comes the Sun" w utworze "Rockabye Baby Lullaby Renditions of the Beatles"
Plik wideo na płycie CD z neutralnym filmem2 min filmu Baby Einstein
Wysuwana taśma mierniczaRollfixTM04
Różne materiały
Ochronnikdo podłączenia wszystkich Elektronika
2-bolcowy adapter do zabezpieczenia przeciwprzepięciowego
Kamera wideoSonyHandycam HDR-CX440
Koder wideo, zasilające i wejścioweMindware50-8614-01opcjonalnie; do synchronizacji plików wideo i danych ANS
Chusteczki i gazadla niemowląt do czyszczenia i suszenia tłustej skóry
Zabawkiodwracające uwagę dzieci podczas oceny
Pomocezdjęcia dziecka z założonymi elektrodami, opis protokołu do pokazania uczestnikom
Skrypt protokołu dla asystentów
do ładowania tabletu i głośnika
Lalka i naklejkido demonstracji
ANS jednostka do protokołu przeciwprzepięciowy wizualne badawczych w razie potrzeby

Bibliografia

  1. Berntson, G., Quigley, K., Lozano, D. Chapter 8, Cardiovascular Psychophysiology. Handbook of Psychophysiology. Cacioppo, J. T., Tassinary, L. G., Bernston, G. G. , Cambridge University Press. (2007).
  2. Boyce, W. T., et al. Early father involvement moderates biobehavioral susceptibility to mental health problems in middle childhood. J. Am. Acad. Child Adolesc. Psychiatry. 45, 1510-1520 (2006).
  3. Loman, M., Gunnar, M. Early experience and the development of stress reactivity and regulation in children. Neurosci. Behav. Physiol. 34, 867-876 (2010).
  4. Calkins, S. D., Graziano, P. A., Keane, S. P. Cardiac vagal regulation differentiates among children at risk for behavioral problems. Biol. Psychol. 74, 144-153 (2007).
  5. Kroenke, C. H., et al. Autonomic and Adrenocortical Reactivity and Buccal Cell Telomere Length in Kindergarten Children. Psychosom. Med. 73, 533-540 (2011).
  6. Obradović, J., Bush, N. R., Stamperdahl, J., Adler, N. E., Boyce, W. T. Biological sensitivity to context: The interactive effects of stress reactivity and family adversity on socioemotional behavior and school readiness. Child Dev. 81, 270-289 (2010).
  7. Alkon, A., et al. Latino children's body mass index at 2-3.5 years predicts sympathetic nervous system activity at 5 years. Child Obes. 10, 214-224 (2014).
  8. Alkon, A., et al. The ontogeny of autonomic measures in 6- and 12-month-old infants. Dev. Psychobiol. 48, 197-208 (2006).
  9. Conradt, E., Measelle, J., Ablow, J. C. Poverty, Problem Behavior, and Promise: Differential Susceptibility Among Infants Reared in Poverty. Psychol. Sci. 24, 235-242 (2013).
  10. Alkon, A., Boyce, W. T., Davis, N. V., Eskenazi, B. Developmental Changes in Autonomic Nervous System Resting and Reactivity Measures in Latino Children from 6 to 60 Months of Age. J. Dev. Behav. 32, 668-677 (2011).
  11. Alkon, A., et al. Developmental and contextual influences on autonomic reactivity in young children. Dev. Psychobiol. 42, 64-78 (2003).
  12. Boyce, W. T. Developmental Psychopathology: Developmental Neuroscience. Ciccheti, D., Cohen, D. J. II, Wiley & Sons. 797-817 (2006).
  13. Beauchaine, T. P., Gatzke-Kopp, L., Mead, H. K. Polyvagal Theory and developmental psychopathology: emotion dysregulation and conduct problems from preschool to adolescence. Biol. Psychol. 74, 174-184 (2007).
  14. Beauchaine, T. Vagal tone, development, and Gray's motivational theory: toward an integrated model of autonomic nervous system functioning in psychopathology. Dev. Psychopathol. 13, 183-214 (2001).
  15. Conradt, E., Measelle, J., Poverty Ablow, J. C. Problem Behavior, and Promise: Differential Suceptibility Among Infants Reared in Poverty. Psychol. Sci. 24, 235-242 (2013).
  16. Porges, S. W. The polyvagal perspective. Biol. Psychol. 74, 116-143 (2007).
  17. Boyce, W. T., et al. Autonomic reactivity and psychopathology in middle childhood. Br. J. Psychiatry. 179, 144-150 (2001).
  18. Crowell, S., et al. Autonomic correlates of attention-deficit/hyperactivity disorder and oppositional defiant disorder in preschool children. J. Abnorm. Psychol. 115, 174-178 (2006).
  19. Raine, A. Autonomic nervous system factors underlying disinhibited, antisocial, and violent behavior. Biosocial perspectives and treatment implications. Ann. N.Y. Acad. Sci. 794, 46-59 (1996).
  20. Boyce, W. T., Alkon, A., Tschann, J. M., Chesney, M. A., Alpert, B. S. Dimensions of psychobiologic reactivity: Cardiovascular responses to laboratory stressors in preschool children. Ann. Behav. Med. 17, 315-323 (1995).
  21. Bush, N. R., Boyce, W. T. The Contributions of Early Experience to Biological Development and Sensitivity to Context. Handbook of Developmental Psychopathology. Lewis, M., Rudolph, K. D. , Springer. 287-309 (2014).
  22. Matthews, K. A., et al. Handbook of Stress, Reactivity, and Cardiovascular Disease. , John Wiley and Sons. (1986).
  23. Alkon, A., Wolff, B., Boyce, W. The Oxford Handbook of Poverty and Child Development. Maholmes, V., King, R. , Oxford University Press. New York. (2012).
  24. Berntson, G. G., Cacioppo, J. T., Quigley, K. S. Autonomic cardiac control. I. Estimation and validation from pharmacological blockades. Psychophysiology. 31, 572-585 (1994).
  25. Sherwood, A., Allen, M. T., Obrist, P. A., Langer, A. W. Evaluation of beta-adrenergic influences on cardiovascular and metabolic adjustments to physical and psychological stress. Psychophysiology. 23, 89-104 (1986).
  26. Calkins, S. D., Keane, S. P. Cardiac vagal regulation across the preschool period: Stability, continuity, and implications for childhood adjustment. Dev. Psychobiol. 45, 101-112 (2004).
  27. Quigley, K., Stifter, C. A comparative validation of sympathetic reactivity in children and adults. Psychophysiology. 43, 116-143 (2006).
  28. Sherwood, A., Royal, S., Hutcheson, J., Turner, J. Comparison of impedance cardiographic measurements using band and spot electrodes. Psychophysiology. 29, 734-741 (1992).
  29. Allen, M. T., Matthews, K. A. Hemodynamic responses to laboratory stressors in children and adolescents: the influences of age, race, and gender. Psychophysiology. 34, 329-339 (1997).
  30. van Dijk, A. E., et al. Measuring cardiac autonomic nervous system (ANS) activity in children. J. Vis. Exp. , (2013).
  31. Treadwell, M. J., Alkon, A., Styles, L., Boyce, W. T. Autonomic nervous system reactivity: children with and without sickle cell disease. Nurs. Res. 60, 197-207 (2011).
  32. Stifter, C. A., Dollar, J. M., Cipriano, E. A. Temperament and emotion regulation: the role of autonomic nervous system reactivity. Dev. Psychobiol. 53, 266-279 (2011).
  33. Bar-Haim, Y., Marshall, P. J., Fox, N. A. Developmental changes in heart period and high-frequency heart period variability from 4 months to 4 years of age. Dev. Psychobiol. 37, 44-56 (2000).
  34. Beauchaine, T. P. Physiological Markers of Emotional and Behavioral Dysregulation in Externalizing Psychopathology. Monogr. Soc. Res. 77, 79-86 (2012).
  35. Kamarck, T. W., Lovallo, W. R. Cardiovascular reactivity to psychological challege: Conceptual and measurement considerations. Psychosom. Med. 65, 9-21 (2003).
  36. Fox, N. A., Schmidt, L. A., Henderson, H. A., Marshall, P. J. Chapter 20, Developmental Psychophysiology: Conceptual and Methodological Issues. Handbook of Psychophysiology. Cacioppo, J. T., Tassinary, L. G., Bernston, G. G. , Cambridge University Press. 453-481 (2007).
  37. Gilissen, R., Koolstra, C., van Ijzendoorn, M., Bakermans-Kranenburg, M., van der Veer, R. Physiological reactions of preschoolers to fear-inducing film clips: Effects of temperamental fearfulness and quality of the parent-child relationship. Dev. Psychobiol. 49, 187-195 (2007).
  38. Bush, N. R., Alkon, A., Stamperdahl, J., Obradović, J., Boyce, W. T. Differentiating Challenge Reactivity from Psychomotor Activity in Studies of Children’s Psychophysiology: Considerations for Theory and Measurement. J. Exp. Child Psychol. 110, 62-79 (2011).

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Przedruki i uprawnienia

Tagi

Aktywno przywsp czulgna i wsp czulnapomiar autonomicznego uk adu nerwowego u ma ych dzieciwarunki spoczynku i wyzwanianieinwazyjne monitorowanie fizjologicznezmienno rytmu sercay rsinusalna arytmia oddechowaczas przedwyrzutowyocena wyzwa rozwojowychreaktywno autonomicznego uk adu nerwowego u ma ych dzieci