Ten protokół przedstawia chirurgiczny duży zwierzęcy model przewlekłego, pojedynczego niedokrwienia naczynia, który powoduje nieprawidłowości regionalne, ale nie tworzy zawału, znanego jako hibernujący mięsień sercowy. Po ustaleniu przewlekłego niedokrwienia zwierzęta są leczone operacją pomostowania tętnic wieńcowych-LAD w celu rewaskularyzacji niedokrwionej tkanki.
Subskrypcja JoVE jest wymagana do oglądania tego materiału. Zaloguj się lub rozpocznij bezpłatny okres próbny.
Artykuł metodologiczny
Chirurgiczny model przewlekłego niedokrwienia serca leczony metodą pomostowania tętnic wieńcowych poza pompą
W tym artykule
Podsumowanie
Streszczenie
Przewlekłe niedokrwienie serca, które upośledza czynność serca, ale nie prowadzi do zawału, nazywane jest hibernacyjnym mięśniem sercowym (HM). Duża podgrupa kliniczna pacjentów z chorobą wieńcową (CAD) ma HM, który oprócz upośledzenia funkcji naraża ich na większe ryzyko arytmii i przyszłych zdarzeń sercowych. Standardowym sposobem leczenia tego schorzenia jest rewaskularyzacja, ale wykazano, że jest to terapia niedoskonała. Większość przedklinicznych badań kardiologicznych koncentruje się na modelach zawałowych niedokrwienia serca, pozostawiając tę podgrupę pacjentów z przewlekłym niedokrwieniem w dużej mierze niedostatecznie obsługiwaną. Aby wypełnić tę lukę w badaniach, opracowaliśmy dobrze scharakteryzowany i wysoce powtarzalny model hibernującego mięśnia sercowego u świń, ponieważ świnie są idealnymi modelami translacyjnymi dla chorób serca u ludzi. Oprócz stworzenia tego unikalnego modelu choroby, zoptymalizowaliśmy klinicznie istotny model leczenia operacji pomostowania aortalno-wieńcowego u świń. Dzięki temu możemy dokładnie badać wpływ operacji pomostowania na choroby serca, a także badać dodatkowe lub alternatywne terapie. Model ten chirurgicznie indukuje zwężenie pojedynczego naczynia poprzez wszczepienie zwężacza na lewej tętnicy zstępującej przedniej (LAD) młodej świni. W miarę wzrostu świni dusiciel tworzy stopniowe zwężenie, co powoduje przewlekłe niedokrwienie z upośledzoną funkcją regionalną, ale zachowującą żywotność tkanek. Po ustaleniu fenotypu hibernującego mięśnia sercowego przeprowadzamy operację pomostowania aortalno-wieńcowego poza pompą w celu rewaskularyzacji obszaru niedokrwiennego, naśladując złoty standard leczenia pacjentów w klinice.
Wprowadzenie
Choroba niedokrwienna serca (CHD) dotyka około 15,5 miliona ludzi w Stanach Zjednoczonych 1 i jest jedną z głównych przyczyn zgonów na świecie. Chociaż śmiertelność związana z chorobą niedokrwienną serca spadła w ostatnich latach, częstość występowania i obciążenie pacjentów i systemu opieki zdrowotnej pozostają wysokie 1. Podstawowym sposobem leczenia ciężkiej choroby wieńcowej jest rewaskularyzacja, która poprawia przeżycie i zmniejsza dławicę piersiową2,3,4. Jednak czynność serca często pozostaje obniżona, zwłaszcza przy zwiększonym obciążeniu pracą i może prowadzić do niewydolności serca5,6. Badania kliniczne operacji pomostowania aortalno-wieńcowego (CABG) w przypadku przewlekłego niedokrwienia wykazują poprawę przeżycia i objawów, ale frakcja wyrzutowa wykazuje tylko niewielką poprawę o 8-10% 7,8. Nasz innowacyjny i dobrze scharakteryzowany model przewlekłego niedokrwienia mięśnia sercowego u świń jest modelem klinicznej choroby wieńcowej z postępującym zwężeniem naczyń krwionośnych. Wykazaliśmy zmniejszoną kurczliwość mięśnia sercowego wynikającą ze stopniowego zmniejszania przepływu krwi 9. Mięsień sercowy nie ulega zawałowi i w tym scenariuszu może pozostać żywotny. Rekonwalescencja jest możliwa, chociaż wyniki są zmienne nawet przy szybkiej rewaskularyzacji. Przewlekle niedokrwienny mięsień sercowy, który pozostaje żywy, charakteryzuje się zmniejszonym przepływem krwi i funkcją spoczynku z zachowaną rezerwą skurczową, został określony jako HM, a leczenie wymaga CABG. Chociaż rewaskularyzacja HM powinna przywrócić funkcję skurczową, obserwacje eksperymentalne i kliniczne pokazują, że powrót do zdrowia jest niekompletny8,10.
HM charakteryzuje się obecnością żywotnego, ale dysfunkcyjnego mięśnia sercowego w obecności zmniejszonego regionalnego przepływu krwi11. Pomimo upośledzonej kurczliwości i aktywności metabolicznej w spoczynku, HM jest w stanie wykazać rezerwę funkcjonalną i metaboliczną pod wpływem stymulacji inotropowej12. HM podejrzewa się u większości pacjentów z chorobą wieńcową i obejmuje szerokie spektrum chorób. W tym protokole demonstrujemy nasz ustalony model HM ominięty przez lewą tętnicę sutkową wewnętrzną () do tętnicy LAD, który naśladuje scenariusz kliniczny. Świnie stanowią doskonały model chorób serca w porównaniu z innymi dużymi zwierzętami, ponieważ nie mają pobocznych mostków nasierdziowych. Pozwala to na to, że zwężenie samego LAD powoduje regionalne niedokrwienie13.
Tutaj opisujemy chirurgiczną metodę wywoływania hibernacji mięśnia sercowego u świń poprzez tworzenie zwężenia pojedynczego naczynia na tętnicy LAD. Po ustaleniu przewlekłego niedokrwienia (8 tygodni po wszczepieniu zwężacza LAD) opisujemy metodę odtworzenia klinicznego leczenia HM w naszym modelu trzody chlewnej: pomostowanie aortalno-wieńcowe poza pompą. Te metody chirurgiczne mogą być stosowane nie tylko do badania klinicznie istotnego modelu przewlekłego niedokrwienia serca, ale także do badania wpływu operacji pomostowania na niedokrwienie serca, a także do testowania potencjalnych alternatywnych lub wspomagających terapii niedokrwienia serca.
Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.
Protokół
Wszystkie badania na zwierzętach zostały zatwierdzone przez Instytucjonalne Komitety ds. Opieki i Użytkowania Zwierząt w Minneapolis VA Medical Center oraz University of Minnesota. Postępuj zgodnie z aktualnymi wytycznymi National Institutes of Health dotyczącymi użytkowania i opieki nad zwierzętami laboratoryjnymi.
1. Operacja hibernacji
- Przygotowanie zwierząt
- Aby stworzyć model hibernującego mięśnia sercowego, użyj 5-tygodniowych samic świń Yorkshire, które ważą w przedziale 8-10 kg, przy średniej wadze 9,2 kg.
- W celu przedoperacyjnego monitorowania stanu zdrowia należy zważyć zwierzę w ciągu 3 dni przed zabiegiem.
- Pościć zwierzę przez 12 godzin przed rozpoczęciem znieczulenia. Upewnij się, że woda jest dostępna przez cały czas dla zwierząt poszczących.
- Podawać SR Buprenorfinę w dawce 0,18 mg/kg domięśniowo 24 godziny przed zabiegiem.
- indukcja
- Uspokoić zwierzę 6,6 mg/kg tiletaminy-zolazepamu i koktajlu ksylazyny podawanym domięśniowo. Odczekaj 5-15 minut, aby koktajl narkotykowy zaczął działać.
- Przygotować żyłę ucha aseptycznie, przecierając trzykrotnie 70% alkoholem izopropylowym w celu umieszczenia cewnika dożylnego.
UWAGA: Jeśli żyła uszna nie jest odpowiednia, można użyć innej żyły obwodowej (np. głowowej). - Nałóż maść okulistyczną na oba oczy, aby zapobiec wysuszeniu rogówki.
- W razie potrzeby wywołać znieczulenie, podając 1-2 mg/kg propofolu dożylnie lub zamaskowanego 3 l/min tlenu i 3% izofluranu, aby umożliwić intubację tchawicy.
UWAGA: Zwierzę uważa się za odpowiednio znieczulone, gdy nie ma odruchu mrugania lub tonu żuchwy. - Zaintubuj zwierzę rurką dotchawiczą o odpowiedniej wielkości.
- chirurgia
- Gdy zwierzę zostanie znieczulone, ogol lewą część klatki piersiowej do operacji.
- Rozpocznij wentylację mechaniczną przy 10-15 oddechach na minutę. Ustaw tlen na 1-4 l/min, a izofluran między 1,0 a 3,0% w razie potrzeby, aby utrzymać chirurgiczną płaszczyznę znieczulenia.
- Umieść urządzenia monitorujące na zwierzęciu. Urządzenia monitorujące powinny obejmować EKG, ciśnienie krwi, temperaturę i pulsoksymetr.
- Podłącz cewnik dożylny do kroplówki z 0,9% soli fizjologicznej w ilości 5-10 ml/kg/h.
- Przygotuj aseptycznie lewą boczną klatkę piersiową za pomocą zatwierdzonego przez FDA peelingu chirurgicznego.
- Oceniaj głębokość znieczulenia co 5-15 minut. Zapisuj wyjściowe parametry życiowe (tętno, EKG, SpO2, NIBP, ETCO2 i temperatura) co 15 minut.
UWAGA: Zwierzę uważa się za odpowiednio znieczulone, gdy nie ma odruchu mrugania lub tonu żuchwy. - Gdy zwierzę leży na prawym boku, umieść sterylne zasłony po lewej stronie klatki piersiowej od kręgosłupa do łopatki, centrując trzecią przestrzeń żebrową w sterylnym polu.
UWAGA: Sterylne pole obejmuje lewe przednie ramię, w tym obszar pachowy, który biegnie do mostka do szóstego żebra czaszki. - Delikatnie szoruj pole zatwierdzoną przez FDA metodą chirurgiczną, taką jak glukonian chlorheksydyny lub jodowy peeling chirurgiczny przez 2 minuty, używając docelowego wzoru.
- Spłucz pole wodą i umyj je jeszcze dwa razy metodą zatwierdzoną przez FDA, jak powyżej, przez 2 minuty. Pomiędzy myciami spłucz pole operacyjne wodą, a następnie osusz sterylnym ręcznikiem lub gąbkami z gazy o wymiarach 4 x 4 cm.
- Spryskaj obszar roztworem jodu i ułóż całe zwierzę (z wyjątkiem pola operacyjnego) sterylnymi zasłonami. Użyj sterylizacji parowej lub gazowej, aby wysterylizować narzędzia, fartuchy i zasłony do zabiegu.
- Podać blokadę nerwu międzyżebrowego za pomocą 0,3 ml 0,5% bupiwakainy na 2., 3. i 4. żeberku.
- Podać 125 mg cefazoliny dożylnie przed otwarciem klatki piersiowej.
UWAGA: 1,5 mg/kg sukcynylocholiny dożylnie może być podawana jako środek paraliżujący w celu zmniejszenia ruchomości mięśni na żądanie chirurga podczas otwierania jamy klatki piersiowej. - Odsłonić serce przez torakotomię lewą. Przed manipulacją serca należy podać dożylnie bolus lidokainy w dawce 2 mg/kg, aby zapobiec arytmii. Wykonaj boczne nacięcie torakotomii w 3. przestrzeni za pomocą monopolarnej elektrokoagulacji. Nacięcie powinno rozciągać się od strony czaszki łopatki do obszaru pachowego na około 10 cm. Użyj kauteryzacji, aby naciąć skórę i mięśnie znajdujące się pod nią, aby umożliwić wejście do jamy klatki piersiowej.
- Umieść retraktor żeber finochietto i wejdź do przestrzeni opłucnej w trzeciej przestrzeni międzyżebrowej, aby cofnąć płuco.
- Ostro naciąć osierdzie i wycofać się na bok za pomocą szwów poliglaktynowych 2-0, odsłaniając tętnicę i żyłę LAD. Cofnij uszek lewego przedsionka za pomocą zwijacza szpatułkowego pokrytego gazą.
- Za pomocą nożyczek do tęczówki otwórz przydankę nad LAD.
- Tępo wypreparuj około 0,25 cm część tętnicy LAD około 1 cm dystalnie do LAD i połączenia tętnicy obwodowej. Użyj kąta prostego clamp, aby otoczyć LAD.
- Umieść dwa szwy poliestrowe 4-0 wokół tętnicy bez wywierania napięcia.
- Umieść plastikowy zwężacz w kształcie litery C o średnicy wewnętrznej 1.5 mm na LAD proksymalnie do pierwszej przekątnej, nie zamykając naczynia.
- Zabezpiecz go dwoma poliestrowymi opaskami 4-0 otaczającymi LAD.
- Luźno zamknij osierdzie za pomocą szwu poliglaktynowego 2-0 w prostym przerywanym wzorze.
- Wstrzymaj oddech, aby usunąć powietrze z klatki piersiowej, gdy warstwa mięśni międzyżebrowych jest zamknięta. Uważnie monitoruj manometr ciśnienia w drogach oddechowych na aparacie anestezjologicznym, aby utrzymać ciśnienie w odpowiednim zakresie 20-30 cm wody i zwolnić po zakończeniu.
UWAGA: Eliminuje to konieczność stosowania rurki do klatki piersiowej w okresie pooperacyjnym .
- Zamknij warstwy mięśni i skóry w standardowy sposób za pomocą wchłanialnego szwu 2-0 i 3-0.
- Użyj kleju do skóry na nacięciu, aby zamknąć skórę.
- Całkowitą dawkę 1 mg/kg mc. bupiwakainy należy podać domięśniowo w wiele miejsc na całej długości nacięcia pod koniec zabiegu. Meloksykam należy podawać w dawce 0,2 mg/kg mc. m.c. przed transportem do miejsca rekonwalescencji.
- Odzwyczaj zwierzęcia od respiratora, gdy warstwa skóry jest zamknięta.
- Pozostaw zwierzę podłączone do aparatu do znieczulenia, aż będzie w stanie spontanicznie oddychać i zaczną wracać odruchy obronne.
- Nie wyjmuj rurki dotchawiczej, dopóki zwierzę nie będzie w stanie połknąć, aby chronić drogi oddechowe.
- Na nacięcie nałożyć sterylny, nieprzywierający opatrunek z maścią z potrójnym antybiotykiem.
- Okres pooperacyjny
- Rejestruj tętno, częstość oddechów, temperaturę ciała i kolor błony śluzowej co 15 minut, aż zwierzę będzie w stanie samodzielnie utrzymać pozycję mostkową.
- Nie zostawiaj zwierzęcia bez opieki, dopóki nie będzie w stanie podnieść i utrzymać głowy w górze i nie będzie mogło stać bez pomocy.
- Meloksykam (0,2 mg/kg) należy podawać podskórnie.
- Buprenorfinę o przedłużonym uwalnianiu należy podawać 6 godzin po podaniu początkowej dawki przedoperacyjnej.
- Opatrunek należy pozostawić na nacięciu do 3 dni, jeśli pozostaje czysty i suchy. Wymień opatrunek, jeśli się zabrudzi.
- Monitoruj poziom bólu, ogólne samopoczucie i stan nacięcia przez 5 dni po zabiegu.
UWAGA: Skala grymasu prosiąt jest teraz dostępna do oceny poziomu bólu u tych zwierząt po operacji14. Stosować połowę dawki meloksykamu w razie potrzeby raz dziennie w przypadku bólu przebijającego. - Zwierzę należy trzymać w jednym pomieszczeniu w okresie rekonwalescencji trwającym 5 dni, aby ograniczyć aktywność i umożliwić zagojenie się rany.
- Odczekaj 8 tygodni, aby w pełni rozwinąć fenotyp hibernującego mięśnia sercowego.
2. Rewaskularyzacja lub obejście poza pompą
- Przygotowanie zwierząt
- Zważ zwierzę w ciągu 3 dni przed zabiegiem.
- Pościć zwierzę przez 12 godzin przed zabiegiem. Upewnij się, że woda jest dostępna przez cały czas dla zwierząt poszczących.
- Buprenorfinę o przedłużonym uwalnianiu należy podawać domięśniowo w dawce 0,18 mg/kg mc. na 24 godziny przed zabiegiem.
- indukcja
- Uspokoić zwierzę domięśniowo koktajlem tiletamina-zolazepam/ksylazyna w dawce 6,6 mg/kg. 5-15 minut po sedacji przygotować żyłę ucha w aseptyku do założenia cewnika.
UWAGA: Jeśli żyła uszna nie jest odpowiednia, można użyć innej żyły obwodowej (np. głowowej). - Nałóż maść okulistyczną na oba oczy.
- Wywołać znieczulenie 1-2 mg/kg propofolu IV.
- Zaintubuj zwierzę rurką dotchawiczą o odpowiedniej wielkości.
- Uspokoić zwierzę domięśniowo koktajlem tiletamina-zolazepam/ksylazyna w dawce 6,6 mg/kg. 5-15 minut po sedacji przygotować żyłę ucha w aseptyku do założenia cewnika.
- chirurgia
- Ogol mostek zwierzęcia, lewą boczną klatkę piersiową i trójkąty udowe do operacji.
- Ustaw wentylację mechaniczną na 10-15 oddechów na minutę, tlen na 1-4 l/min, a izofluran na 1,0-3,0% w razie potrzeby, aby utrzymać chirurgiczną płaszczyznę znieczulenia.
- Umieść urządzenia monitorujące (tętno, EKG, SpO2, bezpośrednie ciśnienie krwi, ETCO2 i temperaturę) na zwierzęciu.
- Podłącz cewnik dożylny do kroplówki z solą fizjologiczną lub LRS.
- Przygotuj skórę aseptycznie za pomocą peelingu jodonowego powidonu lub innej metody zatwierdzonej przez FDA.
- Oceń zwierzę pod kątem głębokości znieczulenia.
UWAGA: Zwierzę uważa się za głęboko znieczulone, gdy nie ma odruchu oka lub szczęki. - Ułóż zwierzę grzbietowo, przygotuj skórę zgodnie z wcześniejszym opisem i ułóż zwierzę sterylnymi ręcznikami.
- Wykonaj cięcie do tętnicy udowej i kaniulacji. Użyj monopolarnej elektrokoagulacji, aby wykonać około 3 cm nacięcie skóry nad tętnicą udową, aby odsłonić ją do kaniulacji.
- Wykonaj blokadę nerwu udowego po wykonaniu nacięcia, aby umożliwić precyzyjne umieszczenie leku. Podłącz kaniulę udową do przetwornika, aby monitorować ciśnienie krwi podczas operacji.
- Użyj elektrokoagulacji, aby naciąć od manubrium do wyrostka mieczykowatego, a także aby naciąć mięśnie, tkankę tłuszczową i tkankę łączną do poziomu mostka.
- Podziel mostek za pomocą piły oscylacyjnej.
UWAGA: Używanie piły oscylacyjnej, a nie standardowej piły mostkowej, pozwala uniknąć potencjalnego uszkodzenia mięśnia sercowego spowodowanego zrostami osierdzia w wyniku torakotomii w celu umieszczenia zwężacza na LAD. - Podawać lidokainę (2 mg/kg dożylnie dawki nasycającej, 50 μg/kg/min ciągły wlew dożylny) w celu zapobiegania arytmii. Rozcieńczyć lidokainę w worku 500 ml soli fizjologicznej o stężeniu 1 mg/ml.
- Podziel tylną płytkę mostka prostymi nożyczkami Mayo.
- Użyj retraktora klatki piersiowej, aby odsłonić klatkę piersiową.
- Usuń zrosty za pomocą monopolarnej elektrokoagulacji.
- Za pomocą tego samego retraktora, z delikatnym uniesieniem lewej granicy mostka przez asystenta, wypreparuj lewą tętnicę sutkową wewnętrzną wolną od ściany klatki piersiowej.
- Kontroluj gałęzie tętnic za pomocą hemolipów.
- Heparynizacja zwierzęcia za pomocą 100-300 jednostek/kg heparyny dożylnie.
- Po 3 minutach przeciąć tętnicę dystalnym końcem nad zszytym. Przygotuj bliższy koniec do szczepienia.
- Otwórz i schuj osierdzie. Upewnij się, że długość jest odpowiednia, aby dotrzeć do odpowiedniego miejsca zespolenia na LAD.
- Wykonać zespolenie do LAD ze szwem polipropylenowym 7-0 przy użyciu techniki poza pompą ze stabilizatorem serca, klipsem sprężynowym i odpowiednio dobranymi urządzeniami wewnątrzświetlnymi.
- Umieść rurkę piersiową między żebrami po lewej stronie klatki piersiowej, uzewnętrznioną i podłączoną do podciśnienia w celu usunięcia powietrza z jamy klatki piersiowej przez 15-30 minut.
- Przybliż mostek za pomocą szwów poliestrowych #5, używając wzoru ósemki.
- Zamknij warstwy mięśniowe, podskórne i skórne w zwykły sposób, zgodnie z opisem w operacji hibernacji. Wyjmij rurkę piersiową podczas wykonywania manewru Valsalvy, aby usunąć resztki powietrza z jamy klatki piersiowej i zamknij nacięcie jednym szwem skórnym.
- Nałóż klej na skórę na skórę, aby chronić nacięcie mostka. Delikatnie wyjmij cewnik udowy i napraw tętnicę za pomocą nici polipropylenowej 7-0 w układzie sznurka do torebki. Zamknij skórę za pomocą nici poliglaktynowej 2-0 we wzorze podskórnym.
- Całkowitą dawkę 1 mg/kg mc. bupiwakainy należy podać domięśniowo w wiele miejsc na całej długości nacięcia pod koniec zabiegu.
- Meloksykam w dawce 0,2 mg/kg mc. należy podawać podskórnie przed transportem do miejsca odzysku.
- Postępuj zgodnie z protokołem pooperacyjnym w procedurze hibernacji.
Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.
Wyniki
Po wstępnym zabiegu chirurgicznym w celu wywołania hibernacji, za pomocą klinicznych technik obrazowania, takich jak angiografia lub rezonans magnetyczny serca (MRI), powinna być możliwa do zaobserwowania stenoza przekraczająca 70% (Rysunek 1A). W 8 tygodniu po chirurgicznym założeniu konstriktora na LAD, analiza funkcji regionalnej za pomocą ECHO lub MRI serca wykazuje obniżoną wydajność przy zwiększonym obciążeniu (Rysu...
Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.
Dyskusja
Tutaj pokazujemy, że nasz świński model HM dokładnie naśladuje doświadczenie kliniczne pacjentów z chorobą pojedynczego naczynia i zachowaną funkcją lewej komory. Przed rewaskularyzacją zwierzęta z HM jednonaczyniowym wykazują minimalne upośledzenie funkcji globalnej, mierzone frakcją wyrzutową, ale wykazują znaczne zmniejszenie regionalnego pogrubienia ścian. Po rewaskularyzacji, obrazowanie CMR po jednym lub trzech miesiącach rekonwalescencji wykazuje zachowaną żywotność i drożność przeszczepu, ale utrzymującą się dysf...
Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.
Oświadczenia
Autorzy nie mają nic do ujawnienia.
Podziękowania
Ta praca była wspierana przez VA Merit Review #I01 BX000760 (RFK) ze Stanów Zjednoczonych (USA) Departament ds. Weteranów BLR&D. Treść tej pracy nie reprezentuje poglądów Departamentu ds. Weteranów Stanów Zjednoczonych Rządu Stanów Zjednoczonych.
Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.
Materiały
| Nazwa | Firma | Numer katalogowy | Komentarze |
|---|---|---|---|
| Bair Hugger | 3M | Model 505 | System ogrzewania pacjenta |
| SR Buprenorfina 10 mg / ml | Abbott | Labs NADA 141-434 | Pooperacyjny przeciwbólowy |
| chirurgiczny klips sprężynowy | Zastosowany medyczny | A1801 | Zacisk końca po zdjęciu |
| Zestaw linii tętniczej | Strzałka | ASK-04510-HF | Cewnik udowy do monitorowania ciśnienia krwi |
| 1000 ml 0,9% Chlorek sodu | Baxter | 2B1324X | IV płyn zastępczy |
| 250 ml 0,9% sól fizjologiczna | Baxter | UE1322D | Wymiana płynu dożylnego |
| 500 ml 0,9% chlorek sodu | Baxter | 2B1323Q | Dostarczanie leków, Zapewnij mgiełkę do dmuchawy Mister |
| Flo-thru 1,0 | Baxter | FT-12100 | służy do zespolenia do L |
| Flo-thru 1,25 | Baxter | FT-12125 | |
| Flo-thru 1,5 | Baxter | FT-12150 | |
| Flo-thru 2,0 | Baxter | FT-12200 | |
| Cloroprep | Becton Dickenson | 260815 | Chirurgiczne przygotowanie skóry |
| Meloxicam | Boehringer Ingelheim Vetmedica, Inc. | 0010-6013-01 | NLPZ do analgezji |
| Hypafix | BSN Medical | 4210 | Bezpieczny opatrunek na rany i cewniki dożylne |
| Rurka dożylna do dmuchawy Mister | Carefusion | 42493E dostosowuje | się do płynów dożylnych do |
| rękojeści dmuchawy/kauteryzacji Mister Bovie | Covidien | E2516 | Hemostaza |
| Rurka do klatki piersiowej | Covidien | 8888561043 | Odprowadza powietrze z jamy klatki piersiowej |
| Kauteryzacja monopolarna | Hemostaza Covidien | Valleylab FT10 | |
| Telpha pad | Covidien | 2132 | Sterylny opatrunek na rany |
| 4-0 Tevdek II Pasma | Deknatel | 7-922 | Szew do zabezpieczenia zwężacza wokół LAD |
| Propofol | Diprivan | 269-29 | Środek indukcyjny |
| Długie ostrze do laryngoskopu | DRE | 12521 | Pozwala na wizualizację tchawicy do intubacji |
| Pady EKG | DRE | 1496 | Monitor rytmu serca |
| laryngoskop | DRE | 12515 | |
| Aparat anestezjologiczny + respirator | DRE Drager- Fabius Tiro | DRE0603FT | Dostarcz pacjentowi tlen i inhalację |
| 5 Ethibond | Ethicon | MG46G | Szew |
| 0 Vicryl | Ethicon | J208H | Szew |
| 2-0 Vicryl | Ethicon | J317H | Szew |
| 3-0 Vicryl | Ethicon | VCP824G | Szew |
| 7-0 Prolene | Ethicon | M8702 | Szew |
| Dermabond | Ethicon | DNX12 | Przylepiec do skóry |
| Ligaclips | Ethicon | Zszywki chirurgiczne | MSC20 |
| Sterylna sól fizjologiczna 20 ml | Fisher Scientific | 20T700220 | Flush do cewników dożylnych |
| Telazol 100 mg / ml | Fort Dodge | 01L60030 | Przedoperacyjna uspokajająca |
| maść z potrójnym antybiotykiem | Johnson & Johnson | 23734 | Miejscowo na ranę |
| 6,0 mm ID rurka dotchawicza | Mallinckrodt | 86049 | Udrożnienie dróg oddechowych dla Revasc, MRI i Terminacji |
| 1-calowa taśma medyczna | Medline | MMM15271Z | Bezpieczny opatrunek na ranę i cewniki dożylne |
| Rurka dotchawicza o średnicy wewnętrznej 4,0 mm | Medline | DYND43040 | Udrożnij drogi oddechowe do hibernacji |
| Rurka dotchawicza | 4,5 mm IDMedline | DYND43045 | Udrożnienie dróg oddechowych do hibernacji |
| 5,0 mm ID rurki dotchawiczej | Medline | DYND43050 | Udrożnienie dróg oddechowych do hibernacji |
| Rurka intubawicza 6,5 mm ID | Medline | DYND43065 | Udrożnienie dróg oddechowych dla Revasc, MRI i Terminacji Rurka |
| intubawicza 7,0 mm ID | Medline | DYND43070 | Udrożnienie dróg oddechowych dla Revasc, MRI i Terminacji |
| Koc Bair Hugger - Duży rozmiar, podwozie | Medline | AUG55501 | System ogrzewania pacjenta |
| Pakiet podstawowy | Medline | DYNJP1000 | Sterylne zasłony i obrusy |
| Wosk kostny | Medline | ETHW31G | Hemostaza ciętej kości |
| Ssanie rurki | Medline | DYND50223 | |
| Medline | DYNDCL03000 | ||
| 1 ml Strzykawka | Medtronic/Covidien | 1188100777 | Podawać środki iniekcyjne |
| 12 ml Strzykawka | Medtronic/Covidien | 8881512878 | Podawać środki iniekcyjne |
| 20 ml Strzykawka | Medtronic/Covidien | 8881520657 | Podawać środki iniekcyjne |
| 3 ml Syinge | Medtronic/Covidien | 1180300555 | Podawać środki do wstrzykiwań |
| 6 mL Strzykawka | Medtronic/Covidien | 1180600777 | Podawać środki do wstrzykiwań |
| 60 ml Strzykawka | Medtronic/Covidien | 8881560125 | Podawać środki do wstrzykiwań |
| Zestaw dmuchawy | Medtronic/Covidien | 22120 | Oczyszcza pole operacyjne w przypadku zespolenia naczyń |
| Roncuronium | Mylan | 67457-228-05 | Środek blokujący nerwowo-mięśniowy |
| # 40 ostrze maszynki do strzyżenia | Oster | 078919-016-701 | Usuń włosy z miejsc operacji |
| Maszynka do strzyżenia włosów | Oster | 078566-011-002 | Usuń włosy z miejsc operacji |
| Bupiwakaina | Pfizer | 00409-1161-01 | Znieczulenie miejscowe |
| Cephazolin | Pfizer | 00409-0805-01 | |
| Antybiotyk Heparyna | Pfizer | 0409-2720-03 | lek przeciwzakrzepowy |
| Lidokaina 2% | Pfizer | 00409-4277-01 | Znieczulenie miejscowe/przeciwarytmiczne |
| sukcynylocholina 20 mg / ml | Pfizer | 00409-6629-02 | Środek blokujący nerwowo-mięśniowy |
| Monitor anestezjologiczny | Phillips Inteligencja | MP70 | Wspomaga wentylację za pomocą inhalatora |
| Sztuczne łzy | Rugby | 0536-1086-91 | Smaruj oczy, aby zapobiec wysuszeniu rogówki |
| Buprenorfina 0,3 mg / ml | Sigma Aldrich | B9275 | Przedoperacyjny środek przeciwbólowy do zabiegów przeżywych |
| Izofluran | Sigma Aldrich | CDS019936 | Znieczulenie ogólne - wziewny |
| 36" Przewody do monitorowania ciśnienia Smith' | s Medyczny | MX563 | Connect art. Linia do przetwornika |
| 48" Przewody do monitorowania ciśnienia Smith' | s Medyczny | MX564 | Connect art. Linia do przetwornika |
| Jelco 18 ga cewnik dożylny | Smiths medical | 4054 | dostęp dożylny w Revasc, MRI i termiczny |
| cewnik dożylny Jelco 20 ga | Smiths medical | 4059 | dostęp dożylny w rezonansie magnetycznym |
| Jelco 22 ga Cewnik dożylny | Smiths medical | 4050 | Dostęp dożylny w procedurze hibernacji |
| OPVAC Synergy II | Terumo Układ sercowo-naczyniowy | 401-230 | Pozycjoner i stabilizator serca |
| Piła mostkowa / piła do sekcji zwłok | Thermo Fisher | 812822 | Służy do otwierania jamy klatki piersiowej |
| Delrin Constrictor | U of MN | Wykonane na zamówienie | Tworzy zwężenie butli |
| z tlenem LAD E | różne | różne | Używany do dmuchawy Zamgławiacza, jeśli maszyna anestezjologiczna nie ma pomocniczego przepływomierza |
| Przetwornik ciśnienia | różne | Musi dostosować się do monitora anestezjologicznego | Monitoruj bezpośrednie ciśnienie tętnicze |
| Ksylazyna 100 mg / ml | Vedco | 468RX | Przedoperacyjny Uspokajający / przeciwbólowy |
Bibliografia
- Mozaffarian, D., et al. Heart Disease and Stroke Statistics-2016 Update A Report From the American Heart Association. Circulation. 133 (4), 350(2015).
- Di Carli, M. F., et al. Value of metabolic imaging with positron emission tomography for evaluating prognosis in patients with coronary artery disease and left ventricular dysfunction. Am J Cardiol. 73 (8), 527-533 (1994).
- Gerber, B. L., et al. Prognostic value of myocardial viability by delayed-enhanced magnetic resonance in patients with coronary artery disease and low ejection fraction: impact of revascularization therapy. J Am Coll Cardiol. 59 (9), 825-835 (2012).
- McFalls, E., et al. Regional glucose uptake within hypoperfused swine myocardium as measured by positron emission tomography. Am J Physiol-Heart C. 272 (1), 343-349 (1997).
- Velazquez, E. J., et al. Coronary-artery bypass surgery in patients with left ventricular dysfunction. New Engl J Med. 364 (17), 1607-1616 (2011).
- Canty, J. M., Fallavollita, J. A. Hibernating myocardium. J Nucl Cardiol. 12 (1), 104-119 (2005).
- Joyce, D., et al. Revascularization and ventricular restoration in patients with ischemic heart failure: the STICH trial. Curr Opin Cardiol. 18 (6), 454-457 (2003).
- Shah, B. N., Khattar, R. S., Senior, R. The hibernating myocardium: current concepts, diagnostic dilemmas, and clinical challenges in the post-STICH era. Eur Heart J. 34 (18), 1323-1336 (2013).
- Stone, L. L. H., et al. Magnetic resonance imaging assessment of cardiac function in a swine model of hibernating myocardium 3 months following bypass surgery. J Thorac Cardiov Sur. , (2016).
- Kukulski, T., et al. Implication of right ventricular dysfunction on long-term outcome in patients with ischemic cardiomyopathy undergoing coronary artery bypass grafting with or without surgical ventricular reconstruction. J Thorac Cardiov Sur. 149 (5), 1312-1321 (2014).
- Rahimtoola, S. H. The hibernating myocardium. Am Heart J. 117 (1), 211-221 (1989).
- Fallavollita, J. A., Logue, M., Canty, J. M. Stability of hibernating myocardium in pigs with a chronic left anterior descending coronary artery stenosis: absence of progressive fibrosis in the setting of stable reductions in flow, function and coronary flow reserve. J Am Coll Cardiol. 37 (7), 1989-1995 (2001).
- White, F. C., Carroll, S. M., Magnet, A., Bloor, C. M. Coronary collateral development in swine after coronary artery occlusion. Circ Res. 71 (6), 1490-1500 (1992).
- Viscardi, A. V., Hunniford, M., Lawlis, P., Leach, M., Turner, P. V. Development of a Piglet Grimace Scale to Evaluate Piglet Pain Using Facial Expressions Following Castration and Tail Docking: A Pilot Study. Front Vet Sci. 4, 51(2017).
- Holley, C. T., Long, E. K., Lindsey, M. E., McFalls, E. O., Kelly, R. F. Recovery of hibernating myocardium: what is the role of surgical revascularization. J Cardiac Surg. 30 (2), 224-231 (2015).
- Cooper, H. A., Braunwald, E. Clinical importance of stunned and hibernating myocardium. Coronary Artery Dis. 12 (5), 387-392 (2001).
- McFalls, E. O., et al. Utility of positron emission tomography in predicting improved left ventricular ejection fraction after coronary artery bypass grafting among patients with ischemic cardiomyopathy. Cardiology. 93 (1-2), 105-112 (2000).
- Pasquet, A., et al. Prediction of global left ventricular function after bypass surgery in patients with severe left ventricular dysfunction. Impact of pre-operative myocardial function, perfusion, and metabolism. Eur Heart J. 21 (2), 125-136 (2000).
Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.
Przedruki i uprawnienia
