Artykuł metodologiczny

Protokół push-pull w celu ograniczenia kolonizacji budek lęgowych ptaków przez pszczoły miodne

DOI:

10.3791/53950

⸱

4 września 2016

 , 
1Department of Entomology and Nematology, University of Florida

W tym artykule

Podsumowanie

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Zapobieganie kolonizacji budek lęgowych ptaków przez inwazyjne afrykańskie pszczoły miodne jest ważne dla działań ochronnych ptaków o ograniczonych miejscach gniazdowania. Zapewniamy zintegrowane podejście do ochrony przed szkodnikami, aby "odepchnąć" pszczoły od budek lęgowych za pomocą odstraszającego środka owadobójczego, permetryny, i "zwabić" je w kierunku pułapek roju z przynętą feromonową.

Streszczenie

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Wprowadzenie inwazyjnej afrykańskiej pszczoły miodnej (AHB) do neotropików jest poważnym problemem dla wielu ptaków gniazdujących w dziuplach, szczególnie papug. Pszczoły te wybierają dziuple, które są odpowiednimi miejscami gniazdowymi dla ptaków, co powoduje konkurencję. Trudność w usuwaniu pszczół i ich zachowań obronnych sprawia, że konieczny jest protokół zapobiegawczy. W tym miejscu opisujemy zintegrowany protokół ochrony przed szkodnikami typu push-pull, aby odstraszyć pszczoły od zamieszkiwania budek dla ptaków poprzez zastosowanie bezpiecznego dla ptaków środka owadobójczego, permetryny, w celu odstraszenia pszczół od budek lęgowych, jednocześnie przyciągając je do pułapek roju z przynętą feromonową. Pokazany tutaj jest przykładowy eksperyment z wykorzystaniem budek lęgowych płomykówki. Protokół ten skutecznie ograniczył kolonizację budek lęgowych płomykówki przez zafrykanizowane pszczoły miodne. Protokół ten jest elastyczny, co pozwala na dostosowanie do szerokiego zakresu gatunków ptaków i siedlisk. Protokół ten może przynieść korzyści działaniom na rzecz ochrony przyrody w miejscach, w których zlokalizowane są AHB.

Wprowadzenie

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Od czasu przypadkowego wprowadzenia ponad dwóch tuzinów afrykańskich królowych pszczół miodnych do Sao Paulo w Brazyliiw 1957 roku, owady te rozprzestrzeniły się po Ameryce Południowej i Środkowej aż do południowych Stanów Zjednoczonych, przywłaszczając sobie i zastępując mniej przystosowane europejskie pszczoły miodne (EHB) w populacji dzikich zwierząt. Te hybrydowe zafrykanizowane pszczoły miodne (AHB) mają cechy, które stawiają je w konflikcie zarówno z ludźmi, jak i dziką przyrodą. Wykazują wysoce defensywne zachowanie, rozmnażają się bardzo szybko i są mniej selektywne, jeśli chodzi o to, gdzie tworzą dom1,2.

Chociaż budki lęgowe od dawna są używane przez ornitologów do wspomagania hodowli ptaków gniazdujących w dziuplach3,4, okazało się, że ich użycie jest szczególnie skuteczne w zwiększaniu hodowli zagrożonych i zagrożonych papug w tropikach5,6. Niestety, zafrykanizowane pszczoły miodne często wybierają te same budki lęgowe – czasami nawet zabijając ich mieszkańców. Ponadto te AHB stanowią poważne zagrożenie dla biologów, gdy prowadzą badania gniazd. Na obszarach Ameryki Południowej, gdzie założono AHB, w kilku projektach ochrony papug ich sztuczne budki lęgowe zostały zajęte przez AHB7-10. Konkurencja o budki lęgowe z pszczołami miodnymi jest powszechna i nie ogranicza się do papug. Wiele innych gatunków ptaków, zarówno w Nym, jak i Starym Świecie, jest dotkniętychchorobą w wieku 11-15 lat. Bez wysiłków mających na celu złagodzenie zagrożenia ze strony tych inwazyjnych AHB, ostatnie sukcesy w ochronie papug mogą zostać zaprzepaszczone.

Obecne praktyki zarządzania konkurencją ze strony pszczół obejmują stosowanie powtarzających się, wysokich dawek permetryny7, ręczne usuwanie rojów, zamykanie wejść do gniazd natychmiast po8 sezonie lęgowym, czy stosowanie chemikaliów na zewnątrz budek lęgowych15. Związany z tym nakład pracy i zagrożenie dla biologów sprawiają, że strategie te są dalekie od optymalnych. Opracowanie protokołu prewencyjnego jest uzasadnione.

Kolonie pszczół miodnych rozmnażają się w procesie znanym jako rój, kiedy stara królowa opuszcza kolonię z maksymalnie trzema czwartymi pszczół robotnic16. Wysoki wskaźnik reprodukcji afrykańskich pszczół miodnych pozwala im roić się częściej (cztery do ośmiu razy w roku) niż EHB (które roją się raz lub dwa razy w roku)17. Co więcej, AHB może roić się przez cały rok, a nie w określonym sezonie, jak EHB. Dzięki temu AHB może szybko zająć większość odpowiednich miejsc lęgowych na danym obszarze.

Zachowanie pszczół miodnych podczas polowania może być wykorzystane do wpłynięcia na ich wybór miejsca na gniazdo. Niewielka część pszczół w roju odlatuje, aby zlokalizować i sprawdzić nowe potencjalne miejsca gniazdowania. Jednocześnie poszukuje się kilku potencjalnych miejsc do gniazdowania. Te pszczoły zwiadowcze wracają do roju i wykonują tańce, aby wskazać lokalizację miejsca. Im silniejszy jest taniec w danym miejscu, tym szybciej gromadzi się w nim liczba pszczół zwiadowców18. Dlatego pszczoły tańczą silniej, aby uzyskać lepszą jakość witryn, w porównaniu z witrynami, które są przeciętne lub słabe. Po osiągnięciu progu kworum rój startuje i leci do nowo wybranego miejsca macierzystego18.

Subletalne dawki kontaktowe insektycydu permetryny utrudniają pszczołom zwiadowczym orientację i zmniejszają poziom aktywności19,20. Stosowanie permetryny w budkach lęgowych na początku powinno być odstraszające dla pszczół zwiadowczych21, a z czasem, gdy substancja chemiczna ulega degradacji, pszczoły zwiadowcze wystawione na działanie permetryny podczas oceny budki powinny być mniej zdolne do wykonywania silnych tańców rekrutacyjnych, zmniejszając liczbę pszczół zwiadowczych rekrutowanych na miejsce. Bardziej odpowiednie (idealna objętość jamy, mały otwór wejściowy znajdujący się na dole i atraktant feromonowy) alternatywne miejsce na gniazdo jest zapewnione w postaci skrzynki pułapki dla pszczół. To doskonałe miejsce pułapki powinno osiągnąć kworum szybciej niż budka dla ptaków potraktowana środkiem owadobójczym, co skłoni rój do wyboru skrzynki pułapki zamiast budki dla ptaków.

Jako przykład, opisujemy eksperyment mający na celu ograniczenie kolonizacji sztucznych budek lęgowych płomykówki przez AHB na polach trzciny cukrowej na południu Florydy. Naszym celem było przetestowanie skuteczności stosowania metody push-pull, która "odpycha" pszczoły od budek lęgowych sów potraktowanych środkiem owadobójczym i "ciągnie" je w kierunku pułapek roju z przynętą feromonową.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Protokół

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

1. Budowa skrzynek pułapek roju

UWAGA: Istnieją dwa alternatywne protokoły budowy pułapek roju zawarte w krokach 1.1 i 1.2. Istnieje kilka dodatkowych sposobów konstruowania skrzynek-pułapek. Poniższe dwie metody są tutaj przedstawione, ponieważ przetestowaliśmy je w eksperymentach i zakończyły się sukcesem. W przypadku obu protokołów należy użyć sklejki o grubości od 1,3 cm do 2 cm poddanej obróbce ciśnieniowej.

  1. Budowa protokołu pułapki roju Opcja 1: Budowa skrzynki pułapki
    1. Wytnij sześć kawałków sklejki o wymiarach 30 cm x 30 cm.
    2. Przymocuj cztery boki pudełka razem za pomocą gwoździ lub.
    3. Przymocuj dolną część za pomocą gwoździ lub.
    4. Przymocuj górną część za pomocą lub zszywek.
      1. Nie używaj gwoździ do zabezpieczania góry. Górna część musi być zdejmowana, aby wyjąć pszczoły i wyczyścić pudełko.
    5. Wywierć otwór o średnicy 2,5 cm w środku jednej z powierzchni skrzynki syfonu w odległości 2,5 cm od dolnej krawędzi.
    6. Nałóż podkład, uszczelniacz lub farbę na zewnętrzną stronę syfonu, aby chronić drewno przed warunkami atmosferycznymi.
      1. Nie nakładaj żadnej farby ani szczeliwa na wnętrze syfonu. Może to być odstraszające lub toksyczne dla pszczół.
  2. Budowa skrzynki pułapki roju Opcja protokołu 2: Użycie standardowego korpusu głębokiego ula
    1. Zdobądź standardowy korpus ula o głębokości 10 ramek w lokalnym sklepie z artykułami dla pszczół.
    2. Wytnij górę i dół ze sklejki, każdy o długości 50,8 cm i szerokości 41,3 cm.
    3. Przymocuj dolną część za pomocą gwoździ lub.
    4. Przymocuj górną część za pomocą lub zszywek.
      1. Nie używaj gwoździ do zabezpieczania góry. Górna część musi być zdejmowana, aby wyjąć pszczoły i wyczyścić pudełko.
    5. Wywierć otwór o średnicy 2.5 cm pośrodku po jednej stronie skrzynki syfonu, 2.5 cm od dolnej krawędzi.
    6. Nałóż podkład, uszczelniacz lub farbę na zewnętrzną stronę syfonu, aby chronić drewno przed warunkami atmosferycznymi.
      1. Nie nakładaj żadnej farby ani szczeliwa na wnętrze syfonu. Może to być odstraszające lub toksyczne dla pszczół.

2. Przygotowanie przynęty feromonowej

  1. Przygotuj mieszankę cytralu i geraniolu w proporcji 2:1.
  2. Umieść 1 ml tej mieszaniny w zatrzaskowej probówce do mikroodwirowania z polipropylenu o pojemności 1,5 ml.
  3. Zawiń przynęty w folię aluminiową, aby chronić je przed światłem.
    Uwaga: Nasadka probówki wirówkowej jest nakłuwana szpilką po umieszczeniu jej w zamontowanej pułapce roju.
    Uwaga: Przynęty można przechowywać w ciemnym miejscu w temperaturze pokojowej lub do dłuższego przechowywania w zamrażarce w temperaturze -10 °C.

3. Instalacja skrzynek pułapek roju

UWAGA: Istnieją dwa alternatywne protokoły instalacji skrzynek pułapek roju przedstawione w krokach 3.1 i 3.2.

  1. Instalacja Swarm Trap Box Protocol Opcja 1: Instalacja na słupie
    1. Umieść drewniany słupek ogrodzeniowy o wymiarach 10 cm na 10 cm w ziemi w odległości od 10 m do 15 m od miejsca, w którym znajduje się budka lęgowa dla ptaków.
    2. Zbuduj wiszącą deskę z drewna impregnowanego ciśnieniowo o grubości 1,3 cm o wymiarach 20 cm na 20 cm.
    3. Wyrównaj wiszącą tablicę na środku jednej strony skrzynki pułapki, tak aby 10 cm nad górną częścią pudełka. Przymocuj deskę do pudełka za pomocą co najmniej dwóch gwoździ lub po obu stronach deski.
    4. Umieść skrzynkę pułapki na słupku na wysokości (od 1,5 m do 3 m), która jest bezpieczna i łatwa do usunięcia, gdy skrzynka pułapki zostanie skolonizowana przez pszczoły. Przykręć pudełko do słupka, mocując wiszącą tablicę. Umieść około 5 cm poniżej górnej części wiszącej deski i przykręć na miejscu.
      1. Nie używaj gwoździ, ponieważ są one trudne do usunięcia.
  2. Instalacja protokołu Swarm Trap Box Opcja 2: Instalacja na drzewie
    1. Wywierć otwór o średnicy 5 mm w górnym tylnym rogu z każdej strony pudełka.
    2. Przeciągnij drut przez otwory.
      Uwaga: W przypadku korzystania z tego protokołu łatwiej będzie przepuścić drut przez otwory przed zabezpieczeniem górnej części pudełka.
    3. Wybierz drzewo w odległości od około 10 m do 15 m od miejsca, w którym znajduje się budka lęgowa dla ptaków.
      1. Nie umieszczaj budek pułapek na tych samych drzewach, co budki dla ptaków, ponieważ gdy ktoś sprawdzi stan budki dla ptaków, skrzynki pułapkowe skolonizowane przez pszczoły mogą zostać naruszone, powodując, że pszczoły staną się defensywne.
    4. Przymocuj drut wokół drzewa na wysokości od 1,5 m do 3 m nad ziemią.
      Uwaga: Aby chronić drzewo, wokół drutu można użyć wygaszacza kambium.
      1. Upewnij się, że pudełko jest wypoziomowane i bezpieczne, aby się nie przewróciło. Pudełko można oprzeć na gałęzi drzewa, aby zwiększyć stabilność, jeśli jest to możliwe.

4. Dodanie przynęty feromonowej

  1. Weź wcześniej przygotowaną przynętę z sekcji 2 i przebij górną część rurki za pomocą pinezki.
  2. Po zamontowaniu umieść przynętę w pudełku pułapki na dole w pobliżu wejścia, aby upewnić się, że nie wypadnie podczas montażu pudełka.

5. Leczenie budki lęgowej dla ptaków za pomocą permetryny

  1. Należy wybrać produkt z permetryną, który jest przeznaczony do stosowania wyłącznie u drobiu lub ptaków trzymanych w klatkach.
  2. Postępuj zgodnie z instrukcjami na etykiecie dotyczącymi mieszania i aplikacji
    UWAGA: postępuj zgodnie ze wszystkimi wytycznymi dotyczącymi ochrony osobistej zawartymi na etykiecie.
  3. Spryskaj wnętrze budki lęgowej całkowicie, aż do momentu, gdy płyn spłynie z boków budki za pomocą opryskiwacza ręcznego o pojemności 3,7 l.
    Uwaga: Budki lęgowe można leczyć przed lub po instalacji.

6. Usunięcie skrzynki-pułapki zajętej przez pszczoły miodne

  1. Zatkaj otwór wejściowy małym ręcznikiem.
    UWAGA: nosić odpowiednią odzież ochronną, aby zapobiec użądleniu przez pszczoły miodne.
    1. Jeśli rój ma zostać zabity, zrób to, gdy tylko zostanie wykryty. Jeśli ma być wykorzystany rój, pozwól pszczołom w pełni skolonizować skrzynki pułapkowe przed próbą ich usunięcia (zwykle około 2 tygodni). Jeśli to możliwe, usuń zajęte skrzynki pułapki na noc (gdy wszystkie pszczoły są w środku). Wejście do syfonu można zatkać w nocy, a następnie wyjąć skrzynkę następnego ranka w świetle dziennym.
      Uwaga: Używaj czerwonego światła z filtrem podczas pracy w pobliżu pszczół w nocy.
  2. Odkręć pudełko od słupka lub przetnij drut przytrzymujący pudełko do drzewa.
  3. Przenieś pudełko w nowe miejsce (co najmniej 4 km dalej) i wyciągnij ręcznik z otworu wejściowego.

7. Zniszczenie kolonii pszczół w skrzynce-pułapce

Uwaga: Na obszarach, na których hodowla afrykańskich pszczół miodnych jest nielegalna, zniszczenie kolonii może być uzasadnione. Jeśli tak, to w tym miejscu przedstawione są dwa protokoły.

  1. Solaryzacja kolonii
    1. Zatkaj otwór wejściowy małym ręcznikiem.
      UWAGA: nosić odpowiednią odzież ochronną, aby zapobiec użądleniu przez pszczoły miodne.
    2. Odkręć pudełko od słupka lub przetnij drut przytrzymujący pudełko do drzewa.
    3. Zamknij i zamknij całkowicie syfon w plastikowej torbie i pozostaw w pełnym słońcu na kilka dni
      UWAGA: nosić odpowiednią odzież ochronną, aby zapobiec użądleniu przez pszczoły miodne.
    4. Wyczyść pudełko, usuwając martwe pszczoły i grzebień.
  2. Stosowanie sprayu owadobójczego
    1. Użyj sprayu owadobójczego oznaczonego jako do zabijania pszczół, aby spryskać wnętrze skrzynki pułapki.
      UWAGA: postępuj zgodnie z instrukcjami na etykiecie insektycydu i używaj odpowiedniego sprzętu ochrony osobistej, aby zapobiec użądleniu przez pszczoły miodne.
    2. Zatkaj wejście i pozostaw pudełko na 24 godziny.
    3. Wyczyść pudełko, usuwając martwe pszczoły i grzebień.
      Uwaga: Aby ponownie użyć syfonu, wyczyść jego wnętrze roztworem wody z mydłem, aby usunąć pozostałości środka owadobójczego. Dobrze spłucz i pozostaw do całkowitego wyschnięcia przed ponowną instalacją.
  3. Zastosowanie pianki owadobójczej
    1. Wypełnij całą wnękę zajmowanego syfonu pianką na bazie detergentu. (UWAGA: postępuj zgodnie z instrukcjami na etykiecie insektycydu i używaj odpowiedniego sprzętu ochrony osobistej oraz noś odpowiednią odzież ochronną, aby zapobiec użądleniu przez pszczoły miodne).
      Uwaga: Pianę można nakładać za pomocą komercyjnego generatora piany do zwalczania szkodników lub gaśnicy na sprężone powietrze.
      Uwaga: Aby użyć gaśnicy: Wlej 3.8 l wody do gaśnicy o pojemności 9.5 l, dodaj 190 ml środka spieniającego (lub detergentu do mycia naczyń), uszczelnij gaśnicę i zwiększ ciśnienie do 100-125 funtów/cal kwadratowy (psi). Tuż przed użyciem energicznie zamieszaj, a następnie nałóż pianę, aż syfon się przepełni.
      Uwaga: Piana zabija pszczoły w ciągu 60 sekund, wnikając do przetchlinków i blokując tchawicę.
    2. Zatkaj wejście i pozostaw pudełko na 24 godziny.
    3. Wyczyść pudełko, usuwając martwe pszczoły i grzebień.
      Uwaga: Aby ponownie użyć syfonu, wyczyść jego wnętrze roztworem wody z mydłem, aby usunąć pozostałości środka owadobójczego. Dobrze spłucz i pozostaw do całkowitego wyschnięcia przed ponowną instalacją.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Wyniki

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Poprzednie małe pilotażowe badanie push-pull przeprowadzone w Brazylii wykazało, że pułapki roju są skuteczne i zmniejszyły okupację przez pszczoły budek lęgowych papug22. Aby ustalić, czy metoda push-pull może być skuteczna na większą skalę w celu zmniejszenia kolonizacji budek lęgowych ptaków przez AHB, przeprowadziliśmy badanie terenowe na polach trzciny cukrowej w południowej Florydzie w USA. Zainstalowano sześćdziesiąt budek lęgowych płomykówki, a każda z nich została spar...

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Dyskusja

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Jako bardzo udany owad inwazyjny17, AHB stanowi głównego konkurenta dla ptaków gniazdujących w dziuplach na całym ich zasięgu. Przedstawiony tutaj protokół ma na celu zmniejszenie wskaźników kolonizacji budek lęgowych ptaków przez AHB. Główne elementy tego projektu to: 1) zastosowanie środka odstraszającego i bezpiecznego dla ptaków środka owadobójczego, permetryny; 2) zapewnienie alternatywnego miejsca lęgowego dla pszczół; oraz 3) stosowanie feromonu wabiącego wewnątrz skrzynek pułapkowych. Pszczoły zwykle p...

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Oświadczenia

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Autorzy nie mają nic do ujawnienia.

Podziękowania

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Nasze badanie zostało przeprowadzone za zgodą United States Sugar Corporation. Dziękujemy R. Raidowi, S. Raidowi i T. Langowi za ich asystenta. Dziękujemy również M. Stanbackowi i trzem anonimowym recenzentom za sugestie, które wzbogaciły ten manuskrypt.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
Cytral (ACROS Organics)Fisher ScientificAC11044-1000
Geraniol (ACROS Organics)Fisher ScientificAC41090-1000
PermaCap CSPermetrynakontrolowanym uwalnianiu
o

Bibliografia

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Winston, M. L. The biology and management of Africanized honey bees. Annu Rev Entomol. 37, 173-193 (1992).
  2. Schmidt, J. O., Hurley, R. Selection of nest cavities by Africanized and European honey bees. Apidologie. 26, 467-475 (1995).
  3. Eadie, J., Sherman, P., Semel, B. Conspecific Brood Parasitism, Population Dynamics, and the Conservation of Cavity-Nesting Birds. In: Behavioral Ecology and Conservation Biology. Casro, T. , Oxford University Press. 306-340 (1998).
  4. Newton, I. The role of nest sites in limiting the numbers of hole-nesting birds: a review. Biol Conserv. 70, 265-276 (1994).
  5. White, T. H. Jr, Abreu-González, W., Toledo-González, M., Torres-Báez, P. From the field: artificial nest cavities for Amazona parrots. Wildl Soc Bull. 33, 756-760 (2005).
  6. Vaughan, C., Nemeth, N., Marineros, L. Ecology and management of natural and artificial Scarlet Macaw (Ara macao) nest cavities in Costa Rica. Ornitol Neotrap. 14, 381-396 (2003).
  7. WCS Guatemala Program. Integrated interventions to conserve Scarlet Macaws as flagships for the Maya Biosphere Reserve, Guatemala. 2009-2010 Report to BBC Wildlife Fund. , (2011).
  8. Fish and Wildlife Service. Puerto Rican Parrot (Amazona vittata) 5-Year Review: Summary and Evaluation. , (2008).
  9. Berkunsky, I., DiazLuque, J. A., Kacoliris, F. P., Daniele, G., Milpacher, S., Gilardi, J. D., Martin, S. 10 Years: Blue-throated Macaw Conservation. PsittaScene. 24, 3-5 (2012).
  10. Synder, N., McGowen, P., Gilardi, J. D., Grajal, A. Parrots: Status Survey and Conservation Action Plan 2000-2004. , Island Press. Washington D.C., USA. (2000).
  11. Delnicki, D. E., Bolen, E. G. Use of Black-Bellied Whistling duck nest sites by other species. SW Naturalist. 22, 275-277 (1977).
  12. Twedt, D. J., Henne-Kerr, J. L. Artificial Cavities Enhance Breeding Bird Densities in Managed Cottonwood Forests. Wildl Soc Bull. 27, 680-687 (2001).
  13. Carlile, N., Priddel, D., Zino, F., Natividad, C., Wingate, D. B. A review of four successful recovery programmes for threatened sub-tropical petrels. Mar Ornithol. 31, 185-192 (2003).
  14. Oldroyd, B. P., Lawler, S. H., Crozier, R. H. Do feral honey bees (Apis mellifera) and regent parrots (Polytelis anthopeplus) compete for nest sites. Aust J Ecol. 19, 444-450 (1994).
  15. Downs, C. Artificial nest boxes and wild Cape Parrots Poicephalus robustus: persistence pays off. Ostrich. 76, 222-224 (2005).
  16. Seeley, T. D. Measurement of Nest Cavity Volume by the Honey Bee (Apis mellifera). Behav Ecol Sociobiol. 2, 201-227 (1977).
  17. Schneider, S. S., DeGrandi-Hoffman, G., Smith, D. R. The African Honey Bee: Factors contributing to a successful biological invasion. Annu Rev Entomol. 49, 351-376 (2004).
  18. Seely, T. D., Visscher, P. K., Passino, K. M. Group decision making in honey bee swarms. Behav Ecol Sociobiol. 94, 220-229 (2006).
  19. Taylor, K. S., Waller, G. D., Crowder, L. A. Impairment of a classical conditioning response of the honey bee (Apis mellifera L.) by sublethal doses of synthetic pyrethroid insecticides. Apidologie. 18, 243-252 (1987).
  20. Ingram, E. M., Augustin, J., Ellis, M. D., Siegfried, B. D. Evaluating sub-lethal effects of orchard-applied pyrethroids using viedo-tracking software to quantify honey bee behaviors. Chemosphere. 135, 272-277 (2015).
  21. Rieth, J. P., Levin, M. D. The repellent effect of two pyrethroid insecticides on the honey bee. Physiol Entomol. 13, 213-218 (1988).
  22. Efstathion, C. A., Bardunias, P. M., Boyd, J. D., William, K. H. Jr A push-pull integrated pest management scheme for preventing use of parrot nest boxes by invasive Africanized honey bees. J Field Ornithol. 86, 65-72 (2015).
  23. Seeley, T. D., Morse, R. A. Nest site selection by the honey bee, Apis mellifera. Insect Sco. 25, 323-337 (1978).
  24. Schmidt, J. O. Attraction of reproductive honey bee swarms to artificial nests by nasonov pheromone. J Chem Ecol. 20, 1053-1056 (1994).

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Przedruki i uprawnienia

Poproś o pozwolenie na ponowne wykorzystanie tekstu lub ilustracji tego artykułu JoVE

Poproś o pozwolenie

Tagi

Honey Bee ColonizationBird Nest BoxesPush pull ProtocolPermethrin ApplicationPheromone BaitSwarm Trap BoxesAfricanized Honey BeesCavity Nesting BirdsInsect RepellentConservation Management

Powiązane artykuły