Subskrypcja JoVE jest wymagana do oglądania tego materiału. Zaloguj się lub rozpocznij bezpłatny okres próbny.

Artykuł metodologiczny

Mikroskopia fluorescencyjna w polu lokalnym: obrazowanie sygnałów komórkowych w nienaruszonych sercach

8.1K wyświetleń

⸱

DOI:

10.3791/55202

⸱

8 marca 2017

 ,  ,  , 

* These authors contributed equally

W tym artykule

Podsumowanie

W sercu, zdarzenia molekularne koordynują funkcję elektryczną i kurczliwą narządu. Zaprezentowany tu zestaw technik mikroskopii fluorescencyjnej pola lokalnego umożliwia rejestrację zmiennych komórkowych w nienaruszonych sercach. Identyfikacja mechanizmów definiujących czynność serca ma kluczowe znaczenie dla zrozumienia, jak serce działa w sytuacjach patologicznych.

Streszczenie

W sercu, badania sygnalizacji molekularnej są zwykle wykonywane w izolowanych miocytach. Jednak wiele patologicznych sytuacji, takich jak niedokrwienie i arytmie, można w pełni zrozumieć tylko na poziomie całego narządu. W tym miejscu przedstawiamy technikę spektroskopową mikroskopii fluorescencyjnej pola lokalnego (LFFM), która pozwala na pomiar sygnałów komórkowych w nienaruszonym sercu. Technika ta opiera się na połączeniu perfundowanego serca Langendorffa i światłowodów do rejestrowania sygnałów fluorescencyjnych. LFFM ma różne zastosowania w dziedzinie fizjologii układu krążenia do badania serca w normalnych i patologicznych warunkach. Wiele zmiennych sercowych może być monitorowanych za pomocą różnych wskaźników fluorescencyjnych. Należą do nich cytozolowy [Ca2+], retikulum wewnątrzsarkoplazmatyczne [Ca2+] i potencjały błonowe. Egzogenne sondy fluorescencyjne są wzbudzane, a emitowana fluorescencja wykrywana za pomocą trzech różnych układów technik epifluorescencji LFFM przedstawionych w tym artykule. Główne różnice między tymi technikami to rodzaj źródła światła używanego do wzbudzenia oraz sposób modulacji światła wzbudzenia. Impulsowy LFFM (PLFFM) wykorzystuje impulsy światła laserowego, podczas gdy LFFM o fali ciągłej (CLFFM) wykorzystuje ciągłe światło laserowe do wzbudzenia. Wreszcie jako trzecie źródło światła zastosowano diody elektroluminescencyjne (LED). Ten niekoherentny układ nazywa się pulsacyjną mikroskopią fluorescencyjną LED (PLEDFM).

Wprowadzenie

Serce jest centralnym organem układu sercowo-naczyniowego. Skurcz serca jest inicjowany przez wzrost wewnątrzkomórkowego [Ca2+]. Związek między pobudliwością elektryczną a zmianami w wewnątrzkomórkowym uwalnianiu Ca2+ był historycznie badany w komórkach zdysocjowanych enzymatycznie1,2. Jednak komórki serca są sprzężone elektrycznie, metabolicznie i mechanicznie3,4. Po wyizolowaniu miocyty są nie tylko fizycznie rozłączone, ale miocyty z różnych warstw są mieszane podczas dysocjacji5. Ponadto, pomimo ogromny....

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Protokół

Ten protokół i sposób postępowania z myszami został zatwierdzony przez Komitet ds. Opieki i Użytkowania Zwierząt UC Merced Institutional Animal Care and Use Committee (nr 2008-201). Eksperymenty z papugami przeprowadzono w 1999 r. zgodnie z ogólnymi zasadami dotyczącymi wykorzystywania zwierząt ustanowionymi przez komisję naukową Wenezuelskiego Instytutu Badań Naukowych (IVIC).

1. Langendorff Przygotowanie do konfiguracji

  1. Przygotować roztwór Tyrode zawierający następujące stężenia substancji rozpuszczonej w mM: 140 NaCl, 5,4 KCl, 2 CaCl2, 1 MgCl2, 0,33 Na2HPO4, 10 glukozy, 10 HEPES. Do....

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Wyniki

Przejściowe zmiany AP i Ca2+ w endokardium i epikardium

Aby porównać sygnały z całej ściany komory, jedno światłowody umieszcza się w endokardium, a drugie w epikardium. Porównanie morfologii potencjału czynnościowego (AP) zarejestrowanego z endokardium z potencjałem z epikardium jest najlepszym sposobem oceny funkcji transmuralnej. Ściana komory jest silnie heterogenna,.......

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Dyskusja

Niniejsza praca koncentruje się na opisie technik fluorescencji pola lokalnego w celu oceny funkcji miocytów serca ex vivo. Badanie tych komórek w sprzężonym środowisku jest nie tylko bardziej fizjologiczne, ale jest również wysoce odpowiednie do oceny patologii na poziomie narządów. Zdarzenia komórkowe leżące u podstaw sprzężenia pobudzenia-skurczu (ECC) mogą być oceniane na poziomie całego narządu za pomocą sond molekularnych, które monitorują wewnątrzkomórkową dynamikę Ca2 + (Rhod 2 cytozol Ca.......

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Oświadczenia

Autorzy nie mają nic do ujawnienia.

Podziękowania

Dziękujemy dr Alicii Mattiazzi za krytyczną dyskusję na temat prezentowanej pracy. Praca ta została wsparta grantem z NIH (R01 HL-084487) dla ALE.

....

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
Chlorek soduSigma7647-14-5
D-(+)-glukozaSigma50-99-7
Chlorek potasuSigma7447-40-7
HEPESSigma7365-45-9
Fosforan soduSigma10049-21-5
Roztwór chlorku wapniaSigma10043-52-4
Roztwór chlorku magnezuSigma7786-30-3
Wodorotlenek soduSigmaS-8045
0,2 μ m Filtr membranowynylonowy Whatman7402-004
Rozdzielacz MPPWarner64-0216 
21G1.5 Precyzyjna igła ślizgowaBD305167
pleciony jedwabny sznurek (niewchłanialny szew chirurgiczny)AllMech TechLOOK-SP105
Heparyna sodowa do wstrzykiwań 1000USP/mLAllMech TechNDC63323-540-11
DMSO D8779Sigma67-68-5
BlebbistatinSigma856925-71-8
Pluronic F-127 20% roztwórBiotium59004
Pompa perystaltyczna Materflex C/LCole-Parmer77122-26
Stymulator izostymuWorld Precision InstrumentsA320RC
Generator przebiegówTeledyne LecroyWaveStation 2012
Myjka ultradźwiękowa FS20Fisher Scientific1533530
Rurka Tygon ID: 1/32 " OD: 3/32 " Ściana 1/32 "Zasilanie komponentówTET-031A Średnica wewnętrzna rurki
Tygon: 3/32 " OD: 5/32 " Ściana 1/32 "Dostawa komponentówTET-094A
Adapter luer lock do zaworu 3-drogowegoCole-ParmerEW-31200-80
Adaptery trójnikowe i złączki z tworzywa sztucznegoCole-Parmer6365-90
Zacisk plastikowyWaterZoo2465
PeltierTE TechnologyTE-127-2.0-2.5
Rhod-2AMThermoFisher ScientificR1245MP
Di-8-ANEPPSThermoFisher ScientificD3167
Mag-Fluo-4AMThermoFisher ScientificM14206
Igły do akupunkturyLHASATC1.20x13
Strzykawka 60 ml BD z luer-lokFisher Scientific14-820-11
LabViewNational Instruments
Speed vacuum Eppendorf VagufugeFisher Scientific07-748-13
Cyfrowy obwód przetwarzania sygnału DSP TMS 320Texas Instrument
Longpass Lustro dichroiczne 567 nmThorLabsDMLP567L
Obiektyw 10X NA 0,25 DIN AchromatycznyFinite Intl Standard ObiektywEdmund OpticsStock# 33-437
Obiektyw 20X NA 0,40 DIN Achromatyczny skończony Intl Standard ObjectiveEdmund OpticsStock# 33-438
Longpass kolorowy filtr szklany 590 nm ThorLabsFGL590
Zielony laser Nd-YAG 532 nm, 500 mW
Mikromanipulator do laseraSiskiyouMX130R
Światłowód wielomodowy 200 µ m NA 0.39ThorLabsFT200UMT
LED niebieskieLumiledsL135-B475003500000
Diody LED zieloneLumiledsL135-G525003500000
Rozdzielacz wiązki Cube niepolaryzacyjnyThorLabsBS007
36" Długość, jaskółczy ogon Szyna optycznaEdmund Optics54-402
2.5" Szerokość, Nośnik na jaskółczy ogonEdmund Optics54-404
0,75" Podróż, stolik mikrometrycznyEdmund Optics37-983
Szyna optyczna na jaskółczy ogon 3"ThorLabsRLA075/M
Uchwyt szyny na jaskółczy ogon 1"ThorLabsRC1
Fotodioda lawinowa Helix 902Digi-KeyHELIX-902-200
Uchwyt obiektywu XY Translator& nbsp;ThorLabsST1XY-S
Aluminiowa płytka stykowa 6" x 6"ThorLabsMB6
Nexus stół otwarty 4' x6'ThorLabsT46HK
z walcowym ze stali nierdzewnejThorLabsHW-KIT5/M
Arkusz akrylowyHome Depot/Lowes
Sylgard Zestaw elastomerów silikonowychDow CorningSylgard 184
Żel epoksydowy Walmart / Home Depot2-częściowy 5 min clr 1oz
21G1.5 Precyzyjna igła ślizgowaB-D305167
23G Precyzyjna igła ślizgowaB-D305145
Podstawa montażowa, 25 mm x 75 mm x 10 mmThorLabsBA1/M
Półki druciane 36"AleraAALESW59PO36SR
Półki drucianeAleraALESW582424SR
Zacisk słupkowy i kątowyThorLabsSWC/M-P5
Szklana strzykawka do komory barwieniaWheatonW851020
Gumowy korekStrona główna Narzędzia naukoweCE-STOP01C

Bibliografia

  1. Fabiato, A., Fabiato, F. Contractions induced by a calcium-triggered release of calcium from the sarcoplasmic reticulum of single skinned cardiac cells. J Physiol. 249 (3), 469-495 (1975).
  2. Mitra, R., Morad, M.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Przedruki i uprawnienia

Przeglądaj więcej artykułów

Obrazowanie nienaruszonego sercaperfuzja Langendorffawskaźniki fluorescencyjnewapń cytozolowypotencjał błonowyimpulsowa LFFMciągła LFFMtechnika PLEDFMpomiar sygnału kardiologicznego