Subskrypcja JoVE jest wymagana do oglądania tego materiału. Zaloguj się lub rozpocznij bezpłatny okres próbny.

Artykuł metodologiczny

Ponowne zbadanie połączeń światłowodowych dodatkowego obszaru motorycznego: metodologia rozwarstwiania włókien, DTI i dokumentacja trójwymiarowa

11.2K wyświetleń

⸱

DOI:

10.3791/55681

⸱

23 maja 2017

 ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  , 
1Department of Neurosurgery, University of Minnesota, 2Department of Neurosurgery, Barrow Neurological Institute, St. Josephs Hospital and Medical Center, 3Department of Radiology, University of Alabama at Birmingham, 4Department of Radiology, University of Minnesota, 5Department of Neurosurgery, Tepecik Training and Research Hospital, 6Department of Neurosurgery, Cerrahpasa Medical School, University of Istanbul

W tym artykule

Podsumowanie

Celem tego badania jest pokazanie każdego etapu techniki preparacji włókien na ludzkich mózgach zwłok, dokumentacji 3D tych sekcji oraz obrazowania tensora dyfuzji anatomicznie wypreparowanych ścieżek włókien.

Streszczenie

Celem tego badania jest pokazanie metodologii badania połączeń istoty białej kompleksu dodatkowego obszaru motorycznego (SMA) (pre-SMA i SMA właściwego) przy użyciu kombinacji technik preparacji włókien na próbkach zwłok i traktografii rezonansu magnetycznego (MR). Protokół będzie również opisywał procedurę preparacji istoty białej ludzkiego mózgu, obrazowanie traktograficzne tensora dyfuzji oraz dokumentację trójwymiarową. Sekcje włókien na ludzkich mózgach oraz dokumentacja 3D zostały przeprowadzone w Laboratorium Mikrochirurgii i Neuroanatomii Uniwersytetu Minnesoty, Wydział Neurochirurgii. Pięć pośmiertnych próbek ludzkiego mózgu i dwie całe głowy przygotowano zgodnie z metodą Klinglera. Półkule mózgowe były preparowane krok po kroku od bocznej do przyśrodkowej i przyśrodkowej do bocznej pod mikroskopem operacyjnym, a obrazy 3D były rejestrowane na każdym etapie. Wszystkie wyniki sekcji zostały poparte obrazowaniem tensora dyfuzji. Przeprowadzono również badania połączeń zgodnie z klasyfikacją dróg włókien Meynerta, w tym włókien asocjacyjnych (krótkie, górne pęczki podłużne I i czołowe drogi skośne), włókien projekcyjnych (korowo-rdzeniowe, klaustrockorowe, cingulum i czołowo-prążkowe) oraz włókien spoidła (włókna modzelowate).

Wprowadzenie

Wśród 14 obszarów czołowych nakreślonych przez Brodmanna, obszar przedruchowy i przedczołowy, który znajduje się przed przedcentralną korą ruchową, od dawna uważany jest za cichy moduł, pomimo faktu, że płat czołowy odgrywa ważną rolę w poznaniu, zachowaniu, uczeniu się i przetwarzaniu mowy. Oprócz kompleksu dodatkowego obszaru motorycznego (SMA), składającego się z pre-SMA i SMA właściwego (obszar Brodmanna; BA 6), który rozciąga się przyśrodkowo, moduł przedruchowy/czołowy obejmuje grzbietowo-boczną korę przedczołową (BA 46, 8 i 9), czołowo-biegunową (BA 10) i brzuszno-boczną przedczołową (BA 47), a także część kory oczodołowo-czołowej (BA 11) na bocznej powierzchni mózgu1,2.

Kompleks SMA to znaczący obszar anatomiczny, który jest zdefiniowany przez jego funkcje i połączenia. Resekcja i uszkodzenie tego obszaru powoduje znaczne deficyty kliniczne znane jako zespół SMA. Zespół SMA jest ważnym stanem klinicznym, który jest szczególnie obserwowany w przypadkach glejaka czołowego, które zawierają kompleks SMA3. Kompleks SMA ma połączenia z układem limbicznym, zwojami podstawy, móżdżkiem, wzgórzem, SMA po stronie przeciwległej, górnym płatem ciemieniowym i częściami płatów czołowych za pośrednictwem dróg włóknistych. Kliniczny efekt uszkodzenia tych połączeń istoty białej może być poważniejszy niż w korze mózgowej. Dzieje się tak dlatego, że konsekwencje uszkodzenia kory mózgowej mogą z czasem ulec złagodzeniu ze względu na wysoką plastyczność kory mózgowej 4,5,6,7,8,9,10,11,12,. Dlatego anatomia regionalna SMA i szlaki istoty białej powinny być dogłębnie poznane, w szczególności w przypadku operacji glejaka.

Kompleksowe zrozumienie anatomii szlaków istoty białej jest ważne dla szerokiego spektrum leczenia zmian neurochirurgicznych. Niedawne badania nad trójwymiarową dokumentacją wyników anatomicznych, które uzyskano w mikrochirurgii, wykorzystano do lepszego zrozumienia anatomii topograficznej i wzajemnych powiązań szlaków istoty białej mózgu13,14. W związku z tym celem niniejszej pracy było zbadanie połączeń istoty białej kompleksu SMA (pre-SMA i SMA właściwego) przy użyciu kombinacji technik preparacji włókien na próbkach zwłok i traktografii obrazowania metodą rezonansu magnetycznego (MRI) oraz wyjaśnienie wszystkich metod i zasad obu technik oraz ich szczegółowej dokumentacji.

Planowanie i strategia studiów

Przed przeprowadzeniem eksperymentów przeprowadzono przeszukiwanie literatury na temat podstawowych zasad sekcji włókien, procedur, które muszą być zastosowane do próbek przed i podczas sekcji, oraz wszystkich połączeń między obszarami SMA, które zostały ujawnione podczas sekcji i DTI. Dokonano przeglądu wcześniejszych badań nad anatomiczną lokalizacją i separacją obszarów pre-SMA i SMA-właściwych oraz nad anatomią topograficzną ich połączeń.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Protokół

Zmarli są tutaj uwzględnieni jako populacja, chociaż zmarli nie są technicznie ludzkimi podmiotami; podmioty ludzkie są zdefiniowane przez 45 CF 46 jako "żywe istoty ludzkie15,16."

1. Przygotowanie próbek

  1. Zbadaj 5 mózgów utrwalonych w formalinie (10 półkul) i 2 całe ludzkie głowy.
  2. Utrwal próbki w 10% roztworze formaliny przez co najmniej 2 miesiące zgodnie z metodą Klinglera17.
  3. Zamrozić wszystkie próbki w temperaturze -16 °C przez 2 tygodnie zgodnie z metodą Klingera17.
  4. Rozmrozić próbki pod bieżącą wodą.
  5. Wykonaj rozszerzoną kraniotomię czołowo-skroniową na głowie zwłok, aby odsłonić mózg.
    1. Umieść głowę zwłok w trzypinowym zacisku czaszki (tabela materiałów).
    2. Wykonaj nacięcie skóry czołowo-skroniowej za pomocą skalpela.
    3. Usuń skórę i mięśnie za pomocą skalpela, kleszczy i nożyczek.
    4. Wykonaj jeden lub więcej otworów w czaszce, aż do osiągnięcia opony twardej; użyj wiertła z kompaktowym reduktorem prędkości i nasadką do perforatora czaszki 14 mm przy 79 000 obr./min (tabela materiałów).
    5. Wytnij płat kostny i otwórz czaszkę za pomocą frezarki górnowrzecionowej o wymiarach 2 mm x 15,6 mm z nasadką do zadziorów w kształcie kołka 2,1 mm z prędkością wiertła 80 000 obr./min (tabela materiałów).
  6. Usuń oponę twardą, pajęczynówkę i pia mater i przeprowadź sekcję za pomocą mikrodysekcji pod mikroskopem w powiększeniu od 6X do 40X5,18 (Tabela materiałów).

2. Technika preparacji włókien

UWAGA: Wykonuj wszystkie sekcje pod powiększeniem od 6X do 40X na mikroskopie chirurgicznym.

  1. Wykonuj sekcje włókien w sposób krokowy na każdej półkuli, od bocznej do środkowej i przyśrodkowej do bocznej.
    1. Złuszcz korę mózgową za pomocą dysektora panfielda (tabela materiałów) i usuń wszystkie tkanki kory czołowej, aby odsłonić krótkie drogi włókien asocjacyjnych, które są włóknami U lub włóknami międzyzagrodowymi, które łączą sąsiednie zakręty5,13.
    2. Usuń krótkie włókna asocjacyjne za pomocą dysektora panfield i chirurgicznego mikrohaczyka, delikatnie przycinając pod mikroskopem (tabela materiałów), aby dotrzeć i odsłonić długie włókna asocjacyjne, które łączą odległe obszary na tej samej półkuli.
    3. Wejdź głęboko w długie włókna asocjacyjne, aby usunąć powierzchowne włókna asocjacyjne za pomocą chirurgicznego mikrohaka i dysektora panfielda; usuń każdą wiązkę włókien pod mikroskopem (tabela materiałów), aby odsłonić włókna spoidła projekcyjnego.
    4. Wyświetl każde z połączeń kompleksu SMA zgodnie z anatomią topograficzną, która została wcześniej zdefiniowana w literaturze2,8,18,19,20,21.
  2. Przechowuj wszystkie próbki (całe głowy i mózgi), które zostały użyte podczas sekcji, w 10% roztworze formaldehydu (tabela materiałów) między okresami sekcji.

3. 3D Technika fotograficzna

  1. Użyj czarnej platformy kolorystycznej podczas fotografowania okazów.
  2. Postępuj zgodnie z techniką fotografii 3D22.
    1. Umieść każdy egzemplarz na zaprojektowanej platformie w kolorze czarnym.
    2. Wybierz scenę z pełnym widokiem próbki z przodu i zrób jedno zdjęcie, ustawiając ostrość aparatu na dowolnym punkcie preparatu w pobliżu punktu środkowego na ekranie aparatu (tabela instrumentów). Użyj lustrzanki jednoobiektywowej 18 do 55 mm f/3.5-5.6 lub obiektywu makro 100 mm f/2.8L i ustaw przysłonę na F29, ISO 100.
    3. Obróć aparat lekko w lewo, aż skrajny prawy punkt na ekranie aparatu będzie taki sam jak punkt ostrości powyżej. Przesuń aparat w prawo, aż środkowy punkt na ekranie nałoży się na oryginalny punkt ostrości na próbce. Ustaw ostrość aparatu na tym punkcie i zrób kolejne ujęcie.
    4. Utrzymuj odległość i oś aparatu od fotografowanej próbki na stałych wartościach.
  3. Utwórz obraz 3D za pomocą programu do generowania obrazów 3D (Tabela materiałów).
    1. Otwórz program 3D.
    2. Wybierz "Otwórz obrazy stereo z pliku".
    3. Wybierz dwa obrazy (po lewej i prawej stronie) i upewnij się, że lewy obraz znajduje się w lewym gnieździe, a prawy obraz w prawym gnieździe.
    4. Wybierz opcję "Anaglif półkolorowy RL/2" i wygeneruj anaglif w formacie jpeg.

4. Technika DTI

  1. Uzyskaj wstępnie przetworzone dane dyfuzyjne za pomocą Human Connectome Project diffusion data23, pobierając je ze wspomnianej strony internetowej.
    UWAGA: Dane są pobierane wstępnie przetworzone i składają się z następujących procedur: Dane dyfuzji zostały uzyskane u normalnych ochotników przy użyciu zmodyfikowanego urządzenia MRI 3 T (tabela instrumentów) wykorzystującego sekwencję obrazowania planarnego echa spinowego (EPI) z wielopasmowym przyspieszeniem obrazu24,25,26,27,28. Odpowiednie parametry sekwencji obejmują: TR = 5 520 ms; TE = 89,5 ms; Pole widzenia = 210 x 180 mm; macierz = 168 x 144; Grubość plastra = 1,25 mm (rozmiar woksela 1,25 x 1,25 x 1,25 mm); współczynnik wielopasmowy = 3; i wartości b = 1,000 S/mm2 (95 kierunków), 2,000 S/mm2 (96 kierunków) i 3,000 S/mm2 (97 kierunków). Dane zostały następnie przetworzone przy użyciu FreeSurfer29i FSL30; Proces obejmował korekcję prądów wirowych, korekcję ruchu, normalizację intensywności B0, korekcję zniekształceń podatności oraz korekcję nieliniowości gradientu28,31,32,33. Odpowiednie obrazy MP-RAGE ważone T1 są również zawarte w pakiecie do pobrania. Procedury są udokumentowane w podręczniku procedur Human Connectome Project23.
  2. Przetwarzanie końcowe danych dyfuzji za pomocą Diffusion Spectrum Imaging (DSI) Studio34w celu wygenerowania szacowanej funkcji rozkładu orientacji dyfuzji pod względem wokseli (ODF) przy użyciu algorytmu uogólnionego obrazowania q-sampling (GQI)35.
    1. Załaduj pobrany zestaw danych do oprogramowania, wybierając "KROK 1: Obrazy open source" i wybierając plik data.nii.gz.
    2. Wybierz przycisk "KROK 2: Rekonstrukcja". Po zweryfikowaniu maski mózgowej przejdź do "Krok 2" i wybierz "GQI" jako metodę rekonstrukcji. Wybierz "r^2 waga" ze "stosunkiem długości" "1.0". Pozostaw pozostałe opcje jako domyślne.
    3. Wybierz opcję "Uruchom rekonstrukcję".
  3. Umieść odpowiednie nasiona dla regionów zainteresowania, aby usprawnić śledzenie światłowodów.
    1. W oknie "Region" kliknij przycisk "Atlas", aby umieścić nasiona dla pęczka podłużnego górnego (SLF) I. Wybierz "Brodmann" i dodaj "Region 6" i "Region 7". W oknie regionu ustaw typ "Region 6" na "seed", a typ "Region 7" na "region-of-inclusions" (ROI).
      1. Wybierz "Nowy region" w oknie regionu i ręcznie narysuj ROI w najbardziej tylnym aspekcie górnego zakrętu czołowego w płaszczyźnie koronalnej. Wykonaj śledzenie światłowodu zgodnie z opisem w kroku 4.4.
    2. Umieść nasiona SLF II w podobny sposób, używając "Nowy region" w oknie regionu i rysując obszar "nasion" w tylnym aspekcie środkowej istoty białej zakrętu czołowego w płaszczyźnie koronalnej. Wybierz zwrot z inwestycji za pomocą "Atlasu" (jak w kroku 4.3.1) i regionów Brodmanna 9, 10, 46, 39 i 19. Wykonaj śledzenie światłowodu zgodnie z opisem w kroku 4.4.
    3. Umieść nasiona SLF III z regionem "seed", używając "Atlas" (jak w kroku 4.3.1) w oknie regionu i wybierając "Region 40" z atlasu Brodmanna i ROI z "Atlas..." w "Region 40" i "Region 44". Wykonaj śledzenie światłowodu zgodnie z opisem w kroku 4.4.
    4. Umieść nasiona włókien modzelowatych za pomocą "Nowego regionu" w oknie regionu i narysuj "ziarno" w płaszczyźnie strzałkowej obejmującej ciało modzelowate. Wykonaj śledzenie światłowodu zgodnie z opisem w kroku 4.4.
    5. Umieść nasiona włókien zakrętu obręczy za pomocą "Nowego regionu" w oknie regionu i narysuj obszar "nasion" w środkowym zakręcie obręczy w widoku koronalnym. Użyj "Nowy region", aby narysować dwa ROI, jeden w bardziej przednim zakręcie obręczy i jeden w tylnym zakręcie obręczy w widoku koronalnym. Wykonaj śledzenie światłowodu zgodnie z opisem w kroku 4.4.
    6. Umieść nasiona włókien klaustrokorowych za pomocą "Nowy region" w oknie regionu i narysuj "ziarno" w klauzurze z ROI w koronie promienistej za pomocą funkcji "Atlas...". Wybierz atlas jako "JHU-WhiteMatter-labels-1mm".
      1. Wybierz i dodaj "Anterior_corona_radiata", "Posterior_corona_radiata" i "Superior_corona_radiata". Narysuj obszar unikania dla wszystkich włókien przechodzących przez płaszczyznę niższą od poziomu klauzury w płaszczyźnie osiowej, używając opcji "Nowy region" w oknie regionu. Wykonaj śledzenie światłowodu zgodnie z opisem w kroku 4.4.
    7. Umieść nasiona drogi korowo-rdzeniowej za pomocą "nasiona" z "Atlasu... " w oknie regionu; wybierz "JHU-WhiteMatter-labels-1mm" i dodaj region "Corticospinal_tract". Wykonaj śledzenie światłowodu zgodnie z opisem w kroku 4.4.
    8. Umieść nasiona na czołowy skośny przewód (FAT) za pomocą regionu "nasion" z "Atlasu... " w oknie regionu i wybierając atlas Brodmanna i zwrot z inwestycji "Region 6" w "Region 44" i "Region 45". Wykonaj śledzenie światłowodu zgodnie z opisem w kroku 4.4.
    9. Umieść nasiona drogi czołowo-prążkowej (FST) z "nasionem" w "Regionie 6" za pomocą "Atlasa... " funkcji. Wstaw nowe regiony w polach "caudate", "crumamen" i "globus pallidus" z atlasu "HarvardOxfordSub" i ustaw typ w oknie regionu na "end"."
      UWAGA: Śledzenie włókien dla FST zostanie przeprowadzone poprzez wybór nasion regionu 6 i tylko jednego z nasion podkorowych na sesję śledzenia (tj. region 6 i jądro ogoniaste, następnie region 6 i skorupa, a na końcu region 6 i gałka blada).
      1. Wykonaj śledzenie światłowodu zgodnie z opisem w kroku 4.4 dla każdej kombinacji.
  4. Wykonaj śledzenie światłowodu dla każdej z powyższych kombinacji.
    1. W oknie "Opcje" ustaw parametry śledzenia jako: indeks zakończenia qa równy 0,08, próg kątowy 75, rozmiar kroku 0,675, wygładzanie 0,2, minimalna długość 20 mm i maksymalna długość 200 mm. Wybierz orientację ziarna jako "Wszystkie", pozycję początkową jako "Subwoksel" i losowo podziel rozstawienie jako "Włączone". Użyj interpolacji w kierunku trójliniowym z algorytmem śledzenia usprawnionego (Euler). Dla każdej kombinacji powyższych regionów wybierz "Uruchom śledzenie" w oknie "Trakty światłowodowe".
      UWAGA: Ze względu na losowy charakter śledzenia, wyraźne "fałszywe włókna" są identyfikowane i selektywnie usuwane, a obszary unikania są rysowane ręcznie jako "Nowy Region".
  5. Rejestr afiniczny: wyodrębniony mózgiem skan 3D MP-RAGE z T1 dostarczony w zestawie danych Human Connectome Project do danych dyfuzyjnych za pomocą funkcji "Slices -> Insert T1/T2 Images" programu DSI-Studio. Wygeneruj renderowanie powierzchni mózgu, wybierając opcję "Plasterki -> Dodaj powierzchnię izolacyjną". Użyj "progu" 665.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Wyniki

Kompleks SMA znajduje się w tylnej części zakrętu czołowego górnego. Granice kompleksu SMA wyznaczają: bruzda przedcentralna z tyłu, bruzda czołowa górna od dołu i z boku oraz bruzda obręczy od dołu i od strony przyśrodkowej18. Kompleks SMA składa się z dwóch części: przedniej części SMA (pre-SMA) z przodu oraz właściwej SMA z tyłu18. Między tymi dwiema częściami istnieją różnice w zakresie połączeń istoty białej oraz funkcji

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Dyskusja

Znaczenie i techniki badawcze dla szlaków istoty białej

Kora mózgowa jest akceptowana jako główna struktura neuronalna związana z 2,5 milionami lat życia człowieka. Około 20 miliardów neuronów rozdzieliło się na różne części w oparciu o morfologiczną i komórkową specyfikację40. Architektura każdej z tych części kory mózgowej została funkcjonalnie podgrupowana, taka jak zmysł sensomotoryczny i ruch, doświadczenie emocjonalne i złożone rozumowanie. Ustalono, że wszystkie zac...

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Oświadczenia

Autorzy deklarują brak konkurencyjnych interesów finansowych oraz brak źródeł finansowania i wsparcia, w tym sprzętu i leków.

Podziękowania

Dane zostały częściowo dostarczone przez Human Connectome Project, WU-Minn Consortium (główni badacze: David Van Essen i Kamil Ugurbil; 1U54MH091657), finansowane przez 16 instytutów i centrów NIH, które wspierają NIH Blueprint for Neuroscience Research; oraz przez McDonnell Center for Systems Neuroscience na Uniwersytecie Waszyngtońskim. Rysunki 2A i 2D zostały zreprodukowane za zgodą Rhoton collection57 (http://rhoton.ineurodb.org/?page=21899).

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
%4 Roztwór paraformaldehyduAFFYMETRIX, Inc.2046C208służy do mocowania
ZamrażarkaINSIGNANS-CZ70WH6służy do zamrażania
Panfield DissectorAESCULAPFD305służy do rozwarstwiania
Mikronożyczki chirurgiczneW. Lorenz04-4238służy do miscrodispreparu
Chirurgiczny Micro HookV. MuellerNL3785-009służy do miscrodissection
NOSZE DO MIKRONACZYŃ/ DILATORW. Lorenz04-4324używany do błędnej sekcji
Emax2 SC 2000 Konsola elektrycznaAnspach CompaniesSC2102używany do kraniatomii
Zestaw wiertełAnspach CompaniesNS-CZ70WH6używany do kraniatomii
20-1000 mikroskop operacyjnyMoeller-Wedel, NiemcyFS 4-20używany do miscrodissection
Canon EOS 550D 18 MP CMOS APS-C Cyfrowa lustrzanka jednoobiektywowa Aparat fotograficznyCanon Inc.DS126271służy do robienia zdjęć
Obiektyw makro EF 100 mm f/2.8L IS USM CanonInc.4657A006służy do robienia zdjęć
MR-14EX II Macro Ring Lite (Flash)Canon Inc.9389B002używany do robienia zdjęć
StatywLino Manfrotto322RC2używany do robienia zdjęć
MAYFIELD Infinity Skull ClampIntegra Inc.A0077służy do mocowania głowicy
Zmodyfikowany skaner Skrya 3T "Connectome"Siemens Company, Inc.A911IM-MR-15773-P1-4A00służy do skanowania DTI
XstereO PlayerJurij GołubinskyWersja 3.6(22)służy do tworzenia anaglifów
EF-S 18-55mm f/3.5-5.6 IS II SLR ObiektywCanon Inc.2042B002używany do robienia zdjęć
Skalpel6B INVENT7-104-Lsłuży do wykonywania nacięć
Kompaktowy reduktor prędkościAnspach CompaniesCSR60służy do wykonywania otworu na zadziory
14 mm Perforator czaszkiAnspach CompaniesCPERF-14-11-3Fsłuży do wykonywania otworu na zadziory
2 mm x 15,6 mm Frezarka karbowanaAnspach CompaniesA-CRN-Msłuży do wykonywania kraniotomii
2,1 mm Frezy w kształcie szpilkiAnspach Companies03.000.130Sużywane do wykonywania kraniotomii

Bibliografia

  1. Nieuwenhuys, R., Voogd, J., Huijzen, C. V. The Human Central Nervous System. , 4th edi, 620-649 (2008).
  2. Catani, M., Acqua, F., Vergani, F., Malik, F., Hodge, H. Short frontal lobe connections of the human brain. Cortex. 48, 273-291 (2012).
  3. Duffau, H., Capelle, L. Preferential brain locations of low-grade gliomas. Cancer. 100 (12), 2622-2626 (2004).
  4. Yasargil, M. G., Türe, U., Yasargil, D. C. Impact of temporal lobe surgery. J Neurosurg. 101 (05), 725-738 (2004).
  5. Türe, U., Yasargil, M. G., Friedman, A. H., Al-Mefty, O. Fiber dissection technique: lateral aspect of the brain. Neurosurgery. 47 (2), 417-427 (2000).
  6. Burger, P. C., Heinz, E. R., Shibata, T., Kleihues, P. Topographic anatomy and CT correlations in the untreated glioblastoma multiforme. J Neurosurg. 68 (5), 698-704 (1998).
  7. New concepts in surgery of WHO grade II gliomas: Functional brain mapping, connectionism and plasticity-a review. J Neurooncol. 79 (1), 77-79 (2006).
  8. White matter connections of the supplementary motor area in humans. J Neurol Neurosurg Psychiatry. 85 (12), 1377-1385 (2014).
  9. Luppino, G., Matelli, M., Camarda, R., Rizzolatti, G. Corticocortical connections of area F3(SMA-proper) and area F6(pre-SMA)in the macaque monkey. J. Comp.Neurol. 338, 114-140 (1993).
  10. Akkal, D., Dum, R. P., Strick, P. L. Supplementary motor area and presupplementary motor area: targets of basal ganglia and cerebellar output. J. Neurosci. 27, 10659-10673 (2007).
  11. Behrens, T. E. Non-invasive mapping of connections between human thalamus and cortex using diffusion imaging. Nat. Neurosci. 6, 750-757 (2003).
  12. Potgieser, A. R. E., de Jong, B. M., Wagemakers, M., Hoving, E. W., Groen, R. J. M. Insights from the supplementary motor area syndrome in balancing movement initiation and inhibition. Frontiers in Human Neuroscience. 28 (8), 960(2014).
  13. Yagmurlu, K., Vlasak, A. L., Rhoton Jr, A. L. Three-Dimensional Topographic Fiber Tract Anatomy of the Cerebrum. Neurosurgery. 2, epub 274-305 (2015).
  14. Fernández-Miranda, J. C., Rhoton Jr,, L, A., Álvarez-Linera, J., Kakizawa, Y., Choi, C., de Oliveira, E. P. Three-dimensional microsurgical and tractographic anatomy of the white matter of the human brain. Neurosurgery. 62 (6 Suppl 3), 989-1026 (2008).
  15. Couzin, J. Crossing a frontier: Research on the dead. Science. 299 (5603), 29-30 (2003).
  16. University of Minnesota. Research Ethics. , Available from: https://www.ahc.umn.edu/img/assets/26104/Research Ethics/pdf (2016).
  17. Ludwig, E., Klingler, J. Der innere Bau des Gehirns dargestellt auf Grund makroskopischer Präparate. The inner structure of the brain demonstrated on the basis of macroscopical preparations. Atlas cerebri humani. , 1-36 (1956).
  18. Bozkurt, B. The Microsurgical and Tractographic Anatomy of the Supplementary Motor Area Complex in Human. J World Neurosurg. 95, 99-107 (1956).
  19. Lehericy, S. 3-D diffusion tensor axonal tracking shows distinct SMA and pre-SMA projections to the human striatum. Cereb Cortex. 14, 1302-1309 (2004).
  20. Duffau, H. Intraoperative mapping of the cortical areas involved in multiplication and subtraction: an electrostimulation study in a patient with a left parietal glioma. J Neurol Neurosurg Psychiatry. 73 (6), 733-738 (2002).
  21. Kinoshita, M. Role of fronto-striatal tract and frontal aslant tract in movement and speech: an axonal mapping study. Brain Struct Funct. 220 (6), 3399-3412 (2015).
  22. Shimizu, S. Anatomic dissection and classic three-dimensional documentation: a unit of education for neurosurgical anatomy revisited. Neurosurgery. 58 (5), E1000(2006).
  23. Connectome Database. , Available from: https://db.humanconnectome.org (2016).
  24. Moeller, S. Multiband multislice GE-EPI at 7 tesla, with 16-fold acceleration using partial parallel imaging with application to high spatial and temporal whole-brain fMRI. Magn Reson Med. 63 (5), 1144-1153 (2010).
  25. Feinberg, D. A. Multiplexed Echo Planar Imaging for sub-second whole brain fMRI and fast diffusion imaging. PLoS One. 5, e15710(2010).
  26. Setsompop, K. Blipped-controlled aliasing in parallel imaging for simultaneous multislice echo planar imaging with reduced g-factor penalty. Magn Reson Med. 67 (5), 1210-1224 (2012).
  27. Xu, J. Highly accelerated whole brain imaging using aligned-blipped-controlled-aliasing multiband EPI. In Proceedings of the 20th Annual Meeting of ISMRM. 20, 2306(2012).
  28. Glasser, M. F. The minimal preprocessing pipelines for the Human Connectome Project. Neuroimage. 80, 105-124 (2013).
  29. Free Surfer Software Suite. Harvard University. , Available from: http://surfer.nmr.mgh.harvard.edu (2016).
  30. FSL. Software Library. , Available from: http://fsl.fmrib.ox.ac.uk (2016).
  31. Jenkinson, M., Bannister, P. R., Brady, J. M., Smith, S. M. Improved optimization for the robust and accurate linear registration and motion correction of brain images. NeuroImage. 17 (2), 825-841 (2002).
  32. Andersson, J. L., Skare, S., Ashburner, J. How to correct susceptibility distortions in spin-echo echo-planar images: application to diffusion tensor imaging. NeuroImage. 20 (2), 870-888 (2003).
  33. Andersson, J., Xu, J., Yacoub, E., Auerbach, E., Moeller, S., Ugurbil, K. A comprehensive Gaussian process framework for correcting distortions and movements in diffusion images. In Proceedings of the 20th Annual Meeting of ISMRM. 20, 2426(2012).
  34. DSI Sudio. , Available from: http://dsi-studio.labsolver.org (2016).
  35. Yeh, F. C., Wedeen, V. J., Tseng, W. Y. Generalized q-sampling imaging. IEEE Trans Med Imaging. 29 (9), 1626-1635 (2010).
  36. Makris, N. Segmentation of subcomponents within the superior longitudinal fascicle in humans: a quantitative, in vivo DT-MRI study. Cereb Cortex. 15 (6), 854-869 (2005).
  37. Fernández-Miranda, J. C., Rhoton, A. L. Jr, Kakizawa, Y., Choi, C., Alvarez-Linera, J. The claustrum and its projection system in the human brain: a microsurgical and tractographic anatomical study. J Neurosurg. 108 (4), 764-774 (2008).
  38. Maier, M. A., Armand, J., Kirkwood, P. A., Yang, H. W., Davis, J. N., Lemon, R. N. Differences in the corticospinal projection from primary motor cortex and supplementary motor area to macaque upper limb motoneurons:an anatomical and electrophysiological study. Cereb. Cortex. 12, 281-296 (2002).
  39. Picard, N., Strick, P. L. Imaging the premotor areas. Curr. Opin. Neurobiol. 11, 663-672 (2001).
  40. Pakkenberg, B., Gundersen, H. J. G. Neocortical neuron number in humans: effect of sex and age. Journal of Comparative Neurology. 384 (2), 312-320 (1997).
  41. Geschwind, N. Disconnexion syndromes in animals and man. Brain. 88 (3), 237-294 (1965).
  42. Geschwind, N. Disconnexion syndromes in animals and man. Brain. 88 (3), 585-644 (1965).
  43. Goldman-Rakic, P. S. Topography of cognition: parallel distributed networks in primate association cortex. Annu Rev Neurosci. 11 (1), 137-156 (1988).
  44. Mesulam, M. M. From sensation to cognition. Brain. 121 (6), 1013-1052 (1998).
  45. Mesulam, M. Large-scale neurocognitive networks and distributed processing for attention, language, and memory. Ann Neurol. 28 (5), 597-613 (1990).
  46. Schmahmann, J. D., Pandya, D. N. Fiber pathways of the brain. 8, Oxford University Press. Oxford. 393-409 (2006).
  47. Bammer, R., Acar, B., Moseley, M. E. In vivo MR tractography using diffusion imaging. Eur J Radiol. 45 (3), 223-234 (2003).
  48. Catani, M., Howard, R. J., Pajevic, S., Jones, D. K. Virtual in vivo interactive dissection of white matter fasciculi in the human brain. Neuroimage. 17 (1), 77-94 (2002).
  49. Lin, C. P., Wedeen, V. J., Chen, J. H., Yao, C., Tseng, W. Y. I. Validation of diffusion spectrum magnetic resonance imaging with manganese-enhanced rat optic tracts and ex vivo phantoms. Neuroimage. 19 (3), 482-495 (2003).
  50. Bello, L., Acerbi, F., Giussani, C., Baratta, P., Taccone, P., Songa, V. Intraoperative language localization in multilingual patients with gliomas. Neurosurgery. 59 (1), 115-125 (2006).
  51. Bernstein, M. Subcortical stimulation mapping. J Neurosurg. 100 (3), 365(2004).
  52. Ackermann, H., Riecker, A. The contribution(s) of the insula to speech production: a review of the clinical and functional imaging literature. Brain Struct Funct. 214, 419-433 (2010).
  53. Krainik, A. Role of the healthy hemisphere in recovery after resection of the supplementary motor area. Neurology. 62, 1323-1332 (2004).
  54. Ford, A., McGregor, K. M., Case, K., Crosson, B., White, K. D. Structural connectivity of Broca's area and medial frontal cortex. Neuroimage. 52, 1230-1237 (2010).
  55. Catani, M., Mesulam, M. M., Jakobsen, E., Malik, F., Martersteck, A., Wieneke, C., Thompson, C. K., Thiebaut de Schotten, M., Dell'Acqua, F., Weintraub, S., Rogalski, E. A novel frontal pathway underlies verbal fluency in primary progressive aphasia. Brain. 136, 2619-2628 (2013).
  56. Rech, F., Herbet, G., Moritz-Gasser, S., Duffau, H. Disruption of bimanual movement by unilateral subcortical electrostimulation. Human Brain Mapping Annual Meeting. 35 (7), 3439-3445 (2014).
  57. The Rhoton Collection. Login page. , Available from: http://rhoton.ineurodb.org/?page=21899 (2016).

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Przedruki i uprawnienia

Tagi

Obrazowanie tensora dyfuzjiszlaki istoty bia ejp czek czo owy sko nyp czek pod u ny g rnyw kna komisuralnew kna projekcyjnetraktografia MRI
Ponowne zbadanie połączeń światłowodowych dodatkowego obszaru motorycznego: metodologia rozwarstwiania włókien, DTI i dokumentacja trójwymiarowa
Skontaktuj się z nami
Poleć bibliotece

Prywatność

Warunki korzystania z usługi

Zasady

Prawa autorskie © 2026 MyJoVE Corporation. Wszelkie prawa zastrzeżone.