Subskrypcja JoVE jest wymagana do oglądania tego materiału. Zaloguj się lub rozpocznij bezpłatny okres próbny.

Artykuł metodologiczny

Ulepszona technika walcowania szwajcarskiego do przygotowania tkanki jelitowej do analiz immunohistochemicznych i immunofluorescencyjnych

73.2K wyświetleń

⸱

DOI:

10.3791/54161

⸱

13 lipca 2016

 ,  ,  , 

* These authors contributed equally

W tym artykule

Podsumowanie

Dokładna identyfikacja i lokalizacja komórek nabłonkowych wzdłuż błony śluzowej jelit są niezbędne do zdefiniowania różnych linii komórkowych. Prawidłowe obrazowanie tkanek jelitowych ma kluczowe znaczenie dla identyfikacji wzorców ekspresji białek z maksymalną rozdzielczością. Badanie to ma na celu nakreślenie optymalnych metod i warunków przetwarzania tkanek jelitowych myszy.

Streszczenie

Zrozumienie roli czynników regulujących homeostazę nabłonka jelitowego oraz reakcję na urazy i regenerację jest ważne. W obecnej literaturze opisano kilka różnych podejść metodologicznych do uzyskiwania obrazów tkanek jelitowych w celu walidacji danych. W tym artykule nakreślamy wspólny protokół związany z pozyskiwaniem i przetwarzaniem tkanek jelitowych myszy. Omówiono prawidłowe utrwalanie tkanek jelitowych oraz techniki szwajcarskie poprawiające morfologię nabłonka jelitowego. Przetwarzanie po resekcji i reorientacja osadzonych tkanek jelitowych mają kluczowe znaczenie dla uzyskania bloków zatopionych w parafinie, które po przekroju wykazują nienaruszone cechy strukturalne jelita. Technika zwijania szwajcarskiego pomaga w ocenie histologicznej badanych całych odcinków jelita grubego lub okrężnicy. Zdolność do różnicowania cech strukturalnych jelit może być kluczowa w pomiarach ilościowych zapalenia jelit i nowotworzenia na całej długości. Wreszcie, skrawki zatopione w parafinie są idealne do solidnego przetwarzania przy użyciu metod wykrywania zarówno immunohistochemicznego, jak i immunofluorescencyjnego. Niefluorescencyjne sekcje immunohistochemiczne zapewniają żywy obraz tkanki z wyszczególnieniem różnych cech strukturalnych komórki, ale nie zapewniają elastyczności w eksperymentach kolokalizacji wewnątrzkomórkowej. Wiele kanałów fluorescencyjnych może być odpowiednio wykorzystanych z detekcją immunofluorescencyjną do eksperymentów kolokalizacyjnych, co stanowi wsparcie dla badań mechanistycznych.

Wprowadzenie

Nabłonek jelitowy ssaków składa się z pojedynczej warstwy komórek kolumnowych. W jelicie cienkim komórki proliferacyjne są zamknięte w kryptach, podczas gdy zróżnicowane komórki zajmują obszar kosmków. Ponieważ jednak w jelicie grubym nie ma kosmków, komórki proliferacyjne są zlokalizowane na dnie krypt, a zróżnicowane komórki zajmują górną część krypt. Nabłonek jelitowy ulega szybkiemu uzupełnieniu (około 3 - 5 dni), co jest napędzane ciągłym podziałem komórek proliferacyjnych w kryptach. Komórki proliferacyjne krypt nie są jednorodną populacją i są dalej dzielone na komórki macierzyste i komórki amplifikujące tranzyt (TA)1. Komórki macierzyste znajdują si....

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Protokół

1. Myszy

  1. Wszystkie badania z udziałem myszy zostały zatwierdzone przez Stony Brook University Institutional Animal Care and Use Committee (IACUC). Myszy utrzymywano w cyklu jasno-ciemnym trwającym 12:12 godziny.
    1. Komercyjnie pozyskać myszy C57BL/6. Uzyskaj myszy C57BL / 6 z allelami Klf5 otoczonymi miejscami loxP (Klf5fl / fl). Myszy te zostały wcześniej opisanejako 21 i łaskawie dostarczone przez dr Ryozo Nagai.
  2. Zakup myszy C57BL / 6 z indukowalnym genem rekombinazy Cre pod regulacją promotora Lgr5 (myszy Lgr5-EGFP / CreERT2).
  3. A....

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Wyniki

Technika „Swiss roll” (rolowania) w połączeniu z barwieniem immunohistochemicznym umożliwia kompleksową analizę tkanek jelita cienkiego lub grubego. Przykład barwienia H&E jelita grubego myszy C57BL/6 (Rycina 1) ilustruje wykonalność i skuteczność tej techniki. Jak pokazano na Rycynie 1, obraz pozwala uchwycić wszystkie odcinki okrężnicy: proksymalny, środkowy i dystalny. Umożliwia to tym samym pełną ocenę histologiczną. Metoda Swiss roll oraz możliwo.......

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Dyskusja

Szwajcarska technika walcowania jest potężną metodą przygotowania tkanki jelitowej do oceny histologicznej i morfologicznej na dużą skalę. W przeciwieństwie do wcześniej opisanej techniki walcowania szwajcarskiego, która została pierwotnie opracowana do przygotowania zamrożonych skrawków18,19, przedstawiona tutaj procedura umożliwia szybkie przygotowanie i utrwalenie tkanki jelitowej do utrwalenia formaliny i zatopienia w parafinie (FFPE). W porównaniu z tkanką zamrożoną, tkanka FFPE ma znacznie dłuższy okres .......

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Oświadczenia

Autorzy oświadczają, że nie mają konkurencyjnych interesów finansowych.

Podziękowania

Chcielibyśmy podziękować Ainara Ruiz de Sabando za dostarczenie zdjęć H&E. Praca ta była wspierana przez granty z National Institutes of Health (DK052230, DK093680 i CA172113) przyznane dr Vincentowi W. Yangowi.

....

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
Zestawy preparacyjne ze stali nierdzewnejVWR25640-002
Komora demonstracyjnaBiocare MedicalDC2012
Strzykawka 10 mlVWR89215-218
Swingsette Kaseta do zatapiania/przetwarzania tkanek z pokrywkąSimportM515
Superfrost Plus Slides [rozmiar: 25 x 75 x 1 mm]VWR48311-703
Ręczny zestaw do barwienia szkiełekTissue-Tek/Sakura4451
Naczynie do barwienia GreenTissue-Tek/Sakura4456
Naczynie do barwienia BiałeTissue-Tek/Sakura4457
24-suwakowy uchwyt na suwaki z odłączanym uchwytemTissue-Tek/Sakura4465
PiekarnikThermo Scientific6243do pieczenia szkiełków w temperaturze 65 stopni
Mikroskop preparacyjnyZeissStemi 2000C
Mikroskop fluorescencyjnyNikonEclipse 90iJasne i fluescencyjne światło, z obiektywami: 10X, 20X
PAP Pen Super-Liquid Blocker MiniFisher ScientificDAI-PAP-S-M
Etanol 200 proofAAPR111000200
MetanolVWRBDH1135-4LP
Lodowaty kwas octowyAAPR281000ACS
KsylenFisher ScientificX5P-1GAL
Nadtlenek wodoru 25% roztwór w wodzieACROS202465000
10% formalina buferowanaFisher Scientific22-026-213
Surowica bydlęca frakcja V, szok termicznyRoche3116956001
Tween 20Sigma AldrichP7949
Cytrynian soduFisher ScientificS279
Igła do zgłębnikaVWR20068-624
Królicze przeciwciało anty Klf5Santa Cruz Biotechnologysc-22797Rozcieńczenie 1:150
Kurczak przeciwciało anty EGFPMiliporeAB16901Rozcieńczenie 1:500
Królicze przeciwciałoanty Ki67Biocare MedicalCRM325BRozcieńczenie 1:500
Zestaw do wykrywania polimerów AP królika Mach3Biocare MedicalM3R533L
Warp czerwony zestaw chromogenówBiocare MedicalWR806 H
Lgr5-EGFP/CreERT2 Laboratoria Jacksona008875 
Automatyczny procesorLeicaLeica TP1020

Bibliografia

  1. van der Flier, L. G., Clevers, H. Stem cells, self-renewal, and differentiation in the intestinal epithelium. Annu Rev Physiol. 71, 241-260 (2009).
  2. Bjerknes, M., Cheng, H. Methods for the isolation of intact epithelium from the mouse intestine. Anat Rec. ....

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Przedruki i uprawnienia

Przeglądaj więcej artykułów

Analiza immunohistochemicznaanaliza immunofluorescencyjnazmodyfikowany utrwalacz Bouinatkanka jelita myszybarwienie histologicznebloki zatopione w parafiniekaseta do przetwarzania tkanekmetody detekcji fluorescencyjnej