Ostatnie postępy w genetyce i technologiach biologii systemowej przyczyniły się do lepszego zrozumienia biologii pasożytów malarii na poziomie molekularnym. Jednak skuteczne cele dla pasożytów malarii w celu opracowania szczepionek i chemioterapii są nadal ograniczone. Wynika to w dużej mierze z niedostępności odpowiednich i praktycznych modeli zakażeń in vivo dla ludzkich gatunków Plasmodium, w szczególności dla P. falciparum i P. vivax. W związku z tym gatunki malarii gryzoni są szeroko stosowane jako praktyczne alternatywne modele in vivo dla szczepionek przeciwko malarii, celowania w leki, odpowiedzi immunologicznej i badań charakterystyki funkcjonalnej konserwatywnych genów Plasmodiumspp. Rzeczywiście, modele malarii u gryzoni okazały się nieocenione, zwłaszcza w badaniu transmisji komarów i biologii wątroby, a także były niezbędne w badaniach immunologicznych. Istnieją jednak rozbieżności w metodach stosowanych do oceny fenotypów transgenicznych i dzikich pasożytów bezpłciowych i płciowych we krwi typu dzikiego. Przykładami tych rozbieżności są wybór zakażenia dożylnego vs. dootrzewnowego u gryzoni z pasożytami we krwi oraz ocena biczowania gamet u samców. W niniejszym artykule szczegółowo opisujemy znormalizowane metody eksperymentalne do oceny fenotypów bezpłciowych i płciowych stadiów krwi u transgenicznych pasożytów eksprymujących gen reporterowy lub gatunki pasożytów malarii gryzoni typu dzikiego. Szczegółowo opisujemy również metody oceny fenotypów stadiów pasożyta malarii (gamety, ookinety, oocysty i sporozoity) wewnątrz wektorów komarów Anopheles. Metody te są tutaj szczegółowo opisane i uproszczone dla śmiertelnych i nieśmiertelnych szczepów P. berghei i P. yoelii, ale mogą być również stosowane z pewnymi dostosowaniami do gatunków malarii gryzoni P. chabaudi i P. vinckei.