Subskrypcja JoVE jest wymagana do oglądania tego materiału. Zaloguj się lub rozpocznij bezpłatny okres próbny.

Artykuł metodologiczny

Leczenie polimerem 2-metakryloyloksyetylofosforylcholiny protez całkowitych w celu zahamowania odkładania się płytki nazębnej

9.9K wyświetleń

DOI:

10.3791/54965

26 grudnia 2016

W tym artykule

Podsumowanie

Zdejmowane protezy z poli(metakrylanu metylu) (PMMA) są podatne na przyleganie bakterii i tworzenie się płytki nazębnej. Zakażenie płytką zębową jest źródłem poważnych powikłań stomatologicznych i medycznych u osób starszych. W artykule przedstawiono nowy protokół leczenia protez PMMA polimerem 2-metakryloyloksyetylofosforylcholiny, poli(MPC-co-BMA-co-MPAz), w celu zahamowania odkładania się płytki nazębnej na protezach PMMA.

Streszczenie

Ruchome protezy wykonane z poli(metakrylanu metylu) (PMMA) są podatne na przyleganie bakterii i tworzenie się płytki nazębnej, co nazywa się płytką nazębną. Zakażenie płytką zębową jest źródłem poważnych powikłań stomatologicznych i medycznych u osób starszych. 2-metakryloyloksyetylofosforylcholina (MPC) jest dobrze znanym materiałem biomedycznym, który wykazuje wyraźną antytrombogenność i kompatybilność tkankową ze względu na wysoką odporność na adsorpcję białek i adhezję komórek. Dlatego sugeruje się, że powłoki polimerowe MPC mogą hamować odkładanie się płytki nazębnej na powierzchni protez z PMMA. Jednak powlekanie polimeru MPC na powierzchni protezy z PMMA jest zabiegiem złożonym, wymagającym specjalistycznego sprzętu, co jest uważane za główną barierę w jej zastosowaniu klinicznym.

Tutaj wprowadzamy nową procedurę leczenia polimerami MPC, która wykorzystuje poli (MPC-co-BMA-co-MPAz) (PMBPAz) w celu zapobiegania odkładaniu się płytki nazębnej na protezach ruchomych. Procedura ta umożliwia powlekanie MPC powierzchni protez z PMMA w prosty i stabilny sposób, który jest odporny na różne obciążenia chemiczne i mechaniczne dzięki warstwie MPC PMBPAz, która jest kowalencyjnie związana z powierzchnią PMMA przez naświetlanie światłem ultrafioletowym. Ponadto zabieg nie wymaga specjalistycznego sprzętu i może być wykonany przez lekarzy w ciągu 2 minut. Zastosowaliśmy tę procedurę w warunkach klinicznych i wykazaliśmy jej przydatność kliniczną i skuteczność w hamowaniu odkładania się płytki nazębnej na protezach ruchomych.

Wprowadzenie

Opieka zdrowotna jamy ustnej odgrywa ważną rolę w zapobieganiu infekcjom oportunistycznym i zachłystowemu zapaleniu płuc u osób starszych wrażliwych fizycznie. Opieka zdrowotna jamy ustnej, polegająca na szczotkowaniu po każdym posiłku, czyszczeniu protez zębowych i profesjonalnej opiece zdrowotnej jamy ustnej, odgrywa istotną rolę w zmniejszaniu częstości występowania takich chorób1-3. W szczególności niewłaściwa higiena jamy ustnej jest silnie związana z zachłystowym zapaleniem płuc u osób starszych wrażliwych fizycznie. Dlatego należy zwrócić większą uwagę na higienę jamy ustnej pacjentów w podeszłym wieku, którzy mają ograniczoną zdolność do samodzielnego czyszczenia protezzębowych 4.

Nawet w krajach rozwiniętych, stosowanie akrylowych, ruchomych protez na bazie żywicy pozostaje najczęstszą opcją leczenia dla bezzębnych pacjentów w podeszłym wieku5. Ze względu na wysoką zdolność wchłaniania wody, mikroporowatą powierzchnię i hydrofobowy charakter, akrylowe podstawy protez wykonane z polimetakrylanu metylu (PMMA) łatwo gromadzą na swojej powierzchni płytkę nazębną, która nazywana jest płytką nazębną.

2-metakryloyloksyetylofosforylcholiny (MPC) są dobrze znanymi biomedycznymi materiałami polimerowymi6, które mają niezwykłą antytrombogenność i kompatybilność tkankową ze względu na ich wysoką odporność na adsorpcję białek i adhezję komórek7-11. Powłoki polimerowe MPC są stosowane w różnych wyrobach medycznych w celu zapobiegania infekcjom12 i sugeruje się, że mogą zapobiegać gromadzeniu się płytki nazębnej na powierzchniach protez z PMMA13. Wyzwaniem w klinicznym zastosowaniu polimerów MPC do protez z PMMA jest niezawodne związanie ich z powierzchniami PMMA w prosty i stabilny sposób. Wcześniej donoszono, że polimery MPC są stabilnie związane z powierzchniami PMMA za pomocą techniki szczepienia i mają potencjał do hamowania gromadzenia się płytki nazębnej. Jednak technika szczepienia nie jest prosta i wymaga specjalistycznego sprzętu, co sprawia, że jej zastosowanie kliniczne jest trudne. W tym miejscu opisujemy nową procedurę powlekania MPC, która wykorzystuje fotoreaktywne polimery fosfolipidowe - w szczególności fotoreaktywną pochodną metakrylanu, 2-metakryloyloksyetylo-4-azydobenzoesan (MPAz) - syntetyzowaną w celu uzyskania różnych modyfikacji powierzchni różnych rodzajów materiałów. MPAz poddano kopolimeryzacji z polimerami MPC i metakrylanem n-butylu (BMA) w celu uzyskania poli (MPC-co-BMA-co-MPAz) (PMBPAz). PMBPAz może kowalencyjnie wiązać się z powierzchniami protez z PMMA poprzez aktywację grup azydkowych w MPAz pod wpływem promieniowania ultrafioletowego (UV)14. Zabieg nie wymaga specjalistycznego sprzętu i może być wykonany przez lekarzy w ciągu 2 minut. Zastosowaliśmy tę procedurę również w warunkach klinicznych i wykazaliśmy jej przydatność kliniczną i skuteczność w hamowaniu odkładania się płytki nazębnej na protezach ruchomych.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Protokół

1. Przygotowanie roztworu PMBPAz (Rysunek 1)

  1. Zsyntetyzuj MPC zgodnie z wcześniej opisaną procedurą przemysłową15.
  2. Zsyntetyzuj fotoreaktywny polimer MPC, PMBPAz, stosując konwencjonalną polimeryzację rodnikową MPC, BMA i MPAz w etanolu, zgodnie z wcześniejszym opisem14.
    UWAGA: PMBPAz powinien zawierać odpowiednio 60%, 30% i 10% (mol %) wspomnianych jednostek monomerowych. Przed użyciem schłodź PMBPAz rozpuszczony w etanolu, aby przygotować roztwór o stężeniu 0,5 wt%.
  3. Przed obróbką powierzchni PMMA pozostaw etanolowy roztwór PMBPAz na 30 min w temperaturze pokojowej.

Struktura chemiczna PMBPAz; schemat polimeru z segmentami MPC, BMA i MPAz do analizy materiałowej.
Rysunek 1. Wzór strukturalny fotoreaktywnego polimeru MPC o nazwie PMBPAz. PMBPAz został zbudowany z jednostki MPC, jednostki BMA oraz jednostki MPAz. Kliknij tutaj, aby wyświetlić powiększoną wersję tego rysunku.

2. Obróbka kompletnej protezy PMMA za pomocą PMBPAz (Rysunek 2)

  1. Oczyścić mechanicznie protezę przez 3 min za pomocą szczoteczki do protez.
  2. Oczyścić chemicznie protezę przez 5 min w myjce ultradźwiękowej z użyciem środka do czyszczenia protez zawierającego 2,0% podchlorynu sodu, stosując następujące parametry sonikacji: częstotliwość 50/60 Hz, liczba faz 1φ oraz częstotliwość oscylacji 28 kHz.
  3. Przed przeprowadzeniem modyfikacji powierzchni za pomocą PMBPAz, opłukać powierzchnię protezy poprzez zanurzenie w etanolu. Po płukaniu w etanolu pozostawić powierzchnię protezy do samoistnego wyschnięcia, ponieważ etanol jest związkiem lotnym.
  4. Nanieść 1 ml roztworu PMBPAz w etanolu bezpośrednio na całą powierzchnię protezy za pomocą aplikatora z pędzelkiem. Następnie pozostawić protezę w temperaturze pokojowej i pod ciśnieniem atmosferycznym przez 10 min, aby rozpuszczalnik odparował w atmosferze oparów etanolu. Pozostawić do wyschnięcia. Powtórzyć te kroki dwukrotnie.
  5. Naświetlać powierzchnię protezy światłem UV przez 2 min (przy 254 nm).
  6. Przed użyciem zanurzyć protezę traktowaną PMBPAz w wodzie destylowanej na 5 min.

Schemat polimeryzacji PMBPAz na PMMA; proces wykorzystujący etanol i światło UV w celu utworzenia warstwy.
Rycina 2. Wytwarzanie powierzchni zmodyfikowanej za pomocą fotoreaktywnego polimeru MPC, PMBPAz. Polimer PMBPAz może wiązać się kowalencyjnie z PMMA pod wpływem naświetlania UV. Kliknij tutaj, aby wyświetlić powiększoną wersję tej ryciny.

3. Ocena osadzania się płytki na protezach

  1. Stosować protezę traktowaną PMBPAz w domu przez 2 tygodnie. W ramach kontroli powtórzyć tę samą procedurę, z pominięciem traktowania PMBPAz.
  2. Po 2 tygodniach użytkowania protezy przez pacjenta (około 12 do 14 h dziennie), wypłukać ją wodą z kranu, aby usunąć luźne cząsteczki pokarmu, a następnie zabarwić roztworem ujawniającym błękit metylenowy 0,25% przez 1 min.
  3. Usunąć wszelkie zabarwienia obecne na powierzchni protezy w wodzie destylowanej, używając myjki ultradźwiękowej przez 30 s.
  4. Wykonać zdjęcia pod kątem 90° na podkładzie woskowym za pomocą aparatu cyfrowego z systemem białego światła. Zdjęcia należy wykonać przy tej samej odległości ogniskowej obiektu, czasie naświetlania i natężeniu oświetlenia. Wykonać zdjęcia z 3 różnych kierunków, aby uzyskać obrazy powierzchni śluzówkowej oraz prawego i lewego polerowanego obszaru powierzchni.
  5. Obliczyć powierzchnię zabarwioną i określić jej ilość dla całej powierzchni protezy za pomocą oprogramowania do analizy obrazu16.
    1. Wybrać obszar protezy za pomocą narzędzia „magnetyczne lasso” z wykonanego zdjęcia protezy. Następnie zmienić kanał koloru czerwonego, aby wyróżnić obszar płytki z obrazu obszaru protezy. Wybrać wszystkie obszary płytki za pomocą narzędzia „czarodziejska różdżka” (poziom tolerancji 8) oraz narzędzia „wybierz podobne” z obszaru protezy.
    2. Zliczyć całkowitą liczbę pikseli dla każdego obrazu. Następnie obliczyć procentowy indeks płytki w odniesieniu do obszaru pokrytego na protezie na podstawie liczby pikseli z tych obrazów (całkowita liczba pikseli płytki/całkowita liczba pikseli powierzchni protezy). Oceń różnice statystyczne między obszarami zabarwionymi na protezach traktowanych PMBPAz i nietraktowanych (ANOVA, p <0,05).

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Wyniki

Obróbka PMBPAz umożliwia powlekanie powierzchni PMMA polimerem MPC za pomocą prostej i krótkiej metody, zachowując przy tym efekt hamowania osadzania się płytki bakteryjnej charakterystyczny dla polimeru MPC. Procedura ta nie wymaga specjalistycznego sprzętu i może być wykonana przez klinicystów przy fotelu stomatologicznym w ciągu 2 min. Zgodnie z krokiem 2 protokołu, obróbka PMBPAz ruchomych protez całkowitych u 11 pacjentów bezzębnych została pomyślnie przeprowadzona w warunkach klinic...

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Dyskusja

Mechanizm powłoki PMBPAz

Wiązanie polimerów MPC z powierzchnią PMMA w prosty i stabilny sposób jest wyzwaniem. W tym przypadku użyliśmy nowego fotoreaktywnego monomeru zawierającego grupę fenylazydową, MPAz, która polimeryzuje z innymi monomerami w konwencjonalnej procedurze polimeryzacji wolnorodnikowej, w wyniku czego powstaje polimer z łańcuchami bocznymi fenylazydu. Grupy fenylazydowe są rozkładane przez promieniowanie UV w celu utworzenia grup nitrenowych, które są wysoce reaktywnymi grupami...

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Oświadczenia

Nie mamy żadnych ujawnień ani wsparcia finansowego.

Podziękowania

Autorzy pragną podziękować wszystkim uczestnikom, dentystom i asystentom za ich udział w tym badaniu. Serdecznie dziękujemy profesorowi Hirotaka Kuwata i adiunktowi Hirobumi Morisaki z Wydziału Mikrobiologii i Immunologii Jamy Ustnej Showa University School of Dentistry za ich wsparcie.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
Myjka ultradźwiękowaAiwa Medical EngineeringAU-12CWyczyść w wodzie destylowanej przed zabarwieniem protezy
UVP UV Crosslinker DL-1000Funakoshi95-0174-03Naświetlanie światłem UV przez 2 min przed użyciem
Lightbox SSuntec6542przechwytywanie w tym pudełku po zabarwieniu protezy
Adobe Photoshop CS6 ExtendedAdobeCalucurate i Określenia

Bibliografia

  1. Watando, A., et al. Daily oral care and cough reflex sensitivity in elderly nursing home patients. Chest. 126, 1066-1070 (2004).
  2. Bassim, C. W., Gibson, G., Ward, T., Paphides, B. M., DeNucci, D. J. Modification of the risk of mortality from pneumonia with oral hygiene care. J. Am. Geriatr. Soc. 56, 1601-1607 (2008).
  3. Ishikawa, A., Yoneyama, T., Hirota, K., Miyake, Y., Miyatake, K. Professional oral health care reduces the number of oropharyngeal bacteria. J. Dent. Res. 87, 594-598 (2008).
  4. Hosokawa, R. Prosthodontic interventions for special-needs patients. J Prosthodont Res. 58, 69-70 (2014).
  5. Parvizi, A., Lindquist, T., Schneider, R., Williamson, D., Boyer, D., Dawson, D. V. Comparison of the dimensional accuracy of injection-molded denture base materials to that of conventional pressure-pack acrylic resin. J. Prosthodont. 13, 83-89 (2004).
  6. Ishihara, K., Ueda, T., Nakabayashi, N. Preparation of phospholipid polylmers and their properties as polymer hydrogel membranes. Polym. J. 22, 355-360 (1990).
  7. Ishihara, K., Aragaki, R., Ueda, T., Watenabe, A., Nakabayashi, N. Reduced thrombogenicity of polymers having phospholipid polar groups. J. Biomed. Mater. Res. 24 (8), 1069-1077 (1990).
  8. Ishihara, K., Ziats, N. P., Tierney, B. P., Nakabayashi, N., Anderson, J. M. Protein adsorption from human plasma is reduced on phospholipid polymers. J. Biomed. Mater. Res. 25 (11), 1397-1407 (1991).
  9. Ishihara, K., Nomura, H., Mihara, T., Kurita, K., Iwasaki, Y., Nakabayashi, N. Why do phospholipid polymers reduce protein adsorption?. J. Biomed. Mater. Res. 39 (2), 323-330 (1998).
  10. Ishihara, K. Bioinspired phospholipid polymer biomaterials for making high performance artificial organs. Sci. Technol. Adv. Mater. 1 (3), 131-138 (2000).
  11. Iwasaki, Y., Ishihara, K. Cell membrane-inspired phospholipid polymers for developing medical devices with excellent biointerfaces. Sci. Technol. Adv. Mater. 13 (6), 064101 (10pp)(2012).
  12. Zhang, N., Chen, C., Melo, M. A., et al. A novel protein-repellent dental composite containing 2-methacryloyloxyethyl phosphorylcholine. Int J Oral Sci. 7, 103-109 (2015).
  13. Hirota, K., Yumoto, H., Miyamoto, K., et al. MPC-polymer reduces adherence and biofilm formation by oral bacteria. J Dent Res. 90, 900-905 (2011).
  14. Fukazawa, K., Ishihara, K. Synthesis of photoreactive phospholipid polymers for use in versatile surface modification of various materials to obtain extreme wettability. ACS Appl. Mater. Interfaces. 5 (15), 6832-6836 (2013).
  15. Ishihara, K., Ueda, T., Nakabayashi, N. Preparation of phospholipid polymers and their properties as polymer hydrogel membranes. Polym. J. 22 (5), 355-360 (1990).
  16. Coulthwaite, L., Verran, J. Evaluation of in vivo denture plaque assessment methods. Br Dent J. 207 (E12), 282-283 (2009).
  17. He, D., Susanto, H., Ulbricht, M. Photo-irradiation for preparation, modification and stimulation of polymeric membranes. Prog Polym Sci. 34, 62-98 (2009).
  18. Nakayama, Y. Surface macromolecular architectural designs using photo-graft copolymerization based on photochemistry of benzyl N,N-diethyldithiocarbamate. Macromolecules. 29, 8622-8630 (1996).
  19. Takahashi, N., Iwasa, F., Inoue, Y., Morisaki, H., Ishihara, K., Baba, K. Evaluation of the durability and antiadhesive action of 2-methacryloyloxyethyl phosphorylcholine grafting on an acrylic resin denture base. J. Prosthet. Dent. 112 (2), 194-203 (2014).

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Przedruki i uprawnienia

Tagi

Powłoka polimerowa MPCpowierzchnia protezy z PMMAnaświetlanie światłem UVatmosfera oparów etanolubarwienie błękitem metylenowymoprogramowanie do analizy obrazumyjka ultradźwiękowaobrazowanie cyfrową kamerąkwantyfikacja powierzchni płytki nazębnej