Protokoły ilościowego oznaczania przenoszalnych pozostałości pestycydów w systemach trawy darniowej

Podsumowanie

Eksperymenty z pozostałościami pestycydów w systemach trawiastych są integralnymi składnikami oceny ryzyka dla ludzi. Eksperymentalne podejścia do pomiaru pozostałości zbywalnych powinny być dostosowane do interakcji człowieka będącej przedmiotem zainteresowania oraz dynamiki systemu traw darniowych. Przedstawiono trzy protokoły dotyczące pozostałości pestycydów i omówiono ich przydatność w trzech systemach traw darniowych.

Streszczenie

Korony roślin w istniejących systemach traw darniowych mogą przechwycić znaczną ilość rozpylonych pestycydów, które mogą być przenoszone różnymi drogami na ludzi. Z tego powodu do rejestracji i ponownej rejestracji przez Agencję Ochrony Środowiska Stanów Zjednoczonych (USEPA) wymagane są eksperymenty z pozostałościami pestycydów, które można przekazać. Chociaż takie eksperymenty są wymagane, wymagana jest ograniczona specyficzność w odniesieniu do podejścia eksperymentalnego. Przedstawiono podejścia eksperymentalne stosowane do oceny przenoszenia pestycydów na ludzi, w tym wycieranie rąk bawełnianymi rękawiczkami, zmodyfikowany wałek kalifornijski (przesuwanie wałka o znanej masie po tkaninie bawełnianej) i toczenie piłki nożnej (piłka owinięta paskiem sorbentu) po trzech traktowanych gatunkach traw darniowych (pełzająca trawa gięta, hybrydowa trawa bermudzka i kostrzewa wysoka utrzymywana odpowiednio na wysokości 0,4, 5 i 9 cm). Zmodyfikowany walec kalifornijski jest obecnie najszerzej stosowanym podejściem i najlepiej nadaje się do stosowania na niskich wysokościach koszenia ze względu na swoją powtarzalność i dużą powierzchnię pobierania próbek. Rolka piłki nożnej jest mniej agresywnym podejściem do transferu; Jednak naśladuje bardzo powszechne zjawisko w najpopularniejszym sporcie międzynarodowym i ma wiele implikacji dla narażenia na pestycydy niedietetyczne w wyniku kontaktu z ustami. Dodatkowo podejście to można dostosować do innych aktywności sportowych z ograniczoną modyfikacją. Wycieranie ręczne jest najlepszym podejściem do przenoszenia pestycydów na wyższych wysokościach koszenia, ponieważ podejścia oparte na rolkach mogą nakładać ostrza; Jest to jednak bardziej subiektywne ze względu na bardziej zmienne ciśnienie próbkowania. Przedstawiono użyteczność tych metod w odniesieniu do różnych gatunków traw darniowych oraz omówiono dodatkowe kwestie dotyczące prowadzenia badań nad przenoszonymi pozostałościami pestycydów w systemach traw darniowych.

Wprowadzenie

Trawy darniowe są uprawiane na ponad 16,3 miliona ha w sąsiednich Stanach Zjednoczonych (USA) — przekraczając łączny obszar nawadnianej kukurydzy zbożowej [(Zea mays L.) 2,5 miliona ha], soi [(Glycine max L.) 2,1 miliona ha] i bawełny [(Gossypium hirsutum L.) 0,9 miliona ha] — i są wykorzystywane przez społeczeństwo do użytkowania gruntów, w tym boisk sportowych, Trawniki komercyjne/mieszkalne, pola golfowe i parki^1,2. Zapewniają one wiele pozytywnych cech społecznych, w tym kontrolę zapylenia, rozpraszanie ciepła, powierzchnie rekreacyjne i stabilizację gleby. Może jednak dojść do wtargnięcia szkodników, co wymaga użycia pestycydów w celu utrzymania murawy na akceptowalnym poziomie³.

Korony roślin w istniejących systemach traw darniowych przechwytują rozpylane pestycydy. Narażenie człowieka na pestycydy jest możliwe różnymi drogami, w tym przenoszeniem z roślinności poddanej działaniu środka bezpośrednio na ludzi, a także drogami pośrednimi, takimi jak przenoszenie na sprzęt do konserwacji, zwierzęta domowe i przedmioty rekreacyjne^4,5. Aby rozwiać takie obawy, przed rejestracją i ponowną rejestracją pestycydów w USA należy przeprowadzić ocenę ryzyka narażenia ludzi na pestycydy, aby oszacować charakter i prawdopodobieństwo wystąpienia niekorzystnych skutków zdrowotnych po narażeniu na skażone media środowiskowe⁶. W ramach wytycznych dotyczących badań narażenia zawodowego i mieszkaniowego stosowanych obecnie przez USEPA, przeprowadza się testy rozpraszania pozostałości przenoszonych dolistnie (OPPTS 875.2100) w celu ilościowego określenia pozostałości pestycydów na powierzchniach poddanych działaniu środka, które mogą być przenoszone w wyniku różnych procesów na ludzką skórę/odzież lub wdychane^7,8.

Poprzednie próby badawcze porównały kilka metod przenoszenia pozostałości pestycydów dolistnie, w tym wałek kalifornijski (przesuwanie rolki o znanej masie po bawełnianej tkaninie), sanki ciągnące (ciągnięcie stałego przedmiotu o znanej masie z przymocowanym do niego kawałkiem materiału), wałek z pianki poliuretanowej (przesuwanie rolki o znanej masie pokrytej pianką poliuretanową) i shuffling (mocowanie bawełnianej gazy do butów), które są przeprowadzane na znanym obszarze trawy darniowej poddanej działaniu pestycydów^9,10,11,12. Spośród wyżej wymienionych metod, kalifornijskie podejścia oparte na rolkach zapewniają najbardziej powtarzalne podejście do ilościowego oznaczania pozostałości pestycydów przenoszonych przez liście; Jednak porównywalnie bardziej agresywne podejścia, takie jak tasowanie butów, mogą przenosić więcej pozostałości pestycydów, co jest również przydatne w ocenach ryzyka. Metody ręcznego wycierania zapewniają stosunkowo zwiększoną zdolność kontaktu z unikalnymi powierzchniami roślinności trawy darniowej poddanej obróbce. Metoda ta dostarcza bardziej odpowiednich danych dotyczących spożycia pestycydów niezwiązanych z dietą, ponieważ kontakt ręka-usta jest powszechnym procesem związanym z tą drogą narażenia.

Dynamika koron drzew trawy darniowej różni się znacznie między gatunkami i miejscami użytkowania. Gatunki zwykle różnią się pod względem pokroju i pory wzrostu, a także tekstury i gęstości ostrzy, co wpływa na przechwytywanie oprysków pestycydami i procesy fizjologiczne^3,13. Dane wejściowe zarządzania mogą się znacznie różnić w zależności od lokacji użycia i w obrębie lokacji użycia w zależności od oczekiwań specyficznych dla lokacji. Na przykład trawa bermudzka (Cynodon spp.) jest wykorzystywana w dostosowanym klimacie jako pole golfowe, na którym zwykle nawadnia się i kosi >5 razy w tygodniu (zebrane ścinki) na wysokości od 0,3 do 0,4 cm, a także jako nienawadnianą roślinę okrywową, którą można kosić <1 razy w tygodniu (zwracane ścinki) na wysokości od 1,5 do 6,3 cm. Wcześniejsze badania wykazały, że przenoszone dolistne pozostałości pestycydów mogą się różnić w zależności od gatunku w obrębie miejsca użytkowania i mają na nie wpływ praktyki nawadniania i koszenia^14,15. Ostatecznie, zmienność między systemami traw darniowych hamuje wdrożenie uniwersalnej metody ilościowego określania przepuszczalnych pozostałości pestycydów dolistnych. W związku z tym wybór metod w celu optymalizacji oceny ryzyka dla ludzi powinien obejmować kryteria specyficzne dla pestycydów, procesów, miejsc i gatunków. Celem pracy było scharakteryzowanie różnych metod stosowanych do ilościowego oznaczania przepuszczalnych pozostałości pestycydów w listach oraz wskazanie warunków, które powinny być brane pod uwagę przy wyborze metody do danego eksperymentu.

Protokół

1. Identyfikacja i założenie działki terenowej

1. Zidentyfikuj obszary badawcze reprezentatywne dla wybranego systemu trawy darniowej. W szczególności należy wziąć pod uwagę odpowiednie gatunki trawy darniowej i rodzaj gleby, a także praktyki zarządzania, w tym żyzność, nawadnianie i wysokość koszenia.
2. Przeprowadzić wstępne analizy pozostałości liści i matryc glebowych, aby upewnić się, że pestycydy będące przedmiotem zainteresowania nie są wykrywalne.
3. Ułóż działki zgodnie z odpowiednimi wymiarami dla miejsca i metod pobierania próbek, a na granicach działki umieść alejki o długości 0,5-1,0 m, aby umożliwić ruch pieszy personelu.
   UWAGA: Wymiary działki mogą się różnić w zależności od warunków panujących w danym miejscu, ale powinny wynosić co najmniej 3,3 m². Pozwoli to na stworzenie ścieżki ruchu piłki o wymiarach 3,7 m x 0,5 m, a także równoważnego przyległego obszaru do pobierania próbek dla ruchu pieszego i roślinności.

2. Rozpoczęcie procesu

1. Dwadzieścia cztery godziny przed rozpoczęciem należy skosić trawę darniową do wysokości określonej dla danego systemu gatunku i zebrać ścinki. Usuń wszystkie pozostałe zanieczyszczenia za pomocą dmuchawy i nawodnij do nasycenia gleby.
   UWAGA: Nawadnianie w tym czasie powinno pozwolić na uzyskanie optymalnej wilgotności (tj. pojemności pola) podczas stosowania pestycydów.
2. Wybrać dawkę stosowania pestycydów na aktualnie zarejestrowanej maksymalnej ilości dozwolonych na etykiecie dla interesującego Cię miejsca. Dawka stosowania jest specyficzna dla produktu i określana przez USEPA oraz jest podana przez prawo na wszystkich etykietach pojemników z pestycydami.
   1. Wybierz aktualną minimalną objętość nośnika do opryskiwania na etykiecie, aby zmaksymalizować retencję oprysku dolistnego.
3. Na początku próby należy zastosować opryskiwanie pestycydami na poletkach, gdy warunki klimatyczne sprzyjają zatrzymywaniu roślinności poddanej działaniu pestycydów.
   UWAGA: Odpowiednie środki ochrony osobistej muszą być noszone przez aplikatorów i osoby niewykonujące aplikatorów w pobliżu obszaru testowego w okresie leczenia. Zawsze utrzymuj personel niebędący aplikatorem pod wiatr przed aplikacją sprayu. Warunki klimatyczne sprzyjające retencji roślinności poddanej działaniu środka obejmują wilgotność koron drzew (suchy podczas aplikacji), prędkość wiatru (<11 km/h) i prognozowane opady
   1. Podczas nawadniania/opadów atmosferycznych należy pokryć powierzchnie co najmniej czterema próbkami.
      UWAGA: Działki są przykryte, aby zapobiec wypłukiwaniu pestycydów z roślinności poddanej działaniu środka do strzechy trawy darniowej i/lub powierzchni gleby, dzięki czemu jest ona mniej usuwalna i nie docenia ryzyka narażenia. Pokrywy mogą się różnić w zależności od materiału i konstrukcji, ale powinny być wykonane z nieporowatego materiału, aby powierzchnie były suche, i zaprojektowane w taki sposób, aby nie stykać się z roślinnością poddaną działaniu środka (np. nie należy kłaść plandek bezpośrednio na powierzchniach), co może zagrozić późniejszemu pobieraniu próbek pestycydów.
4. Zbieraj godzinowe dane klimatyczne, w tym temperaturę powietrza, punkt rosy, wilgotność względną, czas wschodu słońca, kierunek i prędkość wiatru przez cały okres próbny, aby pomóc w interpretacji danych.

3. Próbki kontroli jakości

1. Pobrać jedną próbkę (od 50 do 100 ml) z każdego pojemnika na pestycydy użytego w badaniu, aby upewnić się, że wskaźniki obciążenia pestycydami są prawidłowe. Zapisać nazwę produktu i numer partii każdego pojemnika.
2. Pobrać próbkę każdej zastosowanej mieszanki opryskiwacza do opryskiwania pestycydów, zbierając dane wyjściowe z każdej dyszy rozpylającej, aby uzyskać jedną próbkę złożoną (od 50 do 100 ml) na zbiornik, aby zapewnić prawidłowe procedury mieszania roztworu do opryskiwania.
3. Wytwarzaj kontrole aplikacji oprysku zgodnie z opisem Welsh i wsp.¹², aby upewnić się, że odpowiednia ilość pestycydów jest stosowana na działkach.
4. Wykonać fortyfikacje polowe i próbki ślepe, zgodnie z opisem Welsh i wsp.¹² przy każdym zdarzeniu pobierania próbek, aby określić ilościowo rozproszenie podczas procesów pobierania i przechowywania próbki oraz zidentyfikować potencjalne źródła zanieczyszczeń.
   UWAGA: Stężenia próbek fortyfikacyjnych i rozpuszczalników mogą się różnić w zależności od uwarunkowań specyficznych dla związków i analiz
.

4. Uwagi dotyczące pobierania próbek

1. Próbki należy pobrać natychmiast po aplikacji i ponownie po wyschnięciu pestycydu na powierzchni liści. W zależności od warunków środowiskowych jest to zwykle od 1 do 3 godzin po aplikacji.
2. Po dniu aplikacji należy pobrać próbki o wschodzie słońca lub tuż po wschodzie słońca, kiedy zwykle występuje maksymalna wilgotność baldachimu trawy darniowej¹⁴.
   1. Określ czas pobierania próbek po dniu aplikacji w oparciu o określone właściwości fizykochemiczne pestycydów, przy czym odstępy między próbkami zmniejszają się wraz ze spadkiem trwałości pestycydów. Zaplanuj czas pobierania próbek w taki sposób, aby po zakończeniu eksperymentu wystąpiły co najmniej dwa kolejne przypadki niewykrycia.
      UWAGA: Przykład z poprzednich badań określających ilościowo przenoszoną sól 2,4-dimetyloaminy (2,4-D; okres półtrwania w polu = 6,2 d): 1) 0 d po zabiegu (DAT) — 0 h po oprysku; 2) 0 DAT — 1 h po oprysku; 3) 1 DAT; 4) 2 DAT; 5) 3 DAT; 6) 6 DAT; 7) 12 DAT; 8) 24 DAT¹⁴.

5. Pobieranie próbek pozostałości do przenoszenia

UWAGA: Rękawice nitrylowe są noszone podczas wszystkich procedur pobierania próbek i powinny być wymieniane tak często, jak to konieczne, aby zapobiec zanieczyszczeniu.

Rysunek 1: Kwantyfikacja ciśnienia wycierania ręcznego. Podejście stosowane do ilościowego określania nacisku spowodowanego ruchami wycierania z przodu (A) i z tyłu (B). W tym celu należy rozpylić zielony roztwór barwnika spożywczego (woda + 10% v/v barwnika spożywczego + 1% v/v niejonowego środka powierzchniowo czynnego) na nieporowatą powierzchnię (np. szklaną lub metalową tacę) i docisnąć dłoń zgodnie z przeznaczeniem do pobierania próbek pestycydów. Określ ilościowo powierzchnię kontaktu za pomocą cyfrowej analizy obrazu, jak opisano przez Campillo i wsp.¹⁷, aby określić proporcję zielonych pikseli na obraz znanego obszaru. Zbierz rdzeń trawy darniowej z zamierzonego obszaru badawczego, gdy gleba jest na odpowiednim polu, i przymocuj go do cyfrowej wagi. Określ ilościowo masę siły skierowanej w dół podczas wycierania ręcznego. Nacisk wycierania dłoni nie powinien przekraczać 2 kPa. Kliknij tutaj, aby zobaczyć większą wersję tego rysunku.

1. Chusteczka do rąk
   UWAGA: Wymaga jednej osoby.
   1. Skalibruj nacisk wycierania dłoni na 2 kPa.
      1. Oblicz siłę wycierania, mocując rdzeń trawy darniowej zebrany przy pojemności pola glebowego na wadze cyfrowej i dociskając, aby zapewnić od 150 do 200 g (tara przed prasowaniem).
      2. Określ ilościowo obszar przedniej i tylnej części dłoni używany do pobierania próbek trawy. Przede wszystkim używaj palców do kontaktu z unikalnymi źdźbłami trawy darniowej, jednocześnie ograniczając ich układanie.
         1. Przygotuj roztwór na bazie wody składający się z 10% v/v zielonego barwnika spożywczego + 1% v/v niejonowego środka powierzchniowo czynnego i spryskaj nieporowatą powierzchnię, aby utworzyć cienką warstwę.
            UWAGA: Niejonowy środek powierzchniowo czynny służy do zwiększenia pokrycia roztworem na nieporowatej powierzchni poprzez zmniejszenie napięcia powierzchniowego.
         2. Zakładając bawełnianą rękawiczkę, dociśnij dłoń do nieporowatej powierzchni (Rysunek 1).
         3. Zdejmij rękawicę i określ ilościowo obszar dłoni stykający się z nieporowatą powierzchnią, wykonując cyfrowe zdjęcie znanego obszaru każdej rękawicy, a następnie użyj ImageJ¹⁶, aby wybrać zielone piksele, podobnie jak Campillo i wsp.¹⁷. Spowoduje to wyświetlenie procentu całkowitego obrazu w zielonych pikselach, który jest używany do obliczania powierzchni.
      3. Połącz masę siły wycierania z powierzchnią wycierania, aby obliczyć nacisk dłoni.
   2. Skalibruj prędkość wycierania dłoni do 1.2 km/h, zaznaczając odległość 0.3 m na ziemi. Dostosuj prędkość wskazówki tak, aby wycieranie tej odległości trwało 1 s.
   3. Oznacz obszar pobierania próbek (420 cm²), umieszczając okrągłe wiadro (o średnicy 23 cm) do góry nogami w miejscu, w którym otwarty koniec jest skierowany w dół. Lekko dociśnij środek wiadra i przeciwną ręką pomaluj wokół zewnętrznej krawędzi wiadra (za pomocą farby do znakowania murawy).
   4. Zakładając bawełnianą rękawicę na rękawicę nitrylową na rękę dominującą, przecieraj obszar pobierania próbek przez 30 sekund. Naprzemiennie wykonuj powierzchnie przedniej i tylnej części dłoni, jednocześnie dostosowując kierunki prostopadle (ryc. 2).
      1. Powtórz krok 5.1.4 z nową rękawicą bawełnianą.
         UWAGA: Różnice w wymaganiach dotyczących rękawic na próbkę mogą się różnić w zależności od pestycydu, który jest przedmiotem zainteresowania, systemu trawy darniowej i obszaru pobierania próbek. Powinno to zostać ustalone przed rozpoczęciem doświadczenia poprzez wstępne wysiłki polegające na pobraniu od czterech do sześciu rękawic z każdego obszaru pobierania próbek bezpośrednio po aplikacji, jak również następnego ranka, gdy występuje wilgotność korony drzewa, w celu określenia liczby rękawic, które mają zostać przeniesione z maksymalną pozostałością pestycydów.
   5. Po pobraniu próbki należy tymczasowo przechowywać rękawice w szklanym słoiku na lodzie lub suchym lodzie w terenie i przenieść do zamrażarki w ciągu 3 godzin po zakończeniu pobierania próbki.

Rysunek 2: Wskazówki dotyczące wycierania ręcznego. Progresja ma na celu kontakt z maksymalną unikalną powierzchnią roślinności poddanej działaniu środka w celu wykonania rękawicy. Wymagane są dwie rękawice, aby uniknąć przeciążenia bawełny podczas pobierania próbek o powierzchni <415^cm2; Powinno to jednak zostać potwierdzone w warunkach specyficznych dla pestycydów i miejsca przed rozpoczęciem doświadczenia. Kliknij tutaj, aby zobaczyć większą wersję tego rysunku.

2. Zmodyfikowany wałek kalifornijski
   UWAGA: Wymaga trzech osób. Specyfikacje budowy aparatury znalezione w Fuller et al.⁹
   1. Użyj wałka (wałek: 14,5 kg, średnica 10 cm i długość 61 cm pokryta pianką poliuretanową 1,2 cm; uchwyt: długość 1,2 m) i ramki (62 cm szerokości na 91 cm długości), do której przymocowane jest bawełniane prześcieradło (>200 nitek; 70 cm szerokości na 99 cm długości).
   2. Niech osoby B i C przymocują bawełniany arkusz do ramy za pomocą zacisków i przymocują do obszaru pobierania próbek metalowymi gwoździami.
      UWAGA: Wytnij bawełniane prześcieradła przed pobraniem próbki, aby skrócić czas danej zbiórki.
   3. Poproś osobę A i B o zabezpieczenie plastiku (6 mm) wokół rolki, aby zapobiec zanieczyszczeniu próbek.
   4. Nie dodając nacisku, poproś osobę A o przetoczenie rolki po bawełnianej szmatce pięć razy (jedna rolka w dół i z powrotem równa się jeden raz). Prędkość toczenia powinna wynosić od 1,6 ± 0,2 km/h.
   5. Poproś osobę C, aby zdjęła ramkę z ziemi i przeniosła ją do pobliskiego stołu do pobierania próbek.
   6. Podczas gdy osoba C trzyma ramę, poproś osobę A o wzrokowe sprawdzenie szmatki i usunięcie resztek trawy/gleby za pomocą pęsety.
   7. Niech osoba A zdejmie bawełnianą szmatkę, a osoba B złoży ją tak, aby strona stykająca się z trawą darniową była złożona razem i przechowywała w szklanym słoiku na próbki.
      1. Przechowywać szklany słoik tymczasowo w chłodziarce na lodzie lub suchym lodzie na polu i przenieść do zamrażarki w ciągu 3 godzin po zakończeniu pobierania próbki.
   8. Po pobraniu próbki wyrzuć plastik otaczający wałek, wyczyść ramę, stół do pobierania próbek i pęsetę amoniakiem w proporcji 1:1:woda, spłucz wodą i wysusz przed powtórzeniem procesu.

Rysunek 3: Wałek do piłki nożnej. Z wyjątkiem A do B, wszystkie połączenia są klejone klejem PVC. Długość części C może się różnić w zależności od dostawcy ze względu na różne wymiary części B i D. Kliknij tutaj, aby zobaczyć większą wersję tego rysunku.

3. Rolka piłki nożnej
   UWAGA: Wymaga jednej osoby.
   1. Użyj ramy rolki do piłki nożnej wykonanej z rury z polichlorku winylu (PVC) (schemat 40; średnica wewnętrzna 5 cm).
      1. Zabezpiecz uchwyt (122 cm długości; Rysunek 3A) do łącznika trójnika ślizgowego (Rysunek 3B). Jest to jedyne połączenie, które nie jest zabezpieczone klejem PVC, aby ułatwić przechowywanie.
      2. Połóż rolkę na płaskiej powierzchni (pomoc w wyrównaniu) i zabezpiecz obie strony łącznika trójnika, aby wsunąć złączki kolankowe pod kątem 90° (Rysunek 3D) z rurą o długości 7 cm (Rysunek 3C).
      3. Włóż rury o długości 24 cm (Rysunek 3E) do otwartego końca złączek kolankowych
      4. Wywierć do drewna (średnica 0,6 cm i długość 7,5 cm; Rysunek 3F) przez koniec rury prostopadły do uchwytu i równoległy do płaskiej powierzchni.
         1. Ustaw odległość między do drewna na około 18.4 cm (może się różnić w zależności od marki/jakości używanych piłek do piłki nożnej).
         2. Pilnik/szlif ostry czubek do drewna za pomocą ręcznego pilnika/szlifierki, aby piłki nożne nie zostały przebite podczas toczenia (Rysunek 3G).
   2. Uwolnij ciśnienie powietrza w piłce nożnej do 24 kPa. Chociaż spowoduje to niedopompowanie piłki, gdy zostanie poluzowana z rolki z PVC, zwiększy ciśnienie do około 42 kPa, gdy objętość kulki zostanie zmniejszona po przymocowaniu do rolki.
   3. Zamontuj piłkę nożną na rolce, dotykając końców piłki (maksymalna średnica) do drewna.
      UWAGA: Aby skrócić całkowity czas pobierania próbek i potencjalne zanieczyszczenie, należy mieć jedną piłkę nożną na próbkę w danym czasie pobierania.
      1. Zakręć piłką ręcznie, aby upewnić się, że toczenie piłki jest symetryczne.
      2. Lekko dociśnij zamontowaną piłkę nożną, aby upewnić się, że jest odpowiednio zabezpieczona.
   4. Owiń dwukrotnie pasek sorbentu (5 cm szerokości i 132 cm długości) wokół obwodu kuli, który wyrównuje się z uchwytem rolki z PVC, co zapewnia stały kontakt paska trawy darniowej z sorbentem podczas toczenia (rysunek 3H).
      1. Przymocuj pasek sorbentu do kulki za pomocą pasków taśmy samoprzylepnej (2,5 cm na 2,5 cm).
         UWAGA: Odetnij paski sorbentu przed pobraniem próbki, aby skrócić czas pobierania próbek.
   5. Tocz piłkę ze stałą prędkością (1,6 ± 0,2 km/h) na dystansie 3,7 m od trawy, która jest w stanie poddać ją wyjątkowej obróbce. W zależności od wymiarów działki, odległość ta może wymagać wykonania rolek obok siebie. Należy przy tym zachować ostrożność, aby nie kontaktować się z roślinnością, z której nie pobrano jeszcze próbek.
      UWAGA: Odległość toczenia piłki 3.7 m może wymagać dostosowania w zależności od interesującego pestycydu i systemu trawy darniowej. Powinno to zostać ustalone przed rozpoczęciem eksperymentu poprzez wstępne wysiłki polegające na pobraniu próbek z różnych odległości natychmiast po zastosowaniu, jak również następnego ranka, gdy występuje wilgotność korony drzewa, w celu określenia optymalnej odległości do przeniesienia maksymalnej ilości pozostałości pestycydów.
   6. Po przetoczeniu kulki usuń pasek sorbentu i złóż go tak, aby strona stykająca się z trawą darniową była złożona i przechowywana w szklanym słoiku.
      1. Przechowywać szklany słoik tymczasowo w chłodziarce na lodzie lub suchym lodzie na polu i przenieść do zamrażarki w ciągu 3 godzin po zakończeniu pobierania próbki.

6. Kolekcja roślinności trawy darniowej

1. Usuń tłok z wnętrza obcinaka do kubków, aby zapobiec kontaktowi sprzętu do pobierania próbek z liśćmi poddanymi działaniu środka (Rysunek 4A).

Rysunek 4: Kolekcja rdzenia trawy darniowej. Obcinacz do kubków na pole golfowe to solidne, stosunkowo tanie urządzenie do zbierania darni/gleby. Usunąć wewnętrzny tłok używany do wyrzucania rdzeni przed użyciem do przenoszenia próbek pozostałości pestycydów, tak aby nie doszło do przypadkowego kontaktu z roślinnością, co może zmniejszyć stężenie pozostałości pestycydów. Kliknij tutaj, aby zobaczyć większą wersję tego rysunku.

2. Zbierz rdzeń trawy darniowej o reprezentatywnej jakości.
   1. Użyj noża do kubków, aby obrysować rdzeń i przyciąć do głębokości 5-7.5 cm gleby, aby ułatwić usuwanie.
   2. Przeciąć nożem (długość ostrza: 10 do 15 cm) pod kątem ukośnym poza krawędź rdzenia, aby usunąć rdzeń z ziemi. Zwróć szczególną uwagę, aby nie dopuścić do kontaktu dłoni/noża z roślinnością nadziemną traktowaną.
   3. Wyrównaj dolną powierzchnię gleby nożyczkami, tak aby leżała płasko w pojemniku na próbki. Głębokość gleby powinna zapewniać wystarczająco dużo miejsca, tak aby roślinność trawy darniowej nie stykała się z pokrywą pojemnika na próbki.
      UWAGA: Gdy pozwala na to pogoda, etap obcinania kubków na polu golfowym (6.2.1 w protokole) jest zwykle wykonywany po południu, gdy liście są suche, przed pobraniem próbki następnego ranka.

Wyniki

Opierając się na wcześniejszych próbach badawczych porównujących metody przenoszenia pozostałości pestycydów w ramach jednego systemu traw darniowych i systemów traw darniowych w ramach jednej metody przenoszenia pozostałości pestycydów, przeprowadzono badanie terenowe (rozpoczęte 24 maja 2016 r. w Raleigh, Północna Karolina, USA) w celu porównania metod między systemami trawy darniowej. Krótko mówiąc, 2,4-D, herbicyd szerokolistny powszechnie stosowany w systemach traw darniowych, przeno...

Dyskusja

Agencje regulacyjne nie zidentyfikowały konkretnej metody ilościowego określania przenoszalnych pozostałości pestycydów z trawy darniowej. Badania te wspierają wykorzystanie różnych metod opartych na kryteriach specyficznych dla danego miejsca i procesu narażenia, ponieważ wszystkie one mają przydatność do oceny ryzyka dla ludzi. Jednak wszystkie mają ograniczenia, o których badacze powinni wiedzieć przed ich użyciem. Wreszcie, gatunek trawy darniowej nie jest parametrem wyboru miejsca obecnie podawanym w protokołach dot...

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule

Nazwa	Firma	Numer katalogowy	Komentarze
General	>---	---
Rękawice nitrylowe	Dowolne
Farba do murawy	Dowolna	NA
Odzież ochronna na stopy	Dowolna	NA
Whatman 3 MM Chr Bibuła chromatograficzna	Fisher Scientific	05-716-3E
Nazwa	Firma	Numer katalogowy
Ball roll	------
Rura PVC (5 cm średnica wewnętrzna)	Home Depot	531137
Piła do metalu do cięcia PCV	Dowolna	Kolano NA
90° (średnica wewnętrzna 5 cm)	Home Depot	RCE-2000-S
Łącznik trójnikowy (średnica wewnętrzna 5 cm)	Home Depot	PVC024001600HD
klej PVC	Dowolna	śruba
(średnica 0,6 cm na 7 cm długość)	Piłka nożna Home Depot	801366
rozmiar 4	Dowolna	NA
Manometr	Dowolna	NA
Ręczna pompa powietrza	Dowolna	NA
Nożyczki do tkanin	Dowolna	NA
Scott Rags-In-A-Box	Taśma klejąca Uline	S-12809
	Dowolna	zamykana
8 uncji	Dowolna	NA
silny>Nazwa	Firma	Numer katalogowy
Chusteczka do rąk	---	---
100% bawełniane rękawice inspekcyjne o dużej gramaturze	Uline	S-19284
Aparat cyfrowy	Dowolne	NA
ImageJ	National Institutes of Health	https://imagej.nih.gov/ij/
Cyfrowa waga o wadze do 400 g	Dowolny
	Dowolna	plastikowa
(średnica 23 cm)	Home Depot	209313
16 uncji zamykany szklany słoik	Dowolna	NA
silny>Nazwa<	silny>Firma	Numer katalogowy
Zmodyfikowany wałek kalifornijski	>---	---Metalowy
przewód (średnica 1,25 cm i długość 1,8 m)	Home Depot	101543
rura PVC (średnica wewnętrzna 10 cm)	Home Depot	531103
Piasek + pręt, aby doprowadzić wałek do 14,5 kg	Dowolna	NA
	Home Depot	33403D
Arkusz pianki poliuretanowej (o grubości 1,25 cm) do pokrycia rury PVC	Dowolna	plastik
6 mm	Dowolna
(107 cm długości na 76 cm szerokości i 0,6 cm grubości)	Dowolne	NA
zaciski przegubowe	Dowolna	NA
Metalowe gwoździe (o długości od 10 do 15 cm) do mocowania ramy do podłoża	Dowolna	NA
Prześcieradła 100% bawełny (>200 nici)	Dowolna
	Dowolny
32 uncje	Dowolna	NA
silna>Nazwa	Company<	strong>Numer katalogowy
kolekcja rdzeni roślinności trawy darniowej	---	---
Nóż do kubków na polu golfowym z dźwignią	Aide Product Company	1001-1
Nóż	Dowolna	NA
Fiskars Nożyczki do ziół	Home Depot	96086966J
Plastikowy pojemnik na zatyczkę do murawy	Dowolny	NA