Method Article

G2-seq: Wysokoprzepustowa technika oparta na sekwencjonowaniu do identyfikacji późno replikujących się regionów genomu

DOI:

10.3791/56286

March 22nd, 2018

In This Article

Summary

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Opisujemy technikę łączenia cytometrii przepływowej i sekwencjonowania o wysokiej przepustowości w celu identyfikacji późno replikujących się regionów genomu.

Abstract

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Opracowano liczne techniki śledzenia postępu replikacji DNA w fazie S cyklu komórkowego. Większość z tych technik została ukierunkowana na wyjaśnienie miejsca i czasu rozpoczęcia duplikacji genomu, a nie jej zakończenia. Jednak bardzo ważne jest, abyśmy zrozumieli regiony genomu, które jako ostatnie zakończyły replikację, ponieważ regiony te cierpią z powodu podwyższonego poziomu pękania chromosomów i mutacji, a także są związane zarówno z chorobami, jak i starzeniem się. W tym miejscu opisujemy, w jaki sposób rozszerzyliśmy technikę, która została wykorzystana do monitorowania inicjacji replikacji, aby zamiast tego zidentyfikować te regiony genomu, które jako ostatnie zakończyły replikację. Podejście to opiera się na połączeniu cytometrii przepływowej i sekwencjonowania o wysokiej przepustowości. Chociaż niniejszy raport koncentruje się na zastosowaniu tej techniki do drożdży, podejście to można zastosować do dowolnych komórek, które można posortować w cytometrze przepływowym zgodnie z zawartością DNA.

Introduction

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Replikacja genomu eukariotycznego jest inicjowana w wielu odrębnych miejscach, zwanych początkami replikacji, z których widełki replikacyjne rozchodzą się w obu kierunkach (recenzowane w Fragkos et al., 20151). Początki różnią się zarówno pod względem czasu, jak i skuteczności wypalania, a także opracowano kilka technik monitorowania aktywności początkowej replikacji i wyjaśnienia przyczyn tej zmienności. Aktywność poszczególnych źródeł można wywnioskować na podstawie poziomów jednoniciowego DNA2, który tworzy się wokół aktywnego pochodzenia, lub za pomocą elektroforezy żelowej 2D do monitorowania określonych pr....

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Protocol

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

1. Przygotowanie komórek do sortowania metodą cytometrii przepływowej

  1. Zaszczepić 15 ml probówek zawierających po 8 ml bulionu YEPD w taki sposób, aby kultury osiągnęły gęstość 5 x 10 6 do 1,5 x 107 komórek na ml po nocnym wzroście (patrz uwaga do dyskusji 1).
  2. Odwirować komórki drożdży (1 400 x g, w temperaturze pokojowej lub 4 °C) w probówce wirówkowej z zakrętką o pojemności 15 ml na 5 minut, ponownie zawiesić komórki w 1,5 ml 70% etanolu i przenieść do probówki do mikrofugi o pojemności 1,6 ml, pozostawiając ją na 1 godzinę w temperaturze pokojowej lub co najmniej 3 godziny na lodzie (może być przechowywana w nieskończonoś....

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Results

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Użyliśmy opisanej powyżej procedury do identyfikacji miejsc późnej replikacji w pączkujących drożdżach. Przetestowanie tego podejścia przy użyciu znanego regionu późnej replikacji na sztucznym chromosomie dowiodło, że technika ta jest dokładna i wiarygodna. Nasze wyniki wykazały również biologiczne znaczenie terminowego zakończenia replikacji, pokazując, że późny region replikujący na chromosomie 7, który zidentyfikowaliśmy jako późną replikację na podstawie naszych wyników G2-seq, był tr.......

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Discussion

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Chociaż ta technika jest solidna i stosunkowo prosta, szczególną uwagę należy zwrócić na następujące kwestie:

(1) Zalecamy, aby kultury rosły przez co najmniej 12 godzin, zanim osiągną fazę logarytmiczną, ponieważ różnice ujawniają się w rozkładach cykli komórkowych, jeśli kultury są zbierane po osiągnięciu pożądanej gęstości zaledwie 4 godziny po inokulacji. Zakładamy, że rozkład cyklu komórkowego, który osiągnął względnie stabilną równowagę, lepiej reprezentuje "rzeczywisty" rozkład fazy log.......

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Disclosures

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Autorzy nie mają nic do ujawnienia.

Acknowledgements

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Ta praca była wspierana przez grant NIH GM117446 dla A.B.

....

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Materials

List of materials used in this article
NameCompanyCatalog NumberComments
Zestaw YeaStar Genomic DNAGenesee Scientific11-323
1 µ M SYTOX GreenThermoFisher57020zawiesić w 50 mM cytrynian sodu, pH
7,2 50 mM roztwór cytrynianu sodu, pH 7,2
RNazy (0,25 mg / ml)SigmaR65130,25 mg / ml RNaza A zawieszona w 50 mM cytrynianu sodu, pH 7,2, gotować roztwór RNazy przez 10 minut tylko przed pierwszym użyciem, a następnie przechowywać w temperaturze -20°
roztwór proteinazy K (20 mg / ml)ThermoFisher / Invitrogen25530-015zawiesić w 10 mM Tris, pH 7,5, 2 mM CaCl2, 50% glicerolu, przechowywać w temperaturze -20° C
Model 50 Sonic DismembratorFisher ScientificFB50A220
BD Biosciences FACSAria IIBD Biosciences644832
Kolumny Zymo-spin IIIZymo ResearchC1005
Zestaw testowy Qubit dsDNA HSThermoFisherQ32851
Fluorometr Qubit 3.0ThermoFisherQ33216
Covaris Model LE220 Skoncentrowany ultrasonografCovaris500219
Zestaw do przygotowania próbek Illumina TruSeq DNA LTIllumina15026486
Illumina HiSeq 2500IlluminaSY– 401– Oprogramowanie open source 2501
gsnap do wyrównywania/ Genentechhttp://research-pub.gene.com/gmap
roztwór

References

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Fragkos, M., Ganier, O., Coulombe, P., Mechali, M. DNA replication origin activation in space and time. Nat Rev Mol Cell Biol. 16, 360-374 (2015).
  2. Santocanale, C., Diffley, J. F. A Mec1- and Rad53-dependent checkpoint controls late-firing origins of DNA replication. Na....

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article

Request Permission

Tags

Late Replicating RegionsFlow CytometryHigh Throughput SequencingDNA ReplicationCell Cycle SortingGenomic DNA ExtractionYeast Genomic AnalysisSir2 DeacetylaseTY Element CappingSliding Window Analysis

Related Articles