Method Article

Modyfikacja i zastosowanie dmuchawy do liści do pobierania próbek stawonogów w terenie

DOI:

10.3791/54655

⸱

August 10th, 2016

 ,  ,  ,  ,  ,  , 
1Centre for Crop Systems Analysis, Wageningen University, 2Institute of Entomology, Jiangxi Agricultural University, 3Department of Science, Open University, 4Farming Systems Ecology, Wageningen University

In This Article

Summary

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Ocena obfitości stawonogów w uprawach jest kluczowa dla badania dynamiki populacji i interakcji między gatunkami. Tutaj opisujemy modyfikację i zastosowanie dmuchawy do liści do odkurzania do pobierania próbek stawonogów w ryżu.

Abstract

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Pola ryżowe są domem dla dużej różnorodności stawonogów, ale badanie dynamiki ich populacji i interakcji jest wyzwaniem. W tym miejscu opisujemy modyfikację i zastosowanie dmuchawy do liści do pobierania próbek ssania populacji stawonogów w ryżu. W połączeniu z obudową, zastosowanie tego urządzenia do pobierania próbek zapewnia bezwzględne oszacowanie populacji stawonogów jako liczby na znormalizowany obszar pobierania próbek. Wydajność pobierania próbek zależy w decydującym stopniu od czasu trwania pobierania próbek. W przypadku dojrzałej uprawy ryżu dwuminutowe pobieranie próbek w pomieszczeniu o powierzchni 0,13m2 daje ponad 90% populacji stawonogów. Urządzenie umożliwia również pobieranie próbek stawonogów żyjących na powierzchni wody lub glebie na polach ryżowych, ale nie nadaje się do pobierania próbek szybko latających owadów, takich jak drapieżne Odonata lub większe parazytoidy błonkoskrzydłe. Zmodyfikowany dmuchawę próżniową jest prosty w budowie, tańszy i łatwiejszy w obsłudze niż tradycyjne urządzenia do pobierania próbek ssące, takie jak D-vac. Niski koszt sprawia, że zmodyfikowany odkurzacz dmuchawy jest również dostępny dla naukowców z krajów rozwijających się.

Introduction

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Wielokrotna ocena obfitości i różnorodności stawonogów fitofagów i entomofagów w uprawach jest potrzebna do badań ekologicznych dynamiki populacji i interakcji między gatunkami, w tym do badania kontroli biologicznej. Ryż jest głównym podstawowym pożywieniem, o wysokim potencjale biokontroli przez stawonogi entomofagiczne1,2, ale który może zostać zakłócony przez insektycydy3. Różnorodność stawonogów w uprawach ryżu może być duża, a gatunki stawonogów zajmują różne warstwy upraw (np. ziemia, łodyga, baldachim, kwiaty), różnią się sposobem poruszania się (np. chodzenie, skakanie, latanie) i strategią żerowania (np. osiadłe owady ssące, polowanie na drapieżniki i zapylacze odwiedzające kwiaty)4.

Istnieje szeroki zakres technik pobierania próbek stawonogów, z których każda ma mocne i słabe strony. Na przykład pułapki mogą być używane do pobierania próbek stawonogów żyjących na ziemi, ale zapewniają zależne od aktywności szacunki względnej populacji5,6. Siatki do zamiatania mogą być używane do pobierania próbek szybko latających owadów w koronach drzew7-9, ale dają względne szacunki liczebności stawonogów. Metoda beat sheet może być stosowana do pobierania próbek społeczności stawonogów żyjących w roślinach i zapewnia bezwzględne oszacowanie liczebności stawonogów, ale nie może być skutecznie stosowana na zalanych polach uprawnych, takich jak pola ryżowe10.

Pobieranie próbek ssania, gdy jest przeprowadzane w połączeniu z pomieszczeniem pokrywającym znormalizowany obszar pola, dostarcza bezwzględnych szacunków gęstości stawonogów żyjących w roślinach. Ta metoda może być również stosowana w przypadku zalanego ryżu. Próbki mogą być przechowywane w celu późniejszego przetworzenia i identyfikacji. Odkurzacz Dietrick (D-vac)11 jest pierwszym komercyjnie opracowanym próbnikiem ssącym. Chociaż D-vacs są nadal szeroko stosowane12-14, są stosunkowo drogie, mają ograniczoną siłę ssania15 i są stosunkowo ciężkie, co sprawia, że są trudne w obsłudze na zalanych polach ryżowych16. Arida i Heong 16 opracowali próbnik ssący wykorzystujący napędzaną benzyną dmuchawę do liści, a prototyp ten został następnie udoskonalony przez Domingo i Schoenly 17. Zaletą próbnika ssącego blower-vac w porównaniu z D-vac jest to, że jest znacznie tańszy i łatwiejszy w obsłudze.

Chociaż metoda pobierania próbek z odsysaniem dmuchawy była używana w wielu badaniach ekologicznych18-23, instrukcje dotyczące jej modyfikacji i zastosowania nie zostały jasno opisane. Poniżej przedstawiamy szczegółowy opis modyfikacji i zastosowania spalinowej dmuchawy do liści do pobierania próbek populacji stawonogów na zalanych polach ryżowych. Modyfikacja jest inspirowana modelami Arida i Heong 16 oraz Domingo i Schoenly 17, ale projekt został jeszcze bardziej uproszczony w porównaniu z tymi oryginalnymi publikacjami, co ułatwia budowę i użytkowanie.

Protocol

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

1. Modyfikacja dmuchawy do liści do pobierania próbek

  1. Zbierz wszystkie części wymienione na liście materiałów.
  2. Połącz wszystkie rury z polichlorku winylu (PVC) za pomocą kleju z nieplastyfikowanego polichlorku winylu (U-PVC) (rury 1-2-3-4-5 i 6-7).
  3. Wywierć trzy otwory, które są równomiernie rozmieszczone wokół otworu ssącego maszyny.
  4. Podłącz maszynę do końca 1 rury PVC 1-5, wkręcając po jednej w każdy z trzech otworów. Nie używaj kleju do łączenia końca rury 1 z maszyną, ponieważ połączenie powinno być odwracalne, aby wyczyścić wentylator.
    Uwaga: W przypadku, gdy średnica otworu ssącego maszyny różni się od opisanego tutaj modelu, średnicę końca rury 1 należy wyregulować, aby bezproblemowo pasowała do maszyny.
  5. Dodaj 2 warstwy taśmy uszczelniającej gwint na końcach rur 5 i 6.
  6. Umieść kawałek metalowej gazy między wężem a ustnikiem (rury PVC 6 i 7), aby zapobiec zassaniu siatki do pobierania próbek do urządzenia. Użyj metalowej gazy o średnicy oczek od 0,5 mm do 0,5 cm.
  7. Podłącz wąż do końców rur 5 i 6 za pomocą metalowych obręczy zaciskowych.

2. Przygotuj komorę do pobierania próbek

  1. Zdejmij dno z plastikowego wiadra (50 l, średnica dna 40 cm). Ten rozmiar wybiegu obejmuje 2-4 wzgórza ryżowe na przesadzonym polu ryżowym, w zależności od etapu uprawy24.
  2. Przymocuj nylonową tuleję z siatki o długości 1 m do górnej części wiadra za pomocą gumki. W przypadku tego rękawa należy użyć rozmiaru oczek, który jest wystarczająco mały, aby zapobiec ucieczce najmniejszych docelowych stawonogów. Użyj średnicy mniejszej niż 0,5 mm.

3. Zastosowanie w terenie zmodyfikowanej dmuchawy do liści do pobierania próbek

  1. Do obsługi urządzenia w terenie należy używać dwóch osób. Jedna osoba obsługuje dmuchawę odkurzającą, a druga obsługuje obudowę wiadra i siatki do pobierania próbek.
  2. Uruchom maszynę.
  3. Włóż siatkę do pobierania próbek do części ustnej dmuchawy i przymocuj ją gumką. W przypadku siatki użyj rozmiaru oczek, który jest wystarczająco mały, aby złapać najmniejsze docelowe stawonogi, ale nie tworzy wyraźnego oporu przepływu powietrza. Użyj lekkiego materiału nylonowego o średnicy oczek od 0,2 do 0,5 mm.
  4. Szybko umieść obudowę nad roślinami w losowym miejscu na polu i mocno wciśnij dno wiadra w glebę. Upewnij się, że rękaw jest zamknięty, aby zapobiec ucieczce stawonogów z górnej części obudowy.
  5. Wyjmij wszystkie stawonogi z wnętrza obudowy w sposób spiralny od góry do dołu, aby uzyskać znormalizowany czas pobierania próbek. W przypadku upraw ryżu w fazie wegetatywnej i reprodukcyjnej należy stosować czas pobierania próbek wynoszący odpowiednio 1 i 2 minuty.
  6. Po zakończeniu pobierania próbki należy zdjąć gumkę recepturkę z siatki do pobierania próbek, szybko zamknąć siatkę i wyjąć ją z części ustnej dmuchawy-odkurzacza i zamknąć węzłem, nie pozostawiając maszyny w ruchu.
  7. Powtórzyć kroki od 3.2 do 3.5 w losowych miejscach w terenie dla następnych próbek. Liczba powtórzeń zależy od zmienności rozmieszczenia przestrzennego stawonogów w terenie, wymaganej dokładności oszacowania oraz celu badania. Zazwyczaj sześć powtórzeń daje dobre wrażenie o zbiorowisku stawonogów i liczebności gatunków.

Results

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

We wrześniu 2015 roku w prowincji Jiangxi w Chinach zebrano łącznie 295 stawonogów w 8 trzyminutowych próbkach z uprawy ryżu w fazie dojrzewania. Aby określić zależność między względnym plonem (proporcją stawonogów zebranych w próbce) a czasem trwania pobierania próbek, każdą próbkę podzielono na sześć podpróbek po 30 sekund każda. Średnia liczba osobników w próbie wynosiła 36,9 ± 4,1 (średnia ± SEM). W sumie stwierdzono osiem rzędów stawonogów, z których dominującymi były Hemiptera (28,8%), Araneae (27,5%) i Diptera (17,6%) (ryc. 1). Plon względny, wyrażony jako procent liczby zebranych stawonogów po trzech minutach, wynosił 52,9% ± 5,1, 92,4% ± 1,9 i 97,3% ± 0,9 po odpowiednio 30 sekundach, 2 i 2,5 minutach (ryc. 2).

figure-results-1
Rysunek 1. Skład gatunkowy (na poziomie kolejności) próbek stawonogów na przedmieściach miasta Nanchang w prowincji Jiangxi w Chinach. Osiem próbek pobrano za pomocą trzyminutowego odkurzacza dmuchawy każda. Słupki błędów reprezentują błąd standardowy średniej. Kliknij tutaj, aby zobaczyć większą wersję tego rysunku.

figure-results-2
Rysunek 2. Skumulowana wydajność względna w funkcji całkowitego czasu trwania pobierania próbek na podstawie podpróbek wynoszących 30 sekund każda. Łączną liczbę stawonogów zebranych w czasie pobierania próbek wynoszącym trzy minuty ustala się na 100%. Podczas oględzin po ostatniej próbce z dmuchawy nie znaleziono żadnych stawonogów po przeprowadzeniu ostatniej próbki z dmuchawy. Słupki błędów reprezentują błędy standardowe średniej z ośmiu trzyminutowych próbek. Kliknij tutaj, aby zobaczyć większą wersję tego rysunku.

Discussion

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Pobieranie próbek ssących jest jedną z wielu możliwych metod pobierania próbek populacji stawonogów w uprawach. W przypadku badań naukowych w systemach ryżowych pobieranie próbek z ssania jest odpowiednią opcją, ponieważ metoda zapewnia bezwzględne oszacowanie zagęszczenia stawonogów, jest nieniszcząca i – w przeciwieństwie do zliczania wizualnego – umożliwia pobieranie i przechowywanie próbek do późniejszego przetwarzania. W porównaniu z dostępnym na rynku D-vac, dmuchawa jest mniejsza, lżejsza i łatwiejsza w obsłudze na (zalanych) polach ryżowych, a także łatwiejsza do połączenia z obudową. Na przykład dmuchawa próżniowa waży około 6 kg, podczas gdy plecakowy model D-vac, przedstawiany jako międzynarodowy standard pobierania próbek owadów, ma wagę 12 kg11. Co ważniejsze, wydajność pobierania próbek przez dmuchawę jest wyższa niż w przypadku D-vac16,17, podczas gdy koszt dmuchawy jest niższy. Modyfikacja dmuchawy do liści w próbnik ssący nie wymaga specjalnych umiejętności ani sprzętu i trwa mniej niż godzinę po zebraniu wszystkich dodatkowych części. Opisany tutaj dmuchawa-odkurzacz jest łatwiejszy w budowie i obsłudze niż wersje opisane wcześniej w literaturze16,17, a wymagane części (Tabela 1) są standardowymi materiałami konstrukcyjnymi, które są powszechnie dostępne. To sprawia, że dmuchawa próżniowa jest również dostępna dla naukowców z niewielkimi budżetami w krajach rozwijających się.

Moc i pojemność skokowa silnika decyduje o sile ssania dmuchawy-odkurzacza. W tym przypadku polecamy maszynę o mocy od 0,7 do 1,2 kW i pojemności skokowej od 25 do 35 cm3, która jest wystarczająca do pobierania próbek populacji stawonogów żyjących w roślinach w ryżu. Długość elastycznego węża z tworzywa sztucznego i średnica części ssącej (rura 7) mają kluczowe znaczenie dla dobrej wydajności pobierania próbek. Zbyt długi wąż zmniejszy moc ssania, podczas gdy zbyt krótki wąż będzie niewygodny w użyciu podczas pobierania próbek. Podobnie, część ustnika o zbyt dużej średnicy zmniejszy moc ssania, podczas gdy zbyt mała średnica zmniejszy wydajność próbkowania ze względu na małą powierzchnię. Wydajność pobierania próbek zależy w decydującym stopniu od czasu trwania pobierania próbek. Jeżeli pobieranie próbek odbywa się przez cały sezon wegetacyjny, może być konieczne dostosowanie czasu pobierania próbek do wielkości rośliny, struktury i gęstości sadzenia, aby utrzymać podobny poziom wydajności. Skuteczność pobierania próbek powinna być sprawdzana poprzez staranne oględziny zamkniętego obszaru po pobraniu próbek. Jeżeli stawonogi są nadal obecne, czas pobierania próbek musi zostać wydłużony. Zalecany czas pobierania próbek dla upraw ryżu w fazie wegetatywnej wynosi 1 minutę, a w fazie rozrodu i dojrzewania 2 minuty.

Pobieranie próbek z ssania za pomocą dmuchawy próżniowej można przeprowadzać na zalanych polach, podczas gdy alternatywne metody, takie jak pobieranie próbek z dołu i uderzenia, nie są możliwe w przypadku wody stojącej. Dmuchawa próżniowa może być również używana do pobierania próbek społeczności stawonogów na powierzchni wody zalanych pól ryżowych (np. drapieżnych pluskwiaków wodnych), ponieważ maszyna jest w stanie zassać trochę wody. Nie zaleca się jednak pobierania próbek stawonogów wodnych, ponieważ silnik może przestać działać, gdy część gębowa zostanie głęboko włożona do wody, a przepływ powietrza zostanie zablokowany. Oprócz ryżu, dmuchawa-odkurzacz może być również stosowany w innych uprawach i siedliskach nieuprawnych, o ile wysokość i struktura roślinności pozwala na prawidłowe umieszczenie obudowy25.

Nasza metoda pobierania próbek ssania blower-vac jest nieniszcząca. Przetrwały prawie wszystkie stawonogi zebrane w sieci do pobierania próbek, w tym te miękkie ciała, takie jak komary i ważki. Zastosowanie tej metody ma jednak pewne ograniczenia i wady. Dmuchawa-odkurzacz musi być obsługiwana przez dwie osoby. Noszenie dmuchawy na polu spowoduje pewne zakłócenia, a zatem ta metoda może zaniżyć gatunki wrażliwe na zakłócenia, takie jak koniki polne. Szybkie i nagłe umieszczenie obudowy w stosunkowo niezakłóconym obszarze w kierunku ruchu do przodu może ograniczyć to potencjalne odchylenie. Głośny hałas dmuchawy może również powodować zakłócenia, a pobieranie próbek w nocy w obszarach mieszkalnych nie jest zalecane. Metoda ta nie nadaje się do pobierania próbek wysoce ruchliwych owadów latających, takich jak drapieżne Odonata lub większe parazytoidy błonkoskrzydłe. Podobnie jak w przypadku każdej metody pobierania próbek, połączenie dmuchawy próżniowej z innymi metodami, takimi jak pobieranie próbek z sieci zamiatającej lub destrukcyjne zbieranie roślin, może zapewnić bardziej kompletną i zrównoważoną ocenę populacji stawonogów26.

Disclosures

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Autorzy nie mają nic do ujawnienia.

Acknowledgements

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Badania były wspierane finansowo przez Wydział Nauk o Ziemi i Życiu Holenderskiej Organizacji Badań Naukowych (grant 833.13.004), Sci-Tech Landing Projection of Higher Education of Jiangxi Province (KJLD14030) oraz The Cultivation Plan for Young Scientists of Jiangxi Province (Jinggang star 20153BCB23014). Dziękujemy Daomeng Fu, Zhigang Li i Xiaolong Huang za pomoc w produkcji filmu.

Materials

List of materials used in this article
NameCompanyCatalog NumberComments
Maszyna
Dmuchawa do liściUżyliśmy Oleo-Mac BV300, Wyprodukowano we WłoszechMoc: 1,0 kW, Wydajność: 30,5 cc, Maksymalna objętość powietrza: 720 m³/h, Maksymalna prędkość powietrza: 70 m/s, Waga: 4,5 kg, Średnica otworu ssącego: 113  mmDostępnych jest wiele różnych marek i modeli. Aby uzyskać porównywalne osiągi, specyfikacje dotyczące mocy i prędkości powietrza powinny być podobne do przedstawionych tutaj.
Dodatkowe części do modyfikacji
PVC pipe 1Zewnętrzna ø końca podłączonego do maszyny: 112 mm, Wewnętrzna ø końca podłączonego do rury PVC 2: 110 mmTo jest osłona rury PVC ø 110 mm
Rura PVC 2Zewnętrzna ø: 110 mm, Długość: 10 cmNormalna zewnętrzna ø 110 mm rura PVC; do łączenia rur PVC 1 i 3
Rura PVC 3Wewnętrzna i ukośna dużego końca: 110 mm, Wewnętrzna i ukośna małego końca: 50 mmPVC ø 110 mm do ø 50  mm reduktor rury spustowej
Rura PVC 4Zewnętrzna ø: 50 mm, Długość: 5  cmNormalny ø 50 mm Rura PVC; do łączenia Rura PVC 3 i 5
Rura PVC 5Wewnętrzna ø: 50 mm i 32  mm, Zewnętrzne i ukośnik; z małej części: 38 mmPVC ø 50 mm do ø 32 mm reduktor rury spustowej
Wążzewnętrzny ø: 40 mmWzmocniony drutem, elastyczny wąż z tworzywa sztucznego 
Metalowa gazaSiatka ø: 1 mm, ø: 60 mmZapobiec zasysaniu siatki do pobierania próbek do maszyny
Rura PVC 6Zewnętrzna ø małego końca: 38  mm, Wewnętrzny i ukośnik; dużego końca: 63  mmPVC ø 32 mm do ø 63 mm reduktor
Rura PVC 7Zewnętrzna ø: 63 mm, Długość: 25 cmNormalna zewnętrzna ø 63  mm Rura PVC
KlejU-PVC Klej U-PVC; do łączenia części PVC
Metalowe obręcze zaciskowe (2)Elastyczny między ø 35 mm - 51 mmDo łączenia węża z rurami
Taśma uszczelniająca gwintSzerokość: 18mmUszczelnij połączenia
(3)Długość: 25  mmDo połączenia rury PVC 1 z otworem ssącym maszyny
Siatka do pobierania próbek i obudowa
Siatka do pobierania próbekRozmiar oczek ø: 0,3 mm, Szerokość otworu: 10  cm, Wysokość: 30 cmSiatka do pobierania próbek ma stożkowaty kształt.
Dno wiadraø: 40 cm, Pojemność: 50 LWytnij spód
Nylonowy rękawRozmiar oczek ø: 0,3 mm, Długość: 1 mAby przykryć wiadro jako obudowę
PVCwąż-PVC

References

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Biology and management of rice insects. Heinrichs, E. A. , Wiley Estern Ltd & New Age International Ltd. London, UK. (1994).">Dale, D. Biology and management of rice insects. Heinrichs, E. A. , Wiley Estern Ltd & New Age International Ltd. London, UK. (1994).
  2. Managing tropical rice pests through conservation of generalist natural enemies and alternative prey. Ecology. 77 (7), 1975-1988 (1996).">Settle, W. H., et al. Managing tropical rice pests through conservation of generalist natural enemies and alternative prey. Ecology. 77 (7), 1975-1988 (1996).
  3. Ecotoxicology. Haskell, P. T., McEwen, P. , Springer. US. 381-403 (1998).">Heong, K. L., Schoenly, K. G. Ecotoxicology. Haskell, P. T., McEwen, P. , Springer. US. 381-403 (1998).
  4. Movement of entomophagous arthropods in agricultural landscapes: links to pest suppression. Annu Rev Entomol. 59, 559-581 (2014).">Schellhorn, N. A., Bianchi, F., Hsu, C. L. Movement of entomophagous arthropods in agricultural landscapes: links to pest suppression. Annu Rev Entomol. 59, 559-581 (2014).
  5. A comparison of terrestrial arthropod sampling methods. J Resour Ecol. 3 (2), 174-182 (2012).">Zou, Y., Feng, J., Xue, D., Sang, W., Axmacher, J. C. A comparison of terrestrial arthropod sampling methods. J Resour Ecol. 3 (2), 174-182 (2012).
  6. Temperature effects on pitfall catches of epigeal arthropods: a model and method for bias correction. J Appl Ecol. 50 (1), 181-189 (2013).">Saska, P., et al. Temperature effects on pitfall catches of epigeal arthropods: a model and method for bias correction. J Appl Ecol. 50 (1), 181-189 (2013).
  7. Measuring and modelling the dispersal of Coccinella septempunctata (Coleoptera : Coccinellidae) in alfalfa fields. Eur J Entomol. 97 (4), 487-493 (2000).">Vander Werf, W., Evans, E. W., Powell, J. Measuring and modelling the dispersal of Coccinella septempunctata (Coleoptera : Coccinellidae) in alfalfa fields. Eur J Entomol. 97 (4), 487-493 (2000).
  8. Sampling rice stink bug (Hemiptera : Pentatomidae) in and around rice fields. Environ Entomol. 35 (1), 102-111 (2006).">Rashid, T., Johnson, D. T., Bernhardt, J. L. Sampling rice stink bug (Hemiptera : Pentatomidae) in and around rice fields. Environ Entomol. 35 (1), 102-111 (2006).
  9. Aboveground arthropod pest and predator diversity in irrigated rice (Oryza sativa L.) production systems of the Philippines. J Trop Agr. 45 (1/2), 1-8 (2007).">Sarwshri, G. Aboveground arthropod pest and predator diversity in irrigated rice (Oryza sativa L.) production systems of the Philippines. J Trop Agr. 45 (1/2), 1-8 (2007).
  10. Temporal variation in arthropod sampling effectiveness: the case for using the beat sheet method in cotton. Entomol Exp Appl. 120 (2), 139-153 (2006).">Wade, M. R., et al. Temporal variation in arthropod sampling effectiveness: the case for using the beat sheet method in cotton. Entomol Exp Appl. 120 (2), 139-153 (2006).
  11. An Improved Backpack Motor Fan for Suction Sampling of Insect Populations. J Econ Entomol. 54 (2), 394-395 (1961).">Dietrick, E. J. An Improved Backpack Motor Fan for Suction Sampling of Insect Populations. J Econ Entomol. 54 (2), 394-395 (1961).
  12. Incidence of the beet leafhopper-transmitted virescence agent phytoplasma in local populations of the beet leaf hopper, Circulifer tenellus, in Washington State. J Insect Sci. 10 (1), 1-10 (2010).">Munyaneza, J. E., Crosslin, J. M., Upton, J. E., Buchman, J. L. Incidence of the beet leafhopper-transmitted virescence agent phytoplasma in local populations of the beet leaf hopper, Circulifer tenellus, in Washington State. J Insect Sci. 10 (1), 1-10 (2010).
  13. Intra-guild predation relaxes natural enemy impacts on herbivore populations. Ecol Entomol. 28 (1), 67-73 (2003).">Finke, D. L., Denno, R. F. Intra-guild predation relaxes natural enemy impacts on herbivore populations. Ecol Entomol. 28 (1), 67-73 (2003).
  14. Alternative prey disrupt biocontrol by a guild of generalist predators. Biol Control. 32 (2), 243-251 (2005).">Koss, A. M., Snyder, W. E. Alternative prey disrupt biocontrol by a guild of generalist predators. Biol Control. 32 (2), 243-251 (2005).
  15. D-vac sampling for predatory arthropods in winter wheat. Biol Control. 38 (3), 325-330 (2006).">Elliott, N. C., et al. D-vac sampling for predatory arthropods in winter wheat. Biol Control. 38 (3), 325-330 (2006).
  16. Blower-Vac: a new suction apparatus for sampling rice arthropods. Int. Rice Res. New. 17, 30-31 (1992).">Arida, G., Heong, K. Blower-Vac: a new suction apparatus for sampling rice arthropods. Int. Rice Res. New. 17, 30-31 (1992).
  17. An improved suction apparatus for sampling invertebrate communities in flooded rice. Int. Rice Res. New. 23 (2), 38-39 (2012).">Domingo, I., Schoenly, K. An improved suction apparatus for sampling invertebrate communities in flooded rice. Int. Rice Res. New. 23 (2), 38-39 (2012).
  18. Beneficial Insect Borders Provide Northern Bobwhite Brood Habitat. PLoS ONE. 8 (12), e83815(2013).">Moorman, C. E., Plush, C. J., Orr, D. B., Reberg-Horton, C. Beneficial Insect Borders Provide Northern Bobwhite Brood Habitat. PLoS ONE. 8 (12), e83815(2013).
  19. Biodiversity associated with an irrigated rice agro-ecosystem in Sri Lanka. Biodivers Conserv. 13 (9), 1715-1753 (2004).">Bambaradeniya, C. N. B., et al. Biodiversity associated with an irrigated rice agro-ecosystem in Sri Lanka. Biodivers Conserv. 13 (9), 1715-1753 (2004).
  20. A comparison of arthropod communities in transgenic Bt and conventional cotton in Australia. Environ Entomol. 34 (5), 1224-1241 (2005).">Whitehouse, M. E. A., Wilson, L. J., Fitt, G. P. A comparison of arthropod communities in transgenic Bt and conventional cotton in Australia. Environ Entomol. 34 (5), 1224-1241 (2005).
  21. Fallowing did not disrupt invertebrate fauna in Philippine low-pesticide irrigated rice fields. J Appl Ecol. 47 (3), 593-602 (2010).">Schoenly, K. G., et al. Fallowing did not disrupt invertebrate fauna in Philippine low-pesticide irrigated rice fields. J Appl Ecol. 47 (3), 593-602 (2010).
  22. Identity and relative importance of egg predators of rice leaffolders (Lepidoptera : Pyralidae). Biol Control. 19 (3), 215-222 (2000).">de Kraker, J., van Huis, A., van Lenteren, J. C., Heong, K. L., Rabbinge, R. Identity and relative importance of egg predators of rice leaffolders (Lepidoptera : Pyralidae). Biol Control. 19 (3), 215-222 (2000).
  23. A comparative study on population development patterns of Sogatella furcifera between tropical and subtropical areas. J Asia-Pacif Entomol. 17 (4), 845-851 (2014).">Hu, Y., et al. A comparative study on population development patterns of Sogatella furcifera between tropical and subtropical areas. J Asia-Pacif Entomol. 17 (4), 845-851 (2014).
  24. Determining optimal quadrat sizes for invertebrate communities in agrobiodiversity studies: A case study from tropical irrigated rice. Env Entomol. 32 (5), 929-938 (2003).">Schoenly, K. G., Domingo, I. T., Barrion, A. T. Determining optimal quadrat sizes for invertebrate communities in agrobiodiversity studies: A case study from tropical irrigated rice. Env Entomol. 32 (5), 929-938 (2003).
  25. Exploiting Biodiversity for Sustainable Pest Management. Mew, T. W., Borromeo, E., Hardy, B. , 23-24 (2001).">Marcos, T., et al. Exploiting Biodiversity for Sustainable Pest Management. Mew, T. W., Borromeo, E., Hardy, B. , 23-24 (2001).
  26. Population dynamics of rice leaffolders (Lepidoptera: Pyralidae) and their natural enemies in irrigated rice in the Philippines. Bull Entomol Res. 89 (5), 411-421 (1999).">Kraker, dJ., Huis, vA., Heong, K. L., Lenteren, vJ. C., Rabbinge, R. Population dynamics of rice leaffolders (Lepidoptera: Pyralidae) and their natural enemies in irrigated rice in the Philippines. Bull Entomol Res. 89 (5), 411-421 (1999).

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article

Request Permission

Tags

Leaf Blower vacArthropod SamplingSuction SamplingSampling EnclosurePVC Pipe AssemblySampling DurationSampling EfficiencyRice Field ArthropodsSampling NetMetal Hose Clamp

Related Articles