Artykuł metodologiczny

Wytwarzanie mikrosfer polimerowych do zastosowań w rezonatorach optycznych i laserach

DOI:

10.3791/55934

⸱

2 czerwca 2017

 ,  ,  ,  , 
1Faculty of Pure and Applied Sciences, University of Tsukuba, 2Tsukuba Research Center for Interdisciplinary Materials Science (TIMS), University of Tsukuba, 3Center for Integrated Research in Fundamental Science and Technology (CiRfSE), University of Tsukuba

W tym artykule

Podsumowanie

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Przedstawiono protokoły syntezy mikrosfer z polimerów, manipulacji mikrosferami i pomiarów mikrofotoluminescencji.

Streszczenie

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Ten artykuł opisuje trzy metody przygotowania mikrosfer fluorescencyjnych składających się z π sprzężonych lub niesprzężonych polimerów: dyfuzja pary, wytrącanie granicy faz i mini-emulsja. We wszystkich metodach dobrze zdefiniowane kule o rozmiarach mikrometrowych uzyskuje się z procesu samomontażu w roztworze. Metoda dyfuzji parowej może prowadzić do uzyskania kul o najwyższej kulistości i gładkości powierzchni, jednak rodzaje polimerów zdolnych do tworzenia tych kulek są ograniczone. Z kolei w metodzie miniemulsji mikrosfery mogą być wytwarzane z różnego rodzaju polimerów, nawet z polimerów wysoce krystalicznych o współpłaszczyznowym, π sprzężonym szkielecie. Właściwości fotoluminescencyjne (PL) pojedynczych izolowanych mikrosfer są niezwykłe: PL jest zamknięta wewnątrz kulek, rozchodzi się na obwodzie kulek poprzez całkowite wewnętrzne odbicie na granicy faz polimer/powietrze i sama interferuje, pokazując ostre i okresowe linie rezonansowe PL. Te tryby rezonansowe są tak zwanymi "trybami galerii szeptanej" (WGM). W pracy pokazano, w jaki sposób można mierzyć WGM PL z pojedynczych izolowanych kul z wykorzystaniem techniki mikrofotoluminescencji (μ-PL). W tej technice skupiona wiązka laserowa naświetla pojedynczą mikrosferę, a luminescencja jest wykrywana przez spektrometr. Następnie stosuje się technikę mikromanipulacji do łączenia mikrosfer jedna po drugiej i demonstrowania propagacji PL między sferami i konwersji koloru ze sprzężonych mikrosfer po wzbudzeniu na obwodzie jednej sfery i wykryciu PL z drugiej mikrosfery. Techniki te, μ-PL i mikromanipulacja, są przydatne w eksperymentach nad zastosowaniem mikrooptyki z wykorzystaniem materiałów polimerowych.

Wprowadzenie

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Nano/mikrocząsteczki polimerowe są szeroko stosowane do różnych zastosowań, w tym jako nośnik katalizatora, wypełniacze chromatografii kolumnowej, środki dostarczające leki, sondy fluorescencyjne do śledzenia komórek, media optyczne i tak dalej1,2,3,4,5,6,7,8,9. W szczególności polimery sprzężone π mają naturalne właściwości luminescencyjne i przewodzące ładunek, które są korzystne dla zastosowań optycznych, elektronicznych i optoelektronicznych wykorzystujących kule polimerowe10,11,12,13,14, zwłaszcza zastosowania laserowe wykorzystujące miękkie materiały organiczne15,16,17. Na przykład trójwymiarowa integracja kul o średnicy kilkuset nanometrów tworzy kryształy koloidalne, które pokazują fotoniczne przerwy energetyczne przy określonej długości fali18,19. Gdy światło jest zamknięte w periodycznej strukturze międzysferycznej, działanie laserowe pojawia się w środku pasma zaporowego. Z drugiej strony, gdy rozmiar kul wzrasta do skali kilku mikrometrów, światło jest zatrzymywane wewnątrz pojedynczej mikrosfery poprzez całkowite wewnętrzne odbicie na granicy faz polimer/powietrze20. Rozchodzenie się fali świetlnej na maksymalnym obwodzie powoduje zakłócenia, prowadzące do pojawienia się trybu rezonansowego z ostrymi i okresowymi liniami emisyjnymi. Te tryby optyczne są tak zwanymi "trybami galerii szeptanej" (WGM). Termin "galeria szepcząca" wywodzi się z katedry św. Pawła w Londynie, gdzie fale dźwiękowe rozchodzą się po obwodzie ściany, pozwalając na usłyszenie szeptów przez osobę znajdującą się po drugiej stronie galerii. Ponieważ długość fali światła mieści się w skali submikrometrowej, która jest znacznie mniejsza niż fale dźwiękowe, tak duża kopuła nie jest konieczna dla WGM światła: maleńkie, dobrze zdefiniowane naczynia w skali mikrometra, takie jak mikrosfery, mikrodyski i mikrokryształy, spełniają warunki WGM.

Równanie 1 jest prostą formą warunku rezonansowego WGM21:

nπd = lλ (1)

gdzie n to współczynnik załamania światła rezonatora, d to średnica, l to liczba całkowita, a λ to długość fali światła. Lewa część (1) to długość drogi optycznej przez propagację jednego okręgu. Gdy ścieżka optyczna pokrywa się z całkowitą wielokrotnością długości fali, występuje rezonans, podczas gdy przy drugiej długości fali fala świetlna zmniejsza się po zaokrągleniu.

Ten artykuł przedstawia kilka eksperymentalnych metod przygotowania mikrosfer dla rezonatorów WGM z sprzężonych polimerów w roztworze: dyfuzja pary22,23,24,25,26,27,28,29,30, mini-emulsion31, oraz wytrącanie interfejsu32. Każda metoda ma unikalne cechy; Na przykład metoda dyfuzji parowej pozwala na uzyskanie dobrze zdefiniowanych mikrosfer o bardzo wysokiej sferyczności i gładkich powierzchniach, ale tylko polimery o niskiej krystaliczności mogą tworzyć te mikrosfery. Z drugiej strony, w przypadku metody mini-emulsji, różne rodzaje sprzężonych polimerów, w tym polimery wysokokrystaliczne, mogą tworzyć kule, ale morfologia powierzchni jest gorsza niż uzyskana metodą dyfuzji parowej. Metoda wytrącania granicy faz jest preferowana do tworzenia mikrosfer z niesprzężonych polimerów domieszkowanych barwnikiem. We wszystkich przypadkach wybór rozpuszczalnika i nierozpuszczalnika odgrywa ważną rolę w tworzeniu morfologii sferycznej.

W drugiej połowie tego artykułu przedstawione są techniki μ-PL i mikromanipulacji. W technice μ-PL mikrosfery są rozpraszane na podłożu, a skupiona wiązka laserowa, przez soczewkę mikroskopu, jest używana do naświetlania pojedynczej izolowanej mikrosfery24. Wygenerowany PL z kuli jest wykrywany przez spektrometr przez soczewkę mikroskopu. Przesunięcie stolika próbki może zmienić położenie punktu wzbudzenia. Punkt detekcji jest również zmienny poprzez przechylenie optyki kolimatora wiązki lasera wzbudzającego względem osi optycznej ścieżki detekcji28,32. Do zbadania propagacji światła międzysferowego i konwersji długości fali można użyć techniki mikromanipulacji32. Aby połączyć kilka mikrosfer o różnych właściwościach optycznych, możliwe jest podniesienie jednej kuli za pomocą mikroigły i umieszczenie jej na innej kuli. W połączeniu z technikami mikromanipulacji i metodą μ-PL można przeprowadzać różne pomiary optyczne za pomocą sprzężonych kulek polimerowych, które są przygotowywane prostą metodą samoorganizacji. Ten artykuł wideo będzie przydatny dla czytelników, którzy chcą używać miękkich materiałów polimerowych do zastosowań optycznych.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Protokół

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

1. Protokoły wytwarzania mikrosfer polimerowych

  1. Metoda dyfuzji pary
      Rozpuścić 2 mg sprzężonych polimerów, takich jak P1 (poli[(9,9-dioktylofluoren-2,7-diyl)-alt-(5-oktylotieno[3,4-c]pirol-4,6-dion-1,3-diyl)])28 i P2 (poli[(N-(2-heptylundecyl)karbazol-2,7-diyl)-alt-(4,8-bis[(dodecyl)karbonylo]benzo[1,2-b:4,5-b′]ditiofen-2,6-diyl)])28, w 2 ml chloroformu (dobry rozpuszczalnik) w 5-mililitrowej fiolce.
    2. Umieścić 5 ml metanolu (ubogi rozpuszczalnik) w fiolce o pojemności 50 ml.
    3. Umieścić 5 ml fiolkę zawierającą roztwór chloroformu polimeru do 50 ml fiolki zawierającej metanol.
    4. Zakryć fiolkę o pojemności 50 ml i przechowywać ją przez 3 dni w temperaturze 25 °C, aby umożliwić wytrącenie się mikrosfer polimerowych.
  2. Metoda mini-emulsji
    1. Rozpuścić 5 mg sprzężonych polimerów, takich jak poli[9,9-di-n-oktylofluorenylo-2,7-diyl] (PFO) i poli[2-metoksy-5-(3',7'-dimetylocyloksy)-1,4-fenylenwinylen] (MDMOPPV), w 1 ml chloroformu.
    2. Rozpuść 30 mg (~50 mM) dodecylosiarczanu sodu (SDS) w 2 ml wody dejonizowanej.
    3. Dodać 100 μl roztworu chloroformu polimeru do 2 ml wody zawierającej SDS.
    4. Mieszaninę chloroformu i wody energicznie mieszać za pomocą ultraszybkiego homogenizatora przy 30 000 obr./min przez 2 minuty, aby zemulgować roztwór.
    5. Przechowywać przez 1 dzień bez zakręcania fiolki w celu odparowania chloroformu.
    6. Odwirować dyspersję w probówce mikrowirówkowej o pojemności 1,5 ml przez 5 minut przy 2 200 x g. Usunąć sklarowany nad osadem roztwór wodny zawierający SDS.
    7. Dodaj 2 ml wody dejonizowanej i energicznie wstrząśnij.
    8. Powtórz kroki 1.2.6 i 1.2.7 trzy razy, aby wypłukać resztki SDS.
  3. Metoda wytrącania granicy faz
  4. Rozpuścić 200 μg polistyrenu (PS) i 10 μg barwnika fluorescencyjnego (bor, dipirowina, BODIPY) w 0,2 ml tetrahydrofuranu (THF).
  5. Delikatnie wlej roztwór THF na 1 ml warstwy wody.
  6. Przechowywać dwuwarstwowy oddzielony THF/wodę przez 6 godzin bez zakręcania fiolki, aby umożliwić wytrącenie się mikrosfer polimerowych.

2. Pomiar mikrofotoluminescencji (μ-PL)

  1. Przygotowanie próbki
    1. Rozcieńczyć zawiesinę mikrosfer przygotowaną w sekcji 1 w roztworze niezawierającym rozpuszczalnika (tj. w metanolu lub wodzie dejonizowanej).
    2. Odlać spinowo jedną kroplę (20-30 μl) rozcieńczonej zawiesiny mikrosfer na podłoże kwarcowe za pomocą powlekarki spinowej (zwykle 2,000 obr./min przez 50 s).
    3. Powstałą odlewaną folię należy wysuszyć na powietrzu, aż rozpuszczalniki całkowicie odparują (~5 min).
  2. Konfiguracja eksperymentalna
    1. Umieść podłoże kwarcowe (15 x 15 x 0,5 mm3) na stoliku na próbkę mikroskopu optycznego.
    2. Znajdź dobrze zdefiniowane mikrosfery, które są odizolowane od innych sfer i odpowiednie do pomiaru μ-PL.
    3. Wybierz laser (np. długość fali, fala ciągła lub impuls, czas napromieniowania, całkowanie itp.).
    4. Wybierz powiększenie obiektywu.
  3. Pomiary
    1. Użyj skupionej wiązki laserowej, aby napromieniować mikrosferę. Użyj następującego stanu lasera: laser cw lub impulsowy o długości fali wzbudzenia (λex) 405 nm (cw), 450 nm (cw), 355 nm (laser impulsowy; częstotliwość, 1 kHz; czas trwania impulsu, 7 ns) i 470 nm (laser impulsowy; częstotliwość, 2,5 MHz; czas trwania impulsu, 70 ps).
    2. Zarejestruj widmo PL w wzbudzonym miejscu za pomocą spektrometru z siatką 300 lub 1,200 rowków mm-1.
    3. Zrób zdjęcie fluorescencyjne.
    4. Zmień miejsce wzbudzenia, przesuwając stolik na próbkę.
    5. Zmień miejsce detekcji, przechylając kolimator (jeśli to konieczne).

3. Technika mikromanipulacji

  1. Manipulacja mikrosferami
    1. Ustaw podłoże kwarcowe, na którym unieruchomione są mikrosfery, na stoliku próbki mikroskopu optycznego.
    2. Znajdź dobrze zdefiniowaną mikrosferę odpowiednią do pomiaru μ-PL.
    3. Umieść plastikową mikroigłę na aparacie do mikromanipulacji.
    4. Przesuń mikroigłę za pomocą joysticka sterowanego komputerowo, aby podnieść mikrosferę.
    5. Przesuń mikrosferę i połącz ją z inną mikrosferą.
    6. Zmierz μ-PL od podłączonej mikrosfery.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Wyniki

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Rysunek 1 przedstawia schematyczne przedstawienia metody dyfuzji parowej (a), metody mini-emulsji (b) i metody wytrącania granicy faz (c). W przypadku metody dyfuzji parowej (Rysunek 1a), fiolkę o pojemności 5 ml zawierającą roztwór polimerówCHCl 3 (0,5 mg mL-1, 2 ml) umieszczono w fiolce o pojemności 50 ml zawierającej 5 ml substancji niebędącej rozpuszczalnikiem, takiej jak MeOH. Zewnętrzna fiolka została zakryta, a...

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Dyskusja

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Wybór dobrego rozpuszczalnika i bezrozpuszczalnika jest bardzo ważny dla samoorganizacji dobrze zdefiniowanych mikrosfer. Jeśli rozpuszczalność polimeru jest zbyt wysoka, wytrącanie się nie nastąpi. Ogólnie rzecz biorąc, polimery sprzężone z π są hydrofobowe, dlatego w metodzie dyfuzji parowej często stosuje się polarne nierozpuszczalniki, takie jak MeOH, acetonitryl i aceton, aby zminimalizować energię powierzchniową wymaganą do utworzenia kulistego kształtu. Metoda wytrącania granicy faz jest często stosowana do wytwar...

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Oświadczenia

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Autorzy deklarują brak sprzecznych interesów finansowych.

Podziękowania

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Ta praca była częściowo wspierana przez KAKENHI (25708020, 15K13812, 15H00860, 15H00986, 16H02081) z JSPS/MEXT Japan, Asahi Glass Foundation i University of Tsukuba Inicjatywa przedstrategiczna "Zespół światła z materią i życiem."

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
polistyrenAldrich132427-25G
dodecylosiarczan soduKanto Kagaku372035-31
tetrahydrofuranWako206-08744
chloroformWako038-18495
metanolWako139-13995
Poli(9,9-di-n-oktylofluorenylo-2,7-diyl)Aldrich571652-500MG
Poli[2-metoksy-5-(3′,7′-dimetyloctyloksy)-1,4-fenylenwinylen] (MDMOPPV)Aldrich546461-1G
poli[(9,9-dioktylofluoren-2,7-diylo)-alt-(5-oktylotieno[3,4-c]pirol-4,6-dion-1,3-diyl)] (P1)syntetyzowany-odniesienie28
poli[(N-(2-heptylundecyl)karbazol-2,7-diyl)-alt-(4,8-bis[(dodecylo)karbonylo]benzo[1,2-b:4,5-b′]ditiofen-2,6-diyl)] (P2)syntetyzowanyreferencyjny 28
barwnik fluorescencyjny (bor, dipiryna; BODIPY)syntetyzowany-referencyjny32
Mikroskop optycznyNiconEclipse LV-N
laser_405 nmHutechDH405-10-5
SpektrometrLambda VisionLV-MC3/T
HomogenizatorMicrotech NichionPhyscotron NS-360D
mikromanipulacja Szybkiewsparcie Quick Pro QP-3RH

Bibliografia

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Ford, W. T., Chandran, R., Turk, H. Catalysts Supported on Polymer Colloids. Pure Appl. Chem. 60 (3), 395-400 (1988).
  2. Chen, C. -W., Chen, M. -Q., Serizawa, T., Akashi, M. In Situ Synthesis And the Catalytic Properties of Platinum Colloids on Polystyrene Microspheres with Surface-Grafted Poly(N-isopropylacrylamide). Chem. Commun. , 831-832 (1998).
  3. Suzuki, K., Yumura, T., Mizuguchi, M., Tanaka, Y., Chen, C. -W., Akashi, M. Poly(N-isopropylacrylamide)-Grafted Silica as a Support of Platinum Colloids: Preparation Method, Characterization, and Catalytic Properties in Hydrogenation. J. Appl. Polym. Sci. 77, 2678-2684 (2000).
  4. Zhang, S., Chen, L., Zhou, S., Zhao, D., Wu, L. Facile Synthesis of Hierarchically Ordered Porous Carbon via in Situ Self-Assembly of Colloidal Polymer and Silica Spheres and Its Use as a Catalyst Support. Chem. Mater. 22, 3433-3440 (2010).
  5. Kataoka, K., Harada, A., Nagasaki, Y. Block Copolymer Micelles for Drug Delivery: Design Characterization And Biological Significance. Adv. Drug Deliv. Rev. 47, 113-131 (2001).
  6. Otsuka, H., Nagasaki, Y., Kataoka, K. P. EGylated Nanoparticles for Biological And Pharmaceutical Applications. Adv. Drug Deliv. Rev. 55, 403-419 (2003).
  7. Nishiyama, N., Kataoka, K. Current State, Achievements, And Future Prospects of Polymeric Micelles as Nanocarriers for Drug and Gene Delivery. Pharmacol. Ther. 112, 630-648 (2006).
  8. Velev, O. D., Kaler, E. W. In Situ Assembly of Colloidal Particles into Miniaturized Biosensors. Langmuir. 15 (11), 3693-3698 (1999).
  9. Techawanitchai, P., Yamamoto, K., Ebara, M., Aoyagi, T. Surface Design with Self-Heating Smart Polymers for On-Off Switchable Traps. Sci. Technol. Adv. Mater. 12, 044609(2011).
  10. Lange, U., Roznyatovskaya, N. V., Mirsky, V. M. Conducting Polymers in Chemical Sensors And Arrays. Anal. Chim. Acta. 614, 1-26 (2008).
  11. Rajesh, T., Kumar, D. Recent Progress in the Development of Nano-Structured Conducting Polymers/Nanocomposites for Sensor Applications. Sens. Actuators B. 136, 275-286 (2009).
  12. Wu, C., Szymanski, C., Cain, Z., McNeill, J. Conjugated Polymer Dots for Multiphoton Fluorescence Imaging. J. Am. Chem. Soc. 129, 12904-12905 (2007).
  13. Feng, L., Zhu, C., Yuan, H., Liu, L., Lv, F., Wang, S. Conjugated Polymer Nanoparticles: Preparation, Properties, Functionalization And Biological Applications. Chem. Soc. Rev. 42, 6620-6634 (2013).
  14. Pecher, J., Mecking, S. Nanoparticles of Conjugated Polymers. Chem. Rev. 110, 6260-6279 (2010).
  15. McGehee, M. D., Heeger, A. J. Semiconducting (Conjugated) Polymers as Materials for Solid-State Lasers. Adv. Mater. 12, 1655-1668 (2000).
  16. Samuel, I. D. W., Turnbull, G. A. Organic Semiconductor Lasers. Chem. Rev. 107, 1272-1295 (2007).
  17. Kuehne, A. J. C., Gather, M. C. Organic Lasers: Recent Developments on Materials, Device Geometries, and Fabrication Techniques. Chem. Rev. 116, 12823-12864 (2016).
  18. Furumi, S., Kanai, T., Sawada, T. Widely Tunable Lasing in a Colloidal Crystal Gel Film Permanently Stabilized by an Ionic Liquid. Adv. Mater. 23, 3815-3820 (2011).
  19. Mikosch, A., Ciftci, S., Kuehne, A. J. C. Colloidal Crystal Lasers from Monodisperse Conjugated Polymer Particles via Bottom-Up Coassembly in a Sol-Gel Matrix. ACS Nano. 10, 10195-10201 (2016).
  20. Oraevsky, A. N. Whispering-Gallery Waves. Quant Electron. 32 (5), 377-400 (2002).
  21. Yamamoto, Y. Spherical Resonators from π-Conjugated Polymers. Polym. J. 48, 1045-1050 (2016).
  22. Adachi, T., et al. Spherical Assemblies from π -Conjugated Alternating Copolymers: Toward Optoelectronic Colloidal Crystals. J. Am. Chem. Soc. 135, 870-876 (2013).
  23. Tong, L., et al. Tetramethylbithiophene in π-Conjugated Alternating Copolymers as an Effective Structural Component for the Formation of Spherical Assemblies. Polym. Chem. 5, 3583-3587 (2014).
  24. Tabata, K., et al. Self-Assembled Conjugated Polymer Spheres as Fluorescent Microresonators. Sci. Rep. 4, 5902(2014).
  25. Kushida, S., et al. Whispering Gallery Resonance from Self-Assembled Microspheres of Highly Fluorescent Isolated Conjugated Polymers. Macromolecules. 48, 3928-3933 (2015).
  26. Kushida, S., Braam, D., Lorke, A., Yamamoto, Y. Whispering Gallery Mode Photoemission From Self-Assembled Poly-Paraphenylenevinylene Microspheres. AIP Conf. Proc. ICCMSE. 1702, 090046(2015).
  27. Braam, D., et al. Optically Induced Mode Splitting in Self-Assembled, High Quality-Factor Conjugated Polymer Microcavities. Sci. Rep. 6, 19635(2016).
  28. Kushida, S., et al. Conjugated Polymer Blend Microspheres for Efficient Long-Range Light Energy Transfer. ACS Nano. 10, 5543-5549 (2016).
  29. Kushida, S., et al. Self-Assembled Polycarbazole Microspheres as Single-Component, White-Colour Resonant Photoemitters. RSC Adv. 6, 52854-52857 (2016).
  30. Aikyo, Y., et al. Enwrapping Conjugated Polymer Microspheres with Graphene Oxide Nanosheets. Chem. Lett. 45, 1024-1026 (2016).
  31. Landfester, K., et al. Semiconducting Polymer Nanospheres in Aqueous Dispersion Prepared by a Miniemulsion Process. Adv. Mater. 14, 651-655 (2002).
  32. Okada, D., et al. Color-Tunable Resonant Photoluminescence and Cavity-Mediated Multistep Energy Transfer Cascade. ACS Nano. 10, 7058-7063 (2016).
  33. Pecher, J., Mecking, S. Nanoparticles of Conjugated Polymers. Chem. Rev. 110, 6260-6279 (2010).
  34. Gather, M. C., Yun, S. H. Single-Cell Biological Lasers. Nat. Photon. 5, 406-410 (2011).
  35. Schubert, M., et al. Lasing within Live Cells Containing Intracelluler Optical Microresonators for Barcode-Type Cell Tagging and Tracking. Nano Lett. 15, 5647-5652 (2015).

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Przedruki i uprawnienia

Poproś o pozwolenie na ponowne wykorzystanie tekstu lub ilustracji tego artykułu JoVE

Poproś o pozwolenie

Tagi

mody szeptalnej galeriimetoda dyfuzji parmetoda miniemulsjiwytr canie na granicy faztechnika mikrofotoluminescencjitechnika mikromanipulacjiskaningowa mikroskopia elektronowaw a ciwo ci fotoluminescencyjne

Powiązane artykuły