Subskrypcja JoVE jest wymagana do oglądania tego materiału. Zaloguj się lub rozpocznij bezpłatny okres próbny.

Artykuł metodologiczny

Budowa dwupoziomowych pułapek do wczesnego wykrywania omacnicy szmaragdowej

7.3K wyświetleń

⸱

DOI:

10.3791/55252

⸱

4 października 2017

 , 
1Department of Entomology and Department of Forestry, Michigan State University, 2Northern Research Station, USDA Forest Service

W tym artykule

Podsumowanie

Skuteczne pułapki do przyciągania i chwytania omacnicy szmaragdowej (EAB) są kluczowym elementem wykrywania i zwalczania tego inwazyjnego szkodnika. Pułapki piętrowe, umieszczane w pełnym słońcu w pobliżu jesionów, zawierają wskazówki wizualne i węchowe i były bardziej skłonne do uchwycenia EAB niż inne projekty pułapek w próbach terenowych.

Streszczenie

Omacnica szmaragdowa (EAB) (Agrilus planipennis Fairmaire), najbardziej niszczycielski owad leśny, jaki zaatakował Amerykę Północną, zabił setki milionów drzew jesionu leśnego i krajobrazowego (Fraxinus spp.). Opracowano kilka sztucznych pułapek do przyciągania i chwytania chrząszczy EAB w celu wykrywania, wyznaczania i monitorowania inwazji. Syfony piętrowe (DD) składają się z dwóch pryzmatów z tektury falistej z tworzywa sztucznego, jednego zielonego i jednego fioletowego, przymocowanych do rury z polichlorku winylu (PVC) o wysokości 3 m, wspartej na słupku teowym. Zielony pryzmat w górnej części rury PVC jest zanęcony cis-3-heksenolem, związkiem wytwarzanym przez liście popiołu. Powierzchnie obu pryzmatów są pokryte lepkim klejem na owady w celu wychwycenia dorosłych chrząszczy EAB. Pułapki piętrowe należy umieszczać w pobliżu jesionów, ale na otwartych przestrzeniach, wystawionych na działanie promieni słonecznych. Przedstawiono tu budowę i rozmieszczenie pułapek piętrowych wraz z podsumowaniem doświadczeń terenowych wykazujących skuteczność pułapek DD w chwytaniu chrząszczy EAB. W niedawnym badaniu przeprowadzonym w miejscach o stosunkowo niskim zagęszczeniu EAB, pułapki piętrowe przechwyciły znacznie więcej EAB niż zielone lub fioletowe pułapki pryzmatyczne lub zielone pułapki lejkowe, z których wszystkie są zaprojektowane tak, aby można je było zawiesić na gałęzi w koronach jesionów. Większy odsetek pułapek piętrowych był pozytywny, tj. złapał co najmniej jeden EAB, niż pułapki pryzmatyczne lub pułapki lejkowe, które były zawieszone w koronach jesionów.

Wprowadzenie

Omacnica szmaragdowa (EAB) (Agrilus planipennis Fairmaire) (Coleoptera: Buprestidae) zabiła setki milionów drzew jesionowych (Fraxinus spp.) od czasu jej pierwszego zidentyfikowania w 2002 roku w aglomeracji Detroit, Michigan i w pobliskim Windsorze, Ontario, Kanada. Niezamierzone rozprzestrzenianie się porażonych jesionów, kłód i drewna opałowego, wraz z naturalnym rozprzestrzenianiem się chrząszczy, spowodowało do tej pory założenie EAB w co najmniej 27 stanach i dwóch prowincjach Kanady1. Ostatnie doniesienia wskazują, że EAB zaatakowało również Moskwę, gdzie zabija jesiony krajobrazowe2,3, co budzi dodatkowe obawy o potencjalne rozprzestrzenienie się w Europie. Udokumentowano międzygatunkowe różnice w preferencjach i odporności gospodarzy EAB wśród gatunków jesionów w Ameryce Północnej4,5,6,7,8,9, ale praktycznie wszystkie gatunki jesionów w Ameryce Północnej prawdopodobnie będą odpowiednimi gospodarzami. Katastrofalne poziomy śmiertelności z powodu popiołu odnotowano na obszarach Michigan i Ohio10,11,12, z powiązanymi skutkami ekologicznymi i ekonomicznymi13,14,15,16.

Skuteczne metody wykrywania nowych inwazji EAB i monitorowania populacji o niskiej gęstości są kluczowymi aspektami zarządzania tym inwazyjnym szkodnikiem w środowisku miejskim, mieszkalnym i leśnym. Wczesne wykrycie daje czas na opracowanie strategii, zabezpieczenie finansowania i wdrożenie działań mających na celu zmniejszenie wpływu EAB. Na przykład urzędnicy miejscy i właściciele domów mogą rozpocząć leczenie cennego popiołu w krajobrazach za pomocą ogólnoustrojowych środków owadobójczych, zanim szkody spowodowane rosnącym zagęszczeniem larw ograniczą skuteczność tych produktów17,18. Podobnie, identyfikacja nowego porażenia i wiarygodna informacja o lokalnym rozmieszczeniu EAB daje leśnikom i właścicielom nieruchomości możliwość realizacji sprzedaży drewna, konwersji gatunków lub innych działań mających na celu zmniejszenie kosztów ekonomicznych lub skutków ekologicznych śmiertelności jesionów.

Wczesne wykrycie, rozgraniczenie i skuteczne monitorowanie populacji EAB o niskiej gęstości jest jednak nadal trudne. Badania wizualne mające na celu identyfikację nowo porażonych jesionów nie są wiarygodne, ponieważ jesion rzadko wykazuje zewnętrzne oznaki lub objawy porażenia EAB, dopóki zagęszczenie larw nie osiągnie umiarkowanego lub nawet wysokiego poziomu4,19. Najskuteczniejszym sposobem wykrywania bardzo niskich gęstości EAB jest użycie drzew detekcyjnych jesionu opasanego19,20,21,22. Jesiony opasuje się wiosną lub wczesnym latem poprzez usunięcie pasma zewnętrznej kory i łyka na obwodzie pnia, co obciąża drzewa, zwiększając ich atrakcyjność dla dorosłych chrząszczy EAB. Opasane drzewa można okorować jesienią lub zimą, aby określić obecność i zagęszczenie larw EAB. Mimo że opasane jesiony były używane operacyjnie do wykrywania EAB19,23,24,25, są one problematyczne. Korowanie drzew opasanych może być pracochłonne, a znalezienie odpowiednich drzew do opasania może być trudne, zwłaszcza na obszarach miejskich lub mieszkalnych lub gdy badania muszą być prowadzone przez wiele lat19.

Sztuczne pułapki z przynętą z atraktantami EAB eliminują wiele problemów związanych z używaniem opasanych drzew jesionowych. W przeciwieństwie do innych ważnych szkodników leśnych, takich jak cygańska (Lymantria dispar L) i niektóre korniki Scolytinae, które wytwarzają feromony seksualne lub agregacyjne na duże odległości, do tej pory nie znaleziono skutecznych feromonów długodystansowych dla EAB. Feromon płciowy krótkiego zasięgu, cis-lakton, może ułatwiać krycie26,27, ale w próbach terenowych przynęty cis-laktonowe nie konsekwentnie zwiększały atrakcyjności EAB dla sztucznych pułapek28. Dorosłe chrząszcze polegają na lotnych związkach emitowanych przez liście jesionu, korę i drewno, aby zidentyfikować drzewa żywicielskie29,30,31 i napotkać potencjalnych partnerów. Kilka lotnych związków zostało ocenionych pod kątem stosowania w przynętach w celu zwabienia dorosłych EAB do sztucznych pułapek27,32. Obecnie pułapki używane operacyjnie do badań wykrywających EAB w USA są nęcone przynętami zawierającymi cis-3-heksenol, powszechny zielony lotny liść wytwarzany przez liście jesionu30,33. W poprzednich latach pułapki EAB używane do badań w USA były również nęcone olejem Manuka, który jest pozyskiwany z nowozelandzkiego drzewa herbacianego (Leptospermum scoparium Forst and Forst ) lub olejkiem Phoebe, ekstraktem z orzecha brazylijskiego (Phoebe porosa Mez.); Oba zawierają kilka seskwiterpenów, które są również obecne w Ash Bark29. Problemy z niespójnymi dostawami tych naturalnych olejków ograniczyły jednak ich stosowanie.

Oprócz substancji lotnych wytwarzanych przez gospodarza, dorosłe chrząszcze EAB reagują na bodźce wizualne, w tym kolor i światło20,32,34,35. Wczesne badania wykazały, że dorosłe osobniki EAB, które są stosunkowo zwinnymi lotnikami, rzadko były chwytane przez czarne pułapki lejkowe z przynętą z różnymi lotnymi substancjami popiołu (DGM i TMP, dane niepublikowane). Oceniano inne konstrukcje pułapek, takie jak pułapki krzyżowe, ale niechęć chrząszczy EAB do ciemnych przestrzeni i cieni ograniczała skuteczność tych pułapek.

Opracowanie trójstronnego pryzmatu, który może być pokryty przezroczystym klejem do łapania owadów35 do chwytania chrząszczy, było znaczącym ulepszeniem w projektowaniu pułapek. Atrakcyjność dorosłych EAB do koloru została również szeroko oceniona w próbach terenowych i badaniach laboratoryjnych z użyciem retinograph34. Wyniki pokazują, że chrząszcze EAB są konsekwentnie przyciągane do określonych odcieni zieleni i fioletu32,36. Pułapki pryzmatyczne wykonane z kolorowego tworzywa falistego są obecnie szeroko stosowane w badaniach EAB w Stanach Zjednoczonych i Kanadzie.

Ponieważ dorosłe osobniki EAB są silnie przyciągane do światła, chrząszcze są znacznie bardziej skłonne do kolonizacji drzew rosnących na otwartej przestrzeni niż drzew zacienionych20,21. Wytyczne dla badań detekcyjnych EAB w USA wymagały, aby indywidualne pułapki pryzmatyczne były zawieszone na gałęzi środkowego baldachimu w jesionie rosnącym wzdłuż drogi lub na skraju obszaru zalesionego37. Teoretycznie powinno to zapewnić, że co najmniej jeden panel pryzmatu jest wystawiony na działanie promieni słonecznych. Operacyjnie jednak pułapki pryzmatyczne mogą być częściowo zacienione przez gałęzie napowietrzne lub przez sąsiednie lub pobliskie drzewa. Lepkie powierzchnie paneli są często wdmuchiwane w liście, co powoduje, że liście przylegają i zasłaniają przynajmniej część jednego lub więcej paneli.

Pułapki piętrowe (DD) zostały opracowane w celu zintegrowania wielu wizualnych i węchowych wskazówek, aby zwiększyć atrakcyjność chrząszczy EAB. Każda pułapka DD składa się z jednego zielonego i jednego fioletowego pryzmatu z tektury falistej z tworzywa sztucznego przymocowanego do rury z polichlorku winylu (PVC) o wysokości 3 m (średnica 10 cm), która jest podtrzymywana przez nasunięcie rury PVC na słupek teowy. Używanie zarówno zielonych, jak i fioletowych pryzmatów ma na celu przyciągnięcie obu płci chrząszczy EAB32,36,38,39. Dodatkowo, zamiast być zawieszone na gałęzi w koronie jesionu, pułapki DD są umieszczane w pełnym słońcu, w odległości 5-10 m od jesionów wzdłuż krawędzi obszaru zalesionego lub wśród rozproszonych, rosnących na otwartej przestrzeni jesionów.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Protokół

1. Przygotuj Zielony i Fioletowy Panel

  1. Kup zielone i fioletowe panele z tektury falistej z tworzywa sztucznego (120 cm × 60 cm) do odłowu EAB od komercyjnego dystrybutora materiałów do ochrony przed szkodnikami. Za pomocą noża do pudełek lub noża uniwersalnego naciąć dwie linie zagięcia w każdym panelu, częściowo przecinając plastik wzdłuż pionowych pofałdowań, 40 cm od dwóch krótkich krawędzi panelu. Pozwala to na złożenie panelu w 3-stronny pryzmat (każda powierzchnia będzie miała wymiary 40 x 60 cm). Panele są zwykle nacinane przez dystrybutora, aby ułatwić składanie, więc ten krok może nie być konieczny.
  2. Wywierć dwie pary otworów w każdym panelu za pomocą wiertła 1/2 cala (1.3 cm), jak pokazano na rysunku 1. Wywierć otwory w odległości 4 cali (10 cm) od górnej części panelu i 4 cale po obu stronach lewej fałdy. Wywierć drugą parę otworów w odległości 19 cali (48 cm) od górnej części panelu i bezpośrednio pod górnymi otworami (tj. 4 cale po obu stronach lewej fałdy).

2. Przygotuj rurę PVC

  1. Zaopatrz się w jeden odcinek rury z polichlorku winylu (PVC) z wykazu 40 o długości 3 m i średnicy 10 cm z komercyjnego sklepu z narzędziami lub innego dostawcy dla każdej pułapki. Wywierć cztery otwory w rurze PVC, jak pokazano na rysunku 2. Za pomocą wiertła 1/2 cala (1.3 cm) wywierć parę otworów w odległości 4 cali (10 cm) od górnej części rury PVC i 31/2 cala (8.9 cm) od siebie. Wyrównaj otwory poziomo.
  2. Wywierć drugą parę otworów, w odległości 31/2 cala od siebie i 52 cale (1.3 m) poniżej górnej części rury, bezpośrednio pod pierwszym zestawem otworów.

3. Zainstaluj słupek T

  1. Użyj słupka słupkowego, aby zainstalować słupek t w żądanym miejscu. Wbij słupek na tyle głęboko, aby kołnierz znajdował się tuż pod powierzchnią gleby, ale nie ma potrzeby wchodzenia głębiej. Słupek t zapewni duże wsparcie dla pułapki DD, nawet przy silnym wietrze. Odciągi lub dodatkowe podpory nie są konieczne. Chociaż słupek teowy nie musi być osadzony głęboko w glebie, dobrym pomysłem jest sprawdzenie, czy nie ma podziemnych mediów lub zakopanych rur przed wbiciem słupka w ziemię.

4. Złóż pułapkę DD

  1. Złóż fioletowy panel w pryzmat. Jeśli panele są wstępnie sklejone, upewnij się, że lepka strona znajduje się na zewnątrz. Przełóż dwie małe klapki przez szczeliny i użyj dwóch opasek kablowych o średnicy 8 cali (20 cm), aby połączyć ze sobą końce panelu. Powtórz z zielonym panelem.
  2. Podeprzyj rurę PVC poziomo nad ziemią. Wsuń fioletowy pryzmat na rurę PVC i w dół do dolnego zestawu otworów w rurze PVC.
  3. Przeprowadź dużą opaskę kablową o długości 2 stóp (60 cm) poziomo przez lewy górny otwór w pryzmacie, następnie przez parę otworów w rurze PVC, a na końcu przez sąsiedni otwór po prawej stronie pryzmatu. Upewnij się, że pryzmat przylega do solidnej części rury PVC, która znajduje się między dwoma otworami. Zamknij i dokręć opaskę kablową, upewniając się, że opaska kablowa nie jest skręcona.
  4. Przeprowadź drugą dużą opaskę kablową przez dolny otwór w pryzmacie, wokół rury i przez odpowiedni otwór po sąsiedniej stronie pryzmatu. Zamknij opaskę kablową i dokręć, ponownie uważając, aby opaska kablowa nie skręciła się przed dokręceniem.
  5. Wsuń zielony pryzmat na rurę PVC i przymocuj go do górnego zestawu otworów w rurze PVC za pomocą dwóch opasek kablowych o długości 60 cm, wykonując te same czynności, co poprzednio. Między górnym a dolnym pryzmatem będzie 21 cali (54 cm) odstęp
    6. .

5. Nałóż klej na owady i ustaw pułapkę

  1. Nałóż przezroczysty klej do łapania owadów na panele, które nie są wstępnie sklejone. Nawet wstępnie sklejone panele często wymagają dodatkowego kleju do wychwytywania chrząszczy EAB. Aby nałożyć klej do łapania owadów, ustaw podstawę rury PVC na ziemi i podeprzyj wewnętrzną powierzchnię górnego pryzmatu na słupku teowym.
  2. Używając rękawiczek lateksowych (lub podobnych), nabierz dwie do trzech garści kleju i rozprowadź go po powierzchni panelu, upewniając się, że powierzchnia panelu jest dokładnie pokryta. Obróć rurę PVC, aby uzyskać dostęp do wszystkich trzech powierzchni na obu pryzmatach. Klej nie musi być nakładany na rurę PVC.
  3. Podnieś rurę PVC, przytrzymaj ją pionowo i nasuń dolny koniec na słupek t. Unikaj dotykania lepkich paneli.

6. Przynęta na pułapkę DD

  1. Ponieważ wstępnie sklejone pryzmaty zwykle są dostarczane z małym otworem (4 mm) w pobliżu dolnej krawędzi jednego panelu pryzmatu, użyj opaski kablowej o długości 4 cali (10 cm), aby przymocować jedną torebkę cis-3-heksenolu do dolnej krawędzi górnego (zielonego) pryzmatu. Jeśli nie ma otworu, użyj ręcznego dziurkacza lub scyzoryka, aby wyciąć mały otwór lub naciąć plastik, a następnie użyj małej opaski kablowej, aby przymocować przynętę.
    UWAGA: Związek cis-3-heksenolu w przynętach jest powoli uwalniany przez okres około 10 tygodni. Jeśli pułapki mają pozostać skuteczne przez ponad 10 tygodni, w razie potrzeby wymień przynęty.

7. Sprawdzanie pułapek na chrząszcze EAB

  1. Jeśli to możliwe, sprawdzaj pułapki w odstępach 2-4 tygodni, aby uniknąć utraty schwytanych chrząszczy, które od czasu do czasu spadają z pułapek, zwłaszcza jeśli wystąpią ulewne deszcze. Zbadaj wszystkie trzy strony dolnego pryzmatu pod kątem chrząszczy EAB. Następnie, używając jednorazowych rękawiczek lateksowych, podnieś rurę PVC prosto do góry i zdejmij ze słupka teownika i podeprzyj wewnętrzną powierzchnię górnego pryzmatu na słupku teowym, odsłaniając jeden panel obu pryzmatów.
  2. Użyj kleszczy, aby usunąć wszelkie podejrzane chrząszcze EAB i umieść je w zamykanej plastikowej torbie na próbki.
  3. Obróć rurę PVC, aby sprawdzić wszystkie trzy panele na obu pryzmatach pod kątem podejrzanych chrząszczy EAB, a następnie nasuń rurę z powrotem na słupek t.
    UWAGA: Muchy, chrząszcze i różne inne owady nieuchronnie zostaną schwytane w pułapkach. Potrzeba bystrego oka, aby dostrzec chrząszcza EAB. Noszenie przy sobie karty referencyjnej ze zdjęciem może być pomocne podczas sprawdzania pułapek po raz pierwszy.
  4. Aby potwierdzić identyfikację gatunku, zwróć podejrzane chrząszcze do laboratorium i zanurz je w nietoksycznym środku czyszczącym histologicznym na dzień lub dwa, aby usunąć klej zatrzymujący owady. Chrząszcze można następnie badać pod mikroskopem preparacyjnym.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Wyniki

W badaniu na dużą skalę trzy rodzaje sztucznych pułapek oraz jesiony okrążone (z usuniętym pasem kory) zostały rozmieszczone systematycznie w odstępach 10-20 m na nowo zainfekowanym obszarze leśnym o powierzchni 16 ha z bardzo niską gęstością populacji EAB25. Testowane konstrukcje sztucznych pułapek obejmowały fioletowe pryzmaty z przynętą z olejku Manuka, zawieszone na wysokości >3 m na gałęziach w koronach jesionów, 3-metrowe pułapki DD z dwoma zielonymi panel...

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Dyskusja

Zarówno konstrukcja, jak i rozmieszczenie pułapek DD wykorzystują przyciąganie dorosłych chrząszczy EAB do określonych odcieni koloru i światła. Zielony pryzmat na górze rury PVC jest najbardziej atrakcyjny dla samców chrząszczy, które spędzają życie na żerowaniu na liściach jesionu, a także na kryciu 32,36,38,39. Dolny fioletowy pryzmat zapewnia, że pułapki są również atrakcyjne dla samic chrz...

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Oświadczenia

Autorzy oświadczają, że nie mają konkurencyjnych interesów finansowych.

Podziękowania

Kilku techników i absolwentów Uniwersytetu Stanowego Michigan pomogło opracować, udoskonalić i ocenić projekt pułapki DD na przestrzeni lat, w tym Andrea Anulewicz, Robert McDonald i Nathan Siegert. Dziękujemy Jamesowi Wieferichowi i Jeremy'emu Lowellowi (MSU) za pomoc w opracowaniu instrukcji instalacji DD. James Wieferich i Molly Robinett (MSU) dokonali przeglądu wcześniejszego szkicu tego manuskryptu i doceniamy ich sugestie. Joseph Francese i Damon Crook (USDA APHIS) hojnie podzielili się swoimi spostrzeżeniami na temat reakcji EAB na kolor i substancje lotne gospodarza. Finansowanie rozwoju i oceny pułapek DD pochodziło z dotacji Służby Leśnej USDA, Obszar Północno-Wschodni, Ochrona Zdrowia Lasów.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
Jasnozielony panel z tektury falistej: 120 cm x 60 cmWielkie Jeziora IPM; www.greatlakesipm.comIPM-EAB GRWszystkie trzy powierzchnie każdego pryzmatu należy pokryć przezroczystym klejem do łapania owadów, nawet jeśli panele są wstępnie sklejone. Wstępnie przyklejone panele często nie są wystarczająco lepkie, aby konsekwentnie wychwytywać lub zatrzymywać chrząszcze EAB.  Dostępne są inne przezroczyste kleje do łapania owadów, ale są one znacznie trudniejsze do nałożenia.    
Jasnofioletowy panel z tektury falistej: 120 cm x 60 cmWielkie Jeziora IPM; www.greatlakesipm.comIPM-EAB 
Duża opaska kablowa (4): 60 cm o nośności 79 kgCabletiesandmore.com; http://www.cabletiesandmore.com/cableties.phpCT-24-NU-100PK
Średnia opaska kablowa (4): 20 cm o nośności 22,7 kgCabletiesandmore.com; http://www.cabletiesandmore.com/cableties.phpCT261
Mała opaska kablowa: 10 cm o nośności 8,2 kgCabletiesandmore.com; http://www.cabletiesandmore.com/cableties.phpCT204
woreczek cis-3-hexanolSynergy Semiochemicals; http://www.semiochemical.com/html/buprestids.html)3136Przynęty używane do nęcenia pułapek DD składają się z woreczków zawierających cis-3-heksenol, nietoksyczny związek obecny w liściach jesionu. Jedna kieszeń jest przymocowana do dolnej krawędzi górnego pryzmatu za pomocą małej opaski kablowej.  Każda saszetka cis-3-heksenolu uwalnia się około 50 mg/dobę. Należy pamiętać, że cis-3-heksenol jest czasami zapisywany jako Z-3-heksenol. 
Aphinity HexenolSylvar Technologies
Lure GLV4 szmaragdowy popiółChemtica, Heredia, Kostaryka
woreczek cis-3-hexanolWestGreen Global Technologies; http://www.westgreenglobaltechnologies.com/
Przezroczysty klej do łapania owadów Hummert International; http://www.hummert.com/product-details/8196/pestick01-3522-1   
Środek czyszczący histologiczny Histoclear IINational Diagnostics; www.nationaldiagnostics.comHS-202Histoclear II będzie potrzebny do usunięcia lepkiego kleju na owady z podejrzanych chrząszczy. Dostępne są inne histologiczne środki czyszczące, ale mogą nie usunąć kleju, a niektóre produkty rozpuszczają plastik, co jest ważne w przypadku używania plastikowych pojemników do namaczania chrząszczy.
Histoclear II Histological Clears II IPMWielkie Jeziora; www.greatlakesipm.com10011Histoclear II będzie potrzebny do usunięcia lepkiego kleju na owady z podejrzanych chrząszczy.  Dostępne są inne histologiczne środki czyszczące, ale mogą nie usunąć kleju, a niektóre produkty rozpuszczają plastik, co jest ważne w przypadku używania plastikowych pojemników do namaczania chrząszczy.
słupek t: 1,5 mwiele źródełSłupek t (5 stóp wysokości) (1,5 m) służy do podparcia rury PVC.   
słupekz wielu źródełUżyj słupka słupkowego, aby wbić słupki w ziemię. Nie jest wymagane żadne dodatkowe wsparcie.
Rura PVC HDPE (polietylen o wysokiej gęstości): średnica 3 m x 10 cmwiele źródeł
Kleszcze (sztywne)wiele źródełKleszcze (pęseta) będą potrzebne do usunięcia podejrzanych chrząszczy z pułapek. Kleszcze sztywne działają lepiej niż kleszcze elastyczne. 
Rękawice lateksowez wielu źródełRękawice lateksowe są potrzebne do nakładania kleju do łapania owadów na pryzmaty oraz do sprawdzania pułapek w celu zbierania chrząszczy EAB.     
Oliwka dla niemowląt lub chusteczki dla niemowląt Wiele źródełOliwka dla niemowląt lub chusteczki dla niemowląt są pomocne w usuwaniu kleju pułapkowego z rąk i sprzętu.
Zamykane plastikowe torebki na próbki: 5 cm x 8 cm Wiele źródełMałe zamykane plastikowe torby na próbki są przydatne do zbierania chrząszczy z pułapek.  Każda torba powinna być opisana albo gotowymi, samoprzylepnymi etykietami, albo miękkimi flamastrami.    
Przewodniki pomagające w odróżnieniu EAB od chrząszczy pochodzących z Ameryki Północnej są dostępne na krajowej stronie internetowej EAB pod adresem www.emeraldashborer.info.
LP

Bibliografia

  1. EAB.info. Emerald Ash Borer Information Network. , Available from: http://emeraldashborer.info/ (2016).
  2. Baranchikov, Y., Mozolevskaya, E., Yurchenko, G., Kenis, M. Occurrence of the emerald ash borer, Agrilus planipennis in Russia and its potential impact on European forestry. OEPP/EPPO Bulletin. 38, 233-238 (2008).
  3. Orlova-Bienkowskaja, M. J. Ashes in Europe are in danger: the invasive range of Agrilus planipennis in European Russia is expanding. Biol. Invasions. 16, 1345-1349 (2014).
  4. Anulewicz, A. C., McCullough, D. G., Cappaert, D. L. Emerald ash borer (Agrilus planipennis) density and canopy dieback in three North American ash species. Arbor. Urban For. 33, 338-349 (2007).
  5. Chen, Y., Poland, T. M. Nutritional and defensive chemistry of three North American ash species: possible roles in host performance and preference by emerald ash borer adults. Grt. Lakes Entomol. 43, 20-33 (2010).
  6. Pureswaran, D. S., Poland, T. M. Host selection and feeding preference of Agrilus planipennis (Coleoptera: Buprestidae) on ash (Fraxinus spp). Environ. Entomol. 38, 757-765 (2009).
  7. Rebek, E. J., Herms, D. A., Smitley, D. R. Interspecific variation in resistance to emerald ash borer (Coleoptera: Buprestidae) among North American and Asian ash (Fraxinus spp). Environ. Entomol. 37, 242-246 (2008).
  8. Tanis, S. R., McCullough, D. G. Differential persistence of blue ash and white ash following emerald ash borer invasion. Can. J. For. Res. 42, 1542-1550 (2012).
  9. Tanis, S. R., McCullough, D. G., G, D. Host resistance of five Fraxinus species to Agrilus planipennis (Coleoptera: Buprestidae) and effects of paclobutrazol and fertilization. Environ. Entomol. 44, 287-299 (2015).
  10. Burr, S. J., McCullough, D. G. Condition of green ash (Fraxinus pennsylvanica) overstory and regeneration at three stages of the emerald ash borer invasion wave. Can. J. For. Res. 44, 768-776 (2014).
  11. Knight, K. S., Brown, J. P., Long, R. P. Factors affecting the survival of ash (Fraxinus spp.) trees infested by emerald ash borer (Agrilus planipennis). Biol. Invasions. 15, 371-383 (2013).
  12. Klooster, W. S. Ash (Fraxinus spp.) mortality, regeneration, and seed bank dynamics in mixed hardwood forests following invasion by emerald ash borer (Agrilus planipennis). Biol. Invasions. 16, 859-873 (2014).
  13. Flower, C. E. Native bark-foraging birds preferentially forage in infected ash (Fraxinus spp.) and prove effective predators of the invasive emerald ash borer (Agrilus planipennis Fairmaire). For. Ecol. Manage. 313, 300-306 (2014).
  14. Gandhi, K. J. K., Herms, D. A. North American arthropods at risk due to widespread Fraxinus mortality caused by the alien emerald ash borer. Biol. Invasions. 12, 1839-1846 (2010).
  15. Kovacs, K. F. Cost of potential emerald ash borer damage in U.S. communities, 2009-2019. Ecol. Econ. 69, 569-578 (2010).
  16. Kovacs, K. The influence of satellite populations of emerald ash borer on projected economic damage in U.S. communities, 2010-2020. Environ. Manage. 92, 2170-2181 (2011).
  17. Herms, D. A., McCullough, D. G. Emerald ash borer invasion of North America: history, biology, ecology, impact and management. Ann. Rev. Entomol. 59, 13-30 (2014).
  18. Herms, D. A., McCullough, D. G., Smitley, D. R., Sadof, C. S., Cranshaw, W. Insecticide options for protecting ash trees from emerald ash borer. , 2nd edition, North Central IPM Center Bulletin. 16(2014).
  19. Mercader, R. J., McCullough, D. G., Bedford, J. M. A comparison of girdled ash detection trees and baited artificial traps for Agrilus planipennis (Coleoptera: Buprestidae) detection. Environ. Entomol. 42, 1027-1039 (2013).
  20. McCullough, D. G., Poland, T. M., Anulewicz, A. C., Emerald Cappaert, D. Emerald ash borer (Agrilus planipennis Fairmaire) (Coleoptera: Buprestidae) attraction to stressed or baited ash (Fraxinus spp.) trees. Environ. Entomol. 38, 1668-1679 (2009).
  21. McCullough, D. G., Poland, T. M., Cappaert, D., Anulewicz, A. C. Emerald ash borer (Agrilus planipennis) attraction to ash trees stressed by girdling, herbicide and wounding. Can. J. For. Res. 39, 1331-1345 (2009).
  22. McCullough, D. G., Siegert, N. W., Poland, T. M., Pierce, S. J., Ahn, S. Z. Effects of trap type, placement and ash distribution on emerald ash borer captures in a low density site. Environ. Entomol. 40, 1239-1252 (2011).
  23. Hunt, L. Emerald ash borer state update: Ohio. Proceedings of the Emerald Ash Borer and Asian Longhorned Beetle Research and Technology Development Meeting, , U.S. Department of Agriculture, Forest Service Publication FHTET-2007-04. Morgantown, WV. Cincinnati, OH, 29 Oct. - 2 Nov. 2006 (2007).
  24. Mercader, R. J. Estimating local spread of recently established emerald ash borer, Agrilus planipennis, infestations and the potential to influence it with a systemic insecticide and girdled ash trees. For. Ecol. Manage. , (2016).
  25. Rauscher, K. The 2005 Michigan emerald ash borer response: an update. Proceedings of the Emerald Ash Borer Research and Technology Development Meeting, , U.S. Department of Agriculture, Forest Service Publication FHTET-2005-16. Morgantown, WV. Pittsburgh, PA, 26-27 Sept. 2005. (2005).
  26. Ryall, K. Detection and sampling of emerald ash borer (Coleoptera: Buprestidae) infestations. Can. Entomol. 147, 290-299 (2015).
  27. Silk, P. J., Ryall, K. Semiochemistry and chemical ecology of the emerald ash borer Agrilus planipennis (Coleoptera: Buprestidae). Can. Entomol. 147, 277-289 (2015).
  28. Poland, T. M. Recent development and advances in survey and detection tools for emerald ash borer. Proceedings of the 27th USDA Interagency Research Forum on Invasive Species, , Annapolis, MD. (2016).
  29. Crook, D. A. Development of a host-based semiochemical lure for trapping emerald ash borer, Agrilus planipennis (Coleoptera: Buprestidae). Environ. Entomol. 37, 356-365 (2008).
  30. de Groot, P. Electrophysiological response and attraction of emerald ash borer to green leaf volatiles (GLVs) emitted by host foliage. J. Chem. Ecol. 34, 1170-1179 (2008).
  31. Poland, T. M., McCullough, D. G. Comparison of trap types and colors for capturing emerald ash borer adults at different population densities. Environ. Entomol. 43, 157-170 (2014).
  32. Crook, D. J., Mastro, V. C. Chemical ecology of the emerald ash borer Agrilus planipennis. J. Chem. Ecol. 36, 101-112 (2010).
  33. Rodriguez-Saona, C. Behavioral and electrophysiological responses of the emerald ash borer, Agrilus planipennis, to induced volatiles of Manchurian ash, Fraxinus mandshurica. Chemoecology. 16, 75-86 (2006).
  34. Crook, D. J. Laboratory and field response of the emerald ash borer (Coleoptera: Buprestidae) to selected regions of the electromagnetic spectrum. J. Econ. Entomol. 102, 2160-2169 (2009).
  35. Francese, J. A. Optimization of trap color for the emerald ash borer, Agrilus planipennis (Coleoptera: Buprestidae). J. Econ. Entomol. 103, 1235-1241 (2010).
  36. Crook, D. J., Khrimian, A., Cossé, A., Fraser, I., Mastro, V. C. Influence of trap color and host volatiles on capture of the emerald ash borer (Coleoptera: Buprestidae). J. Econ. Entomol. 105, 429-437 (2012).
  37. Emerald Ash Borer Survey Guidelines. , (USDA APHIS) United States Department of Agriculture Animal and Plant Health Inspection Service, USDA APHIS PPQ.. Available from: https://www.aphis.usda.gov/plant_health/plant_pest_info/emerald_ash_b/downloads/survey_guidelines.pdf (2013).
  38. Grant, G. G., Poland, T. M., Ciaramitaro, T., Lyons, D. B., Jones, G. C. Comparison of male and female emerald ash borer (Coleoptera: Buprestidae) responses to phoebe oil and (Z)-3-hexenol lures in light green prism traps. J. Econ. Entomol. 104, 173-179 (2011).
  39. Cappaert, D., McCullough, D. G., Poland, T. M., Siegert, N. W. Emerald ash borer in North America: a research and regulatory challenge. Am. Entomol. 51, 152-165 (2005).
  40. Taylor, R. A. J., Bauer, L. S., Poland, T. M., Windell, K. Flight performance of Agrilus planipennis (Coleoptera: Buprestidae) on a flight mill and in free flight. J. Insect Behav. 23, 128-148 (2010).
  41. Mercader, R. J. Evaluation of the potential use of a systemic insecticide and girdled trees in area wide management of the emerald ash borer. For. Ecol. Manage. 350, 70-80 (2015).
  42. Mercader, R. J., Siegert, N. W., Liebhold, A. M., McCullough, D. G. Simulating the effectiveness of three potential management options to slow the spread of emerald ash borer, (Agrilus planipennis) populations in localized outlier sites. Can. J. For. Res. 41, 254-264 (2011).
  43. Mercader, R. J., Siegert, N. W., Liebhold, A. M., McCullough, D. G. Influence of foraging behavior and host spatial distribution on the localized spread of the emerald ash borer, Agrilus planipennis. Pop. Ecol. 53, 271-285 (2011).
  44. Poland, T. M., McCullough, D. G., Anulewicz, A. C. Evaluation of an artificial trap for Agrilus planipennis (Coleoptera: Buprestidae) incorporating olfactory and visual cues. J. Econ. Entomol. 104, 517-531 (2011).

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Przedruki i uprawnienia

Tagi

Pułapka dwupoziomowazestaw rur PVCklej do odłowu owadówprzynęta z cis-3-heksenoleminstalacja na słupku Tkonstrukcja pryzmatycznaprotokół monitorowania pułapekidentyfikacja chrząszczybadanie skuteczności w terenie
Budowa dwupoziomowych pułapek do wczesnego wykrywania omacnicy szmaragdowej
Skontaktuj się z nami
Poleć bibliotece

Prywatność

Warunki korzystania z usługi

Zasady

Prawa autorskie © 2026 MyJoVE Corporation. Wszelkie prawa zastrzeżone.