Artykuł metodologiczny

Ocena procesu inwazji i migracji komórek: porównanie testu ran drapanych opartego na mikroskopie wideo i testu z komorą Boydena

DOI:

10.3791/56337

⸱

17 listopada 2017

 ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  , 
1UMR CNRS 5822 /IN2P3, IPNL, PRISME, Laboratoire de Radiobiologie Cellulaire et Moléculaire, Faculté de Médecine Lyon-Sud, Université Lyon 1, 2Département de Radiothérapie, Institut de Cancérologie de la Loire - Lucien Neuwirth, 3Hospices Civils de Lyon, Centre Hospitalier Lyon-Sud

* These authors contributed equally

W tym artykule

Podsumowanie

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

To badanie przedstawia dwie różne metody analizy inwazji i migracji komórek: test komory Boydena i test gojenia ran oparty na mikroskopie in vitro. Opisano protokoły tych dwóch eksperymentów oraz porównano ich zalety i wady.

Streszczenie

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Zdolność komórek nowotworowych do inwazji i migracji jest głównym czynnikiem przyczyniającym się do progresji i nawrotów raka. W wielu badaniach analizowano zdolności migracyjne i inwazyjne, aby zrozumieć, w jaki sposób rozprzestrzeniają się komórki nowotworowe, w celu opracowania nowych strategii leczenia. Analiza komórkowych i molekularnych podstaw tych zdolności doprowadziła do scharakteryzowania ruchliwości komórek oraz właściwości fizykochemicznych cytoszkieletu i mikrośrodowiska komórkowego. Przez wiele lat test z komorą Boydena i test ran drapanych były standardowymi technikami badania inwazji i migracji komórek. Jednak te dwie techniki mają ograniczenia. Test w komorze Boydena jest trudny i czasochłonny, a test rany drapanej ma niską odtwarzalność. Rozwój nowoczesnych technologii, zwłaszcza w mikroskopii, zwiększył powtarzalność testu ran drapanych. Korzystając z wydajnych systemów analizy, mikroskop wideo "w inkubatorze" może być używany do automatycznej analizy migracji i inwazji komórek w czasie rzeczywistym. Celem tego artykułu jest przedstawienie i porównanie dwóch testów stosowanych do badania inwazji i migracji komórek: testu komory Boydena i zoptymalizowanego testu ran drapanych opartego na mikroskopie wideo in vitro.

Wprowadzenie

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Inwazja i migracja komórek są zaangażowane w rozprzestrzenianie się komórek nowotworowych, co jest główną przyczyną oporności na leczenie1 i może prowadzić do nawrócenia lokoregionalnego lub przerzutowego po leczeniu raka2. Przejście nabłonkowo-mezenchymalne (EMT) to początkowy proces inwazji i migracji komórek, w którym komórki rakowe przechodzą z fenotypu nabłonkowego na mezenchymalny. E-kadheryna jest zewnątrzkomórkowym markerem fenotypu nabłonkowego3, a zwiększona ekspresja N-kadheryny i wimentyny jest charakterystyczna dla fenotypu mezenchymalnego4. Migracja zależy również od wewnętrznej zdolności komórek nowotworowych do inwazji macierzy zewnątrzkomórkowej (ECM) poprzez działanie metaloproteaz macierzy5.

Ten mechanizm inwazji i migracji został opisany dla raka w wielu miejscach, szczególnie w raku głowy i szyi6. Wielu badaczy skupiło się na procesach migracji i inwazji, aby lepiej zrozumieć, w jaki sposób rozprzestrzeniają się komórki nowotworowe, w nadziei, że ta wiedza doprowadzi do nowych strategii leczenia. Bardzo ważne jest, aby badania te były przeprowadzane przy użyciu wiarygodnych i powtarzalnych testów.

Analiza ruchliwości komórek in vitro może być wyzwaniem. Opracowany wiele lat temu test komory Boydena jest uważany za standard analizy inwazji i migracji7. Jest to jednak czasochłonne i często niedokładne. Drugim testem jest test gojenia się ran8, który polega na wykonaniu rysy na monowarstwowej kulturze komórkowej i uchwyceniu obrazów inwazji i migracji komórek w ustalonych odstępach czasu. Technika ta była szeroko krytykowana ze względu na duże różnice między wynikami dwóch kolejnych testów. Jednak zastosowanie nowoczesnych technologii, zwłaszcza w mikroskopii, poprawiło odtwarzalność testu ran drapanych. Mikroskopy wideo można łatwo wprowadzić do inkubatorów i mogą one generować obrazy migracji komórek w czasie rzeczywistym. Urządzenia te rejestrują dane mikroskopowe i zapewniają automatyczną analizę zbiegania się komórek rany w czasie. Celem niniejszego artykułu jest opisanie testu komorowego Boydena i zoptymalizowanego testu ran drapanych, a także omówienie zalet i wad każdego z tych podejść.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Protokół

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

UWAGA: Testy komory Boydena i zadrapania bez włączenia ECM są określane jako testy migracji, a te same testy z ECM są określane jako testy inwazji.

1. Test w komorze Boydena

UWAGA: Ten protokół jest dostosowany do linii komórkowej SQ20B, która wywodzi się z nawracającego raka krtani z rakiem płaskonabłonkowym głowy i szyi (HNSCC) i została uzyskana od Johna Little'a (Boston, MA, USA).

Dzień 1

  1. Wysiewanie komórek
    1. Zasiać 2 106 komórek SQ20B w 12 ml pożywki hodowlanej (CM) w kolbie o długości 175 cm2 na 72 godziny przed pierwszym dniem i pozwolić komórkom urosnąć do 80% zbiegu komórek.
      1. Aby przygotować CM dla komórek SQ20B, uzupełnij zmodyfikowaną pożywkę Eagle (DMEM) firmy Dulbecco 10% płodową surowicą cielęcą (FCS), 0,04 mg / ml hydrokortyzonu, 100 U / ml penicyliny i 0,1 g / l streptomycyny.
    2. Pod kapturem z przepływem laminarnym trypsynizuj komórki. Usunąć pożywkę, przemyć komórki sterylnym roztworem soli fizjologicznej buforowanej fosforanami (PBS) i dodać 2,5 ml trypsyny, kwasu etylenodiaminotetraoctowego (EDTA) (0,5 g/l). Inkubować komórki przez 5 minut w temperaturze 37 °C, a następnie zatrzymać reakcję przez dodanie 12,5 ml CM ogrzanego do temperatury 37 °C. Policz liczbę komórek za pomocą licznika komórek.
    3. Wysiewać komórki w kolbie o średnicy 25cm2 o gęstości komórek 6, 10,5 komórek dla każdego warunku, który ma być oceniany. Inkubować komórki przez 24 godziny w 3 ml CM.

Dzień 2

  1. Głód komórek i przygotowanie komór powlekanych
    1. Zagłodzić komórki, zastępując pożywkę w każdej kolbie 3 ml pożywki z niskopłodowej surowicy bydlęcej (FBS) przy użyciu 0,1% albuminy surowicy bydlęcej (BSA) zamiast FBS. Zagłodź komórki przez 24 godziny w inkubatorze.
      1. Aby przygotować głodówkę CM (s-CM), uzupełnij DMEM 0,1% BSA, 0,04 mg/ml hydrokortyzonu, 100 U/ml penicyliny i 0,1 g/l streptomycyny.
    2. Aby uzyskać test migracji, przejdź do kroku 1.3.
    3. Do testu inwazji, 12 godzin przed dniem 3, przygotuj powlekane komory Boydena, dodając 500 μl s-CM do każdej powlekanej komory. Używaj komercyjnie przygotowanych powlekanych komór Boydena i przechowuj je w temperaturze 4 °C przed użyciem. Umieścić każdą komorę Boydena na płytce towarzyszącej i ustawić ją w inkubatorze w temperaturze 37 °C na noc.

Dzień 3

  1. Wysiew komórek w komorze Boydena
    1. Użyj płytki towarzyszącej, aby przygotować chemoatraktant. Napełnij każdą studzienkę 24-dołkowej płytki towarzyszącej 750 μl kompletnego podłoża z 10% FBS, 0,04 mg/ml hydrokortyzonu, 100 U/ml penicyliny i 0,1 g/l streptomycyny.
      1. Dostosuj chemoatraktant do każdej linii komórkowej i każdego warunku leczenia. Aby przygotować chemoatraktant CM (ca-CM), uzupełnij DMEM o 10% FCS, 0,4 mg/ml hydrokortyzonu, 100 U/ml penicyliny i 0,1 g/l streptomycyny.
    2. Przenieś górną komorę do wstępnie napełnionej płytki towarzyszącej, uważając, aby nie powstały bąbelki.
    3. Do testu inwazji ostrożnie usuń 450 μl CM z każdej komory Boydena.
    4. Pod kapturem z przepływem laminarnym trypsynizuj komórki. Usunąć pożywkę, przemyć komórki sterylnym PBS, dodać 0,5 ml trypsyny EDTA (0,5 g/l), a następnie inkubować komórki przez 5 minut w temperaturze 37 °C. Zatrzymać reakcję przez dodanie CM ogrzanego do 37 °C. Policz liczbę komórek za pomocą licznika komórek.
    5. Wysiew 3 104 komórek SQ20B w 500 μl 0,1% pożywki BSA, co daje końcowe rozcieńczenie 6 104 komórek/ml.
      UWAGA: Stężenie komórek powinno być dostosowane do każdej linii komórkowej.
    6. Umieścić płytkę w inkubatorze w temperaturze 37 °C na 24 godziny.

Dzień 4

  1. Utrwalanie i barwienie komórek
    1. Napraw komórki przed czasem podwojenia specyficznym dla tej linii komórkowej. Napraw ogniwa SQ20B przed 24 godzinami.
    2. Wyjmij każdą wkładkę z płytki towarzyszącej i ostrożnie usuń komórki z górnej komory za pomocą bawełnianego wacika. Szczególnie ważne jest usunięcie wszystkich komórek znajdujących się w górnej komorze.
    3. Napraw i zabejcuj każdą wkładkę indywidualnie, aby uzyskać kolorystykę May-Grunwald Giemsa9 za pomocą dołączonego zestawu do barwienia. Alternatywnie, użyj 4% paraformaldehydu w innej płytce towarzyszącej, aby uzyskać 30-minutowe utrwalenie.
    4. Przechowuj wkładki na pustej 24-dołkowej płytce towarzyszącej pod okapem laboratoryjnym, aby wysuszyć każdą komorę.

Dzień 5

  1. Analiza mikroskopowa
    1. Umieść płytkę towarzyszącą z wkładkami do mikroskopu z 20 kontrastami fazowymi i policz każdą migrowaną komórkę w dolnej części membrany. Zoptymalizuj właściwą pozycję ostrości, przesuwając obiektyw od dołu do góry i zatrzymaj pozycję w dolnej części membrany.
    2. Oblicz stosunek liczby migrowanych komórek do komórek zasiewanych. Powtórzyć każde liczenie dla każdego stanu leczenia w trzech egzemplarzach.

2. Test ran drapanych: Migracja komórek

UWAGA: Instrukcje muszą być dostosowane do każdego typu komórki.

Dzień 1

  1. Wysiewanie komórek
    1. Zasiaj 2 x 106 komórek SQ20B w 12 ml CM w kolbie o długości 175 cm2 72 godziny przed pierwszym dniem i pozwól komórkom urosnąć do 80% zbiegu komórek.
    2. Pod kapturem z przepływem laminarnym trypsynizuj komórki. Usunąć pożywkę, przemyć komórki sterylnym PBS, dodać 2,5 ml trypsyny EDTA (0,5 g/l) i inkubować komórki przez 5 minut w temperaturze 37 °C. Zatrzymać reakcję przez dodanie 12,5 ml CM ogrzanego do 37 °C. Policz liczbę komórek za pomocą licznika komórek.
    3. Wytwarzać wstępnie rozcieńczoną próbkę o gęstości komórek 4 x 105/ml, uzyskując końcową gęstość 4 104 komórek na 100 μl w każdym dołku. Stężenie to musi być dostosowane dla każdej linii komórkowej i powinno mieścić się w zakresie od 1 x 104 do 6 104 komórek.
    4. Komórki nasienne umieścić w każdym dołku płytki 96-dołkowej, umieszczając 100 μl roztworu przygotowanego w kroku 2.1.2.
    5. Pozostaw płytkę w temperaturze pokojowej na 5 minut, aby równomiernie rozproszyć komórki na dnie studzienek.
    6. Umieścić płytkę w inkubatorze i pozostawić komórki do przylegania do płytki przez 12-16 godzin (maksymalnie) w temperaturze 37 °C.

Dzień 2

  1. Test ran drapanych
    1. Wyjąć z inkubatora płytki przygotowane w kroku 2.1
      2. .
    2. Pod maską wykonaj ranę za pomocą komercyjnego urządzenia do nawijania zgodnie z protokołem producenta.
    3. Natychmiast usunąć pożywkę z każdej studzienki za pomocą pipety z dostosowaną stożkową końcówką, uważając, aby nie dotknąć rany.
    4. Przemyć komórki dwukrotnie, powtarzając aspirację i używając 100 μl CM ogrzanego do temperatury 37 °C dla każdej studzienki.
    5. Wyjmij CM za pomocą pipety z dostosowaną stożkową końcówką po etapach mycia.
    6. Do każdego dołka dodać 100 μl pożywki specyficznej dla każdego stanu leczenia.
    7. Staraj się unikać tworzenia pęcherzyków w studzienkach. Pomocna może być w tym przypadku technika odwróconego pipetowania. Alternatywnie usuń bąbelki za pomocą igły strzykawki.
    8. Umieść płytkę w przystosowanym do tego stojaku wideomikroskopu.
    9. Aby poprawić jakość obrazu, pozwól płytce ogrzać się przez co najmniej 15 minut przed pierwszym skanowaniem, aby uniknąć kondensacji pary wodnej na dolnej stronie płytki.
    10. Zaprogramuj harmonogram skanów za pomocą oprogramowania mikroskopu wideo na jednym obrazie na studzienkę. W przypadku eksperymentu inwazji-migracji wymagany jest maksymalnie 2-godzinny interwał. Jeśli celem eksperymentu jest wyprodukowanie filmu, preferowany jest interwał wynoszący maksymalnie 30 minut.
    11. Pod koniec eksperymentu dokładnie umyj urządzenie do nawijania i postępuj zgodnie z każdym z czterech etapów mycia wskazanych przez producenta.

Dni 3, 4 i 5

  1. Analiza migracji z wykorzystaniem wideomikroskopu
    1. Przez minimum 24 godziny do maksymalnie 5 dni monitoruj i sprawdzaj migrację komórek.
    2. Użyj odpowiedniej maski komórki dostosowanej do każdego typu komórki, aby przeanalizować migrację komórek. Aby uzyskać maskę komórki dostosowaną do każdej linii komórkowej, wygeneruj definicję przetwarzania komórki z oprogramowania przy użyciu określonego zbioru obrazów komórek.
    3. Śledź krzywe i eksportuj dane do arkusza kalkulacyjnego, który można wykorzystać do analizy i porównania wyników.

3. Test ran drapanych: inwazja komórek

UWAGA: Instrukcje muszą być dostosowane do każdego typu komórki.

Dzień 1

  1. Wysiewanie komórek
    1. Użyj tego samego protokołu do wysiewu komórek, jak opisano w kroku 2.1.

Dzień 2

  1. Przygotowanie ECM
    1. Przed użyciem rozmrażać matrycę przez co najmniej 12 godzin w temperaturze 4 °C. Upewnij się, że nie widać żadnych kruszyw. Jeżeli agregaty są widoczne, należy utrzymywać matrycę w temperaturze 4 °C przez dłuższy czas, aż znikną agregaty. Utrzymuj matrycę na lodzie. Używaj wstępnie schłodzonych końcówek do pipet.
      UWAGA: Matryca zestala się, jeśli nie będzie przechowywana w temperaturze 4 °C.
    2. Schłodzić probówki do mikrowirówek na lodzie przez 5 minut.
    3. Pobrać CM schłodzony do temperatury 4 °C z lodówki i rozcieńczyć matrycę we wstępnie schłodzonych probówkach do mikrowirówek, aby uzyskać końcowe stężenie 300 μg/ml.
    4. Probówki do mikrowirówek z rozcieńczoną matrycą umieścić z powrotem w lodówce w temperaturze 4 °C.
      UWAGA: Stojak chłodzący przystosowany do probówek do mikrowirówek jest pomocny w utrzymywaniu probówek w temperaturze 4°C przez cały czas trwania eksperymentu.

Dzień 2

  1. Test ran drapanych i leczenie ECM
    1. Wyjąć z inkubatora płytkę przygotowaną w kroku 3.1.
    2. Pod maską wykonaj ranę za pomocą komercyjnego urządzenia do nawijania zgodnie z protokołem producenta.
    3. Natychmiast usunąć podłoże z każdej studzienki za pomocą pipety z dostosowaną stożkową końcówką, uważając, aby nie dotknąć rany.
    4. Umyć komórki dwukrotnie, powtarzając procedurę aspiracji i używając 100 μl CM ogrzanego do 37 °C.
    5. Po drugim płukaniu umieścić płytkę w inkubatorze o temperaturze 4 °C, aby wyrównać jego temperaturę przez 5 minut.
    6. Usunąć zimne podłoże z każdej studzienki za pomocą pipety aspiracyjnej ze stożkową końcówką, uważając, aby pipetować ostrożnie od krawędzi i nie dotykając rany.
    7. Dodać 50 μl wstępnie rozcieńczonej matrycy do każdego dołka za pomocą wstępnie schłodzonych stożkowych końcówek w temperaturze 4 °C.
    8. Umieścić płytkę w inkubatorze w temperaturze 37 °C przez 30 min.
      UWAGA: Wstępnie podgrzany stojak w temperaturze 37 °C jest pomocny w przyspieszeniu nagrzewania płytki 96-dołkowej.
    9. Wyjąć płytkę z inkubatora i dodać 100 μl dostosowanego CM do każdej studzienki, zgodnie ze wskazaniami dla każdego warunku leczenia.
    10. Staraj się unikać tworzenia pęcherzyków w studzienkach. Pomocna może być w tym przypadku technika odwróconego pipetowania. Alternatywnie usuń bąbelki za pomocą igły strzykawki.
    11. Umieść płytkę w odpowiednim stojaku w mikroskopie wideo.
    12. Aby poprawić jakość obrazu, pozwól płytce ogrzać się przez co najmniej 15 minut przed pierwszym skanowaniem, aby uniknąć kondensacji pary wodnej na dolnej stronie płytki.
    13. Zaprogramuj harmonogram skanowania, korzystając z oprogramowania mikroskopu wideo na jednym obrazie na studzienkę, w trybie skanowania ran zadrapań. Maksymalny 2-godzinny interwał wymagany dla eksperymentu inwazji i migracji. Jeśli celem eksperymentu jest wyprodukowanie filmu, preferowany jest interwał wynoszący maksymalnie 30 minut.
    14. Pod koniec eksperymentu dokładnie umyj urządzenie do nawijania i postępuj zgodnie z każdym z czterech etapów mycia wskazanych przez producenta.

Dni 3, 4 i 5

  1. Analiza inwazji komórek za pomocą wideomikroskopu.
    1. Powtórz krok 2.3.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Wyniki

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Przedstawiamy tutaj dwie różne metody analizy inwazji i migracji komórek. Rysunek 1 przedstawia eksperyment z komorą Boydena. Wkładki umieszcza się na płytce towarzyszącej z pożywką chemoatraktantową, a komórki wysiewa się w CM. Membrana może być niepowlekana (test migracji) lub powlekana (test inwazji). Komórki wysiewa się do górnej komory w s-CM. Dolna komora jest wypełniona CM jako chemoatraktantem. Ogniwa są mocowane przed czasem podwojenia.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Dyskusja

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Przedstawiamy tutaj dwie różne metody badania procesu inwazji i migracji komórek. Analiza tego procesu jest ważna dla zrozumienia czynników związanych z nawrotem przerzutów, które można wyjaśnić zwiększoną ruchliwością subpopulacji komórek nowotworowych zwanych rakowymi komórkami macierzystymi10,11.

Eksperyment z komorą Boydena jest jedną z najczęściej stosowanych technik badania inwazji i migracji komórek. Jedną z zalet tego podejścia...

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Oświadczenia

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Autorzy nie mają nic do ujawnienia.

Podziękowania

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Te techniki zostały opracowane przy wsparciu LabEx PRIMES (ANR-11-LABX-0063), Contrat Plan-Etat-Region (CPER) w ramach naukowych ETOILE (CPER 2009-2013) oraz Lyric Grant INCa-DGOS-4664.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
Surowica płodu cielęcego GoldGE HealthcareA15-151
Hydrokortyzon rozpuszczalny w wodzieSigma-AldrichH0396-100MG
Penicylina/Streptomycyna 100 XDominique DutscherL0022-100
DMEMGibco61965-026
F12 Mieszanka orzechów (1X) + GlutaMAX-IGibco31765-027
EGFPromegaG5021Roztwór należy przygotować tuż przed użyciem, ponieważ jest bardzo niestabilny
Cząstka redlicy Z1Beckman Coulter6605698
Mikroskop optycznyOlympus CKX31
SQ20BPrezent od Johna Little' s Laboratoryjny
aparat do robienia ranEssen Bioscience4494Przechowywać w bezpiecznym i suchym miejscu
96-dołkowa płytka ImageLockEssen Bioscience4379
CoolBox 96F z radiatorem CoolSink 96FEssen Bioscience1500-0078-A00
CoolBox z systemem M30Essen Bioscience1500-0078-A00
WkładkaBoydenDominique Dutcher353097
Wkładka powlekana Boyden DominiqueDutcher354483Przechowywać w temperaturze -20 & deg; C
Companion 24-dołkowa płytkaDominique Dutcher353504
BD Matrigel standardBD BioScienceBD 354234Przechowywać w temperaturze -20&stopieC. 
Zestaw do barwienia RAL 555 DiagnostykaRAL  361550Przechowywać w bezpiecznym i suchym miejscu
Probówki do mikrowirówekEppendorf33511
Linia komórkowa

Bibliografia

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Friedl, P., Wolf, K. Tumour-cell invasion and migration: diversity and escape mechanisms. Nat Rev Cancer. 3 (5), 362-374 (2003).
  2. Moncharmont, C., et al. Radiation-enhanced cell migration/invasion process: A review. Crit Rev Oncol Hematol. , (2014).
  3. Burdsal, C. A., Damsky, C. H., Pedersen, R. A. The role of E-cadherin and integrins in mesoderm differentiation and migration at the mammalian primitive streak. Development. 118 (3), Cambridge, England. 829-844 (1993).
  4. Chen, C., Zimmermann, M., Tinhofer, I., Kaufmann, A. M., Albers, A. E. Epithelial-to-mesenchymal transition and cancer stem(-like) cells in head and neck squamous cell carcinoma. Cancer Lett. 338 (1), 47-56 (2013).
  5. Nelson, A. R., Fingleton, B., Rothenberg, M. L., Matrisian, L. M. Matrix metalloproteinases: biologic activity and clinical implications. J Clin Oncol. 18 (5), 1135-1149 (2000).
  6. Smith, A., Teknos, T. N., Pan, Q. Epithelial to mesenchymal transition in head and neck squamous cell carcinoma. Oral Oncol. 49 (4), 287-292 (2013).
  7. Chen, H. -C. Boyden chamber assay. Meth Mol Biol. 294, Clifton, N.J. 15-22 (2005).
  8. Rodriguez, L. G., Wu, X., Guan, J. -L. Wound-healing assay. Meth Mol Biol. 294, Clifton, N.J. 23-29 (2005).
  9. Piaton, E., et al. Technical recommendations and best practice guidelines for May-Grünwald-Giemsa staining: literature review and insights from the quality assurance. Ann Path. 35 (4), 294-305 (2015).
  10. Moncharmont, C., et al. Targeting a cornerstone of radiation resistance: cancer stem cell. Cancer lett. 322 (2), 139-147 (2012).
  11. Moncharmont, C., et al. Carbon ion irradiation withstands cancer stem cells’ migration/invasion process in Head and Neck Squamous Cell Carcinoma (HNSCC). Oncotarget. 7 (30), 47738-47749 (2016).
  12. Gilormini, M., Wozny, A. -S., Battiston-Montagne, P., Ardail, D., Alphonse, G., Rodriguez-Lafrasse, C. Isolation and Characterization of a Head and Neck Squamous Cell Carcinoma Subpopulation Having Stem Cell Characteristics. J Vis Exp: JoVE. (111), (2016).

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Przedruki i uprawnienia

Poproś o pozwolenie na ponowne wykorzystanie tekstu lub ilustracji tego artykułu JoVE

Poproś o pozwolenie

Tagi

Cell MigrationVideo MicroscopyWound Healing AssayCell Confluence AnalysisMembrane StainingChemoattractant TreatmentExtracellular Matrix

Powiązane artykuły