$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Istnieje wiele dobrze rozwiniętych metod oczyszczania i badania pojedynczych białek i peptydów. Jednak większość funkcji komórkowych jest realizowana przez sieci oddziałujących kompleksów białkowych, które często są trudne do zbadania, ponieważ ich wiązanie jest niekowalencyjne i łatwo zaburzone przez techniki oczyszczania. W pracy opisano metodę stabilizacji i separacji natywnych kompleksów białkowych z tkanki niemodyfikowanej za pomocą dwuwymiarowej elektroforezy w żelu poliakrylamidowym. Lizat tkankowy jest ładowany na niedenaturujący się natywny dla niebieskiego żelu poliakrylamidowego, a następnie podawany jest prąd elektryczny, aż białko przeniesie się na niewielką odległość do żelu. Pasek żelu zawierający migrowane białko jest następnie wycinany i inkubowany z odczynnikiem sieciującym aminy dithiobis (propionian sukcynimidylu), który kowalencyjnie stabilizuje kompleksy białkowe. Pasek żelu zawierający usieciowane kompleksy jest następnie wlewany do żelu poliakryloamidowego z dodecylosiarczanem sodu, a kompleksy są całkowicie oddzielane. Metoda opiera się na technikach i materiałach znanych większości biologów molekularnych, co oznacza, że jest niedroga i łatwa do nauczenia. Chociaż jej zdolność do odpowiedniego oddzielania ekstremalnie dużych kompleksów jest ograniczona i nie odniosła uniwersalnego sukcesu, metoda ta była w stanie uchwycić szeroką gamę dobrze zbadanych kompleksów i prawdopodobnie ma zastosowanie w wielu systemach będących przedmiotem zainteresowania.