Subskrypcja JoVE jest wymagana do oglądania tego materiału. Zaloguj się lub rozpocznij bezpłatny okres próbny.

Artykuł metodologiczny

Test zdolności retencyjnej mitochondriów Ca2+ i test obrzęku mitochondriów wywołany Ca2+

11.1K wyświetleń

⸱

DOI:

10.3791/56236

⸱

1 maja 2018

 ,  , 

W tym artykule

Podsumowanie

Ten protokół ma na celu opisanie metody badania krok po kroku zdolności zatrzymywania Ca2+ i wywołanego przez Ca2+ obrzęku mitochondriów izolowanych mitochondriów komórek SH-SY5Y.

Streszczenie

Produkcja ATP przez fosforylację oksydacyjną jest podstawową funkcją mitochondriów. Mitochondria u wyższych eukariontów również uczestniczą w cytozolowym buforowaniu Ca2 +, a produkcja ATP w mitochondriach może być pośredniczona przez wewnątrzmitochondrialne stężenie wolnego Ca2 +. Zdolność retencjiCa2+ można uznać za zdolność mitochondriów do zatrzymywania wapnia w macierzy mitochondrialnej. Nagromadzony wewnątrzkomórkowy Ca2 + prowadzi do przepuszczalności wewnętrznej błony mitochondrialnej, nazywanej otwarciem porów przejściowych przepuszczalności mitochondriów (mPTP), co prowadzi do wycieku cząsteczek o masie cząsteczkowej mniejszej niż 1,5 kDa. Obrzęk mitochondriów wywołany przez Ca2+ służy do wskazania otwarcia mPTP. Tutaj opisujemy dwa testy w celu zbadania zdolności zatrzymywania Ca2 + i obrzęku mitochondriów wywołanego przez Ca2 + w izolowanych mitochondriach. Po dodaniu określonych ilościCa2+ wszystkie kroki można wykonać w ciągu jednego dnia i zarejestrować za pomocą czytnika mikropłytek. W ten sposób te dwa proste i skuteczne testy można zastosować do oceny funkcji mitochondriów związanych z Ca2 +.

Wprowadzenie

Mitochondria są głównymi organami komórkowymi wytwarzającymi prawie 95% ATP wykorzystywanego w komórkach ssaków poprzez fosforylację oksydacyjną. Poinformowano, że sekwestrowane stężenie mikromolowe Ca2+ przez mitochondria, obecność ADP i nieorganiczny fosforan można wykorzystać do fosforylacji ADP do syntezy ATP1. Gdy stężenie cytozolowego Ca2 + przekracza próg, mitochondria mogą szybko pobierać Ca2 + i powoli go wypływać. W ten sposób funkcjonujące mitochondria mogą napływać do zwiększonego cytozolowego Ca2+. Niezależnie od udziału w fosforylacji oksydacyjnej, mitochondrialne Ca2 + biorą ....

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Protokół

1. Izolacja mitochondriów

UWAGA: Wszystkie roztwory i urządzenia powinny być wstępnie schłodzone do 0 - 4 °C i trzymane na lodzie.

  1. Wysiew: około 3 x 106 komórek SH-SY5Y na 10 cm naczynie do hodowli komórkowej. Hodowla komórek w zmodyfikowanym pożywce Eagle firmy Dulbecco o wysokiej zawartości glukozy z 10% płodową surowicą bydlęcą, penicyliną (100 U/ml)-streptomycyną (100 μg/ml). Utrzymywać przez noc w inkubatorze zawierającym 5%CO2 w temperaturze 37 °C.
    UWAGA: Do każdego testu izolacji potrzebne są co najmniej 1 - 2 x 107 komórek SH-SY5Y.
  2. Usuń pożywkę i umyj komórki około 1 ml l....

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Wyniki

Reprezentatywne wyniki pojemności retencji Ca2+:
Wyniki wyrażono jako wartości fluorescencji. Po dodaniu kolejnych pulsów Ca2+ (200 nmols/mg białka mitochondrialnego), fluorescencja wzrosła dwukrotnie powyżej poziomu bazowego w momencie otwarcia mPTP. Do izolowanych mitochondriów dodano 5 μM bongkrekatu (BKA), inhibitora indukowanego przez Ca2+ otwarcia mPTP, lub 1 μM atraktylosydy (ATR), aktywatora indukowanego przez Ca2+ otwarcia .......

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Dyskusja

Tutaj opisaliśmy prosty i skuteczny protokół testu zdolności zatrzymywania mitochondriów Ca2 + i testu obrzęku mitochondriów wywołanego Ca2 +.

W przypadku izolacji mitochondriów upewnij się, że wszystkie materiały i rurki są na lodzie, zwłaszcza podczas homogenizacji komórek. 0,25% trypsyna-EDTA może być również użyta do odłączenia komórek od naczynia na 5 minut w temperaturze 37 °C. Po 15 - 25 pociągnięciach należy obserwować nienaruszoną błonę komórkową pod mikroskopem .......

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Oświadczenia

X. Sun nadzorował eksperymenty. Wei Li przeprowadził eksperymenty. Chen Zhang i X. Sun napisali ten artykuł.

Podziękowania

To badanie było wspierane przez granty z grantu Wybitnego Naukowca z Shandong (JQ201421) oraz granty z NSFC (81371226).

....

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
Linia komórkowa SH-SY5YATCC (Globalne Centrum Zasobów Biologicznych)Numer ATCC: CRL-2266
Calcium green-5NLife Technologiesc-3737Ca2+-wiążące całkowite inhibitory proteazy zielonego barwnika fluorescencyjnego
Roche Molecular Biochemicals4693116001
homogenizator szklanyKimble Chase9885303002
glutaminianSigma-AldrichRES5063G-A7
jabłczanSigma-Aldrich46940-U
rotenonSigma-AldrichR8875
HEPESSigma-AldrichH3375
MgCl2Sigma-Aldrich00457
K2HPO4Sigma-AldrichV900050
KClSigma-AldrichP9541
CaCl2Sigma-AldrichV900266
Instrumenty błyskowe VarioskanThermo ScientificIC100E
BongkrekateBiovision1820-100
atraktylozydSigma-AldrichC4992
Dulbecco o wysokiej zawartości glukozy" s zmodyfikowana pożywka EagleHyclonSH300224,5 g/L glukozy, L-glutamina, bez pirogronianu sodu
płodowa surowica bydlęcaHyconSV30087
penicylinaSigma-AldrichP3032
streptomycynaInvitrogen11860-038
Zestaw do oznaczania BCAThermo ScientificNCI3225CH
PBSHyclonSH30256.01
Naczynie do hodowli komórkowych 10 cmNEST704001

Bibliografia

  1. Rossi, C. S., Lehninger, A. L. Stoichiometry of respiratory stimulation, accumulation of Ca++ and phosphate, and oxidative phosphorylation in rat liver mitochondria. J Biol Chem. 239 (11), 3971-3980 (1964).
  2. Gunter, T. E., Buntinas, L., Sparagna, G., Eliseev, R., Gunter, K.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Przedruki i uprawnienia

Przeglądaj więcej artykułów

Mitochondrialna retencja wapniaobrzęk wywołany wapniemizolacja mitochondriówspektrometria fluorescencyjnaanaliza z użyciem czytnika mikropłytekbarwnik wiążący wapńmitochondrialny przejście przepuszczalnościtraktowanie kwasem bongkrekikowymaktywacja atraktylosydemmedium z chlorkiem potasu