Subskrypcja JoVE jest wymagana do oglądania tego materiału. Zaloguj się lub rozpocznij bezpłatny okres próbny.

Artykuł metodologiczny

Nowatorska technika szwów tenorrhaphy z przeszczepem kolagenu modyfikowanym tkankowo w celu naprawy dużych ubytków ścięgien

2.6K wyświetleń

⸱

DOI:

10.3791/57696

⸱

10 grudnia 2021

 ,  , 
1Division of Surgery and Interventional Science, University College London, 2Blond McIndoe Laboratories, Division of Cell Matrix and Regenerative Medicine, MAHSC, University of Manchester, 3Department of Surgical Research, Northwick Park Institute for Medical Research, Northwick Park Hospital

W tym artykule

Podsumowanie

W tym artykule prezentujemy protokół in vitro i in situ do naprawy szczeliny ścięgna do 1,5 cm poprzez wypełnienie jej zmodyfikowanym przeszczepem kolagenu. Osiągnięto to poprzez opracowanie zmodyfikowanej techniki szwów, która przejmie obciążenie mechaniczne do momentu, gdy przeszczep dojrzeje do tkanki gospodarza.

Streszczenie

Chirurgiczne leczenie dużych wad ścięgien za pomocą przeszczepów ścięgien jest wyzwaniem, ponieważ istnieje skończona liczba miejsc, w których dawcy mogą być łatwo zidentyfikowani i wykorzystani. Obecnie luka ta jest wypełniona przeszczepami automatycznymi, allo-, ksenologicznymi lub sztucznymi ścięgnami, ale metody kliniczne ich zabezpieczania niekoniecznie są możliwe do przełożenia na zwierzęta ze względu na skalę. W celu oceny nowych biomateriałów lub zbadania przeszczepu ścięgna zbudowanego z kolagenu typu 1, opracowaliśmy zmodyfikowaną technikę szwów, aby pomóc utrzymać zmodyfikowane ścięgno w jednej linii z końcami ścięgien. Właściwości mechaniczne tych przeszczepów są gorsze od ścięgna rodzimego. Aby włączyć zmodyfikowane ścięgno do klinicznie istotnych modeli naprawy obciążeń, przyjęto strategię odciążenia przeszczepu ścięgna z inżynierii tkankowej i umożliwienia dojrzewania i integracji zmodyfikowanego ścięgna in vivo, aż do momentu powstania mechanicznie zdrowego neościęgna. Opisujemy tę technikę za pomocą włączenia kolagenowego konstruktu ścięgna inżynierii tkankowej typu 1.

Wprowadzenie

Zerwanie ścięgna może wystąpić z powodu czynników zewnętrznych, takich jak urazowe rany szarpane lub nadmierne obciążenie ścięgna. Ze względu na zewnętrzne siły rozciągające wywierane na naprawę ścięgna, w przypadku większości technik naprawy ścięgien nieuchronnie tworzy się szczelina. Obecnie ubytki/luki w ścięgnach są wypełniane przeszczepami automatycznymi, allo-, kseno- lub sztucznymi, ale ich dostępność jest ograniczona, a miejsce dawcze jest źródłem zachorowalności.

Oparte na inżynierii tkankowej podejście do wytwarzania przeszczepu ścięgien z naturalnego polimeru, takiego jak kolagen, ma tę szczególną zaletę, że jest biokompatybilne i może dostarczyć ważnych składników macierzy zewnątrzkomórkowej (ECM), które ułatwiają integrację komórek. Jednak ze względu na brak wyrównania włóknistego, właściwości mechaniczne ścięgna inżynieryjnego (ET) są gorsze od ścięgna natywnego. Aby zwiększyć właściwości mechaniczne słabszego kolagenu, zastosowano wiele metod, takich jak fizyczne sieciowanie w próżni, promieniowanie UV i zabiegi dehydrotermalne1. Ponadto, poprzez chemiczne sieciowanie ryboflawiną, metodami enzymatycznymi i nieenzymatycznymi zwiększono gęstość kolagenu i moduł Younga kolagenu in vitro2,3. Jednak dodanie środków sieciujących zagrożona jest biokompatybilność kolagenu, ponieważ badania wykazały 33% zmianę właściwości mechanicznych i 40% utratę żywotności komórek3,4,5. Stopniowe narastanie wyrównania i wytrzymałości mechanicznej można uzyskać poprzez cykliczne obciążenie6; Można to jednak skutecznie uzyskać iin vivo7.

Aby ET mógł zintegrować się in vivo i uzyskać siłę bez potrzeby chemicznej zmiany, jednym z podejść byłoby użycie techniki stabilizującego szwu, aby utrzymać słabszy konstrukt w miejscu. Większość napraw ścięgien opiera się na konstrukcji szwu, który utrzymuje końce ścięgien razem; W związku z tym modyfikacja tych istniejących technik może zapewnić logiczne rozwiązanie8,9.

Do lat 80-tych powszechnie stosowano naprawę dwuniciową, ale najnowsza literatura chirurgiczna opisuje użycie 4 nici, 6 nici lub nawet 8 nici w naprawie 10,11. W 1985 roku Savage opisał techniki szwów 6-niciowych z 6 punktami kotwiczenia, które były znacznie silniejsze niż technika szwów Bunnell, która wykorzystuje 4 nici 12. Ponadto naprawy 8-niciowe są o 43% silniejsze niż inne nici w modelach zwłok i in situ, ale naprawy te nie są powszechnie praktykowane, ponieważ dokładne odtworzenie napraw staje się technicznie trudne13,14,15,16. W związku z tym większa liczba pasm szwu rdzeniowego wiąże się z proporcjonalnym wzrostem właściwości biomechanicznych naprawianego ścięgna. Dochodzi jednak do utraty żywotności komórek wokół punktów szwów, a uraz spowodowany nadmiernym szyciem może być niekorzystny dla ścięgna, co może zagrozić gojeniu się ścięgien17. Techniki szwów powinny zapewniać silną naprawę geometryczną, która jest zrównoważona i stosunkowo nieelastyczna, aby zminimalizować odstępy między ścięgnami po naprawie. Ponadto położenie szwu i jego węzłów musi być strategicznie rozmieszczone, aby nie przeszkadzały w ślizganiu się, ukrwieniu i gojeniu, dopóki nie zostanie uzyskana odpowiednia wytrzymałość10,18.

Aby ustalić możliwość zabezpieczenia słabszego przeszczepu ET lub innego materiału do przeszczepu pomiędzy zerwanym ścięgnem, opracowaliśmy nową technikę szwów, która może odciążyć przeszczep, tak aby mógł dojrzeć i stopniowo zintegrować się z tkanką gospodarza in vivo.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Protokół

UWAGA: Projekt eksperymentu i etyczne zatwierdzenie zostały uzyskane od UCL Institutional Review Board (IRB). Wszystkie eksperymenty zostały przeprowadzone zgodnie z przepisami Ministerstwa Spraw Wewnętrznych i wytycznymi Ustawy o zwierzętach (procedura naukowa) z 1986 r. ze zmienionym ustawodawstwem Dyrektywy Europejskiej 2010/63/UE (2013). Króliki były kontrolowane przez imiennego lekarza weterynarii (NVS) okresowo i dwa razy dziennie przez wyznaczonego urzędnika ds. opieki i dobrostanu zwierząt (NACWO) (zgodnie z wytycznymi i przepisami Ministerstwa Spraw Wewnętrznych). Nie okazywali żadnych oznak bólu, dopóki nie zostali poddani eutanazji.

1. Przygotowanie przeszczepu ścięgna metodą inżynierii tkankowej (ET)

  1. Aby wytworzyć hydrożel kolagenowy, dodaj 4 ml monomerycznego roztworu kolagenu typu 1 z ogona szczura (2,15 mg / ml w 0,6% kwasu octowego z 0,2% w/v białka całkowitego) i 500 μl 10x Minimal Essential Medium. Zneutralizować to przez miareczkowanie za pomocą 5 M i 1 M wodorotlenku sodu i dodać 500 μl zmodyfikowanego podłoża Eagle (DMEM) firmy Dulbecco.
  2. Wlej 5 ml tego roztworu do specjalnie zbudowanej prostokątnej metalowej formy (33 mm × 22 mm × 10 mm, waga 120 g) (Rysunek 1). Przechowywać formę w inkubatorze CO2 w temperaturze 37 °C i 5% CO2 przez 15 minut, aby umożliwić montaż matrycy19.

2. Produkcja przeszczepu

  1. Po polimeryzacji wyjmij hydrożel kolagenowy z formy i umieść go w standardowym plastikowym zespole kompresyjnym (Rysunek 2A)19.
  2. Umieść hydrożel kolagenowy pomiędzy dwoma arkuszami siatki nylonowej o grubości 50 μm i przyłóż obciążenie statyczne 120 g (całkowita powierzchnia 7,4 cm2, co odpowiada ciśnieniu odpowiadającemu 1,6 kPa) przez 5 minut, aby usunąć płyn śródmiąższowy z hydrożelu (Rysunek 2A). Użyj czterech warstw bibuły filtracyjnej, aby wchłonąć uwolniony płyn z hydrożeli.
  3. Użyj czterech warstw sprasowanych żeli zwijanych jedna na drugiej (Rysunek 2B) i pociętych na 15 mm segmenty (Rysunek 2C), aby wytworzyć ET.
    UWAGA: W eksperymentach wykorzystano białe samce królików nowozelandzkich w wieku od 16 do 25 tygodni.
  4. Uspokoić zwierzęta domięśniową (i.m.) dawką Hypnorm (0,3 mg/ml) i poddać je eutanazji poprzez podanie przedawkowania pentobarbitonu.
  5. Bezpośrednio po eutanazji przytnij włosy na obu tylnych nogach. Następnie za pomocą ostrza chirurgicznego w rozmiarze 20 wykonaj 9-centymetrowe nacięcie wokół dolnego obszaru piszczelowo-strzałkowego, aby odsłonić ścięgno piszczelowo-tylne (TP).
  6. Za pomocą ostrza chirurgicznego tej samej wielkości wycina się ścięgna TP lapine o średniej długości 70 mm i utrzymuje wilgoć w PBS podczas procesu eksperymentalnego, aby uniknąć wysuszenia.

3. Rozwinięta nowatorska technika Tenorrhaphy

UWAGA: Szwy (patrz Tabela Materiałów) są niewchłanialne i wykonane z izotaktycznego krystalicznego stereoizomeru polipropylenu, który jest syntetyczną liniową poliolefiną. Szwy rdzeniowe blokujące składały się głównie z 3-0, a szwy obwodowe 6-0. Były to dwa główne szwy używane we wszystkich eksperymentach.

  1. Za pomocą ostrza chirurgicznego przetnij ścięgno TP w punkcie środkowym. Wytnij 15-milimetrowy odcinek ścięgna od środka ścięgna i zastąp go przeszczepem kolagenu ET (Rysunek 2D). Zablokuj szew 3-0 proksymalnie z dala od natywnych końców ścięgien (Rysunek 3A).
  2. Przełóż szwy rdzeniowe 3-0 powyżej całej długości przeszczepu i zablokuj dystalnie od odciętego końca.
  3. Przymocuj oba końce ET do ścięgna natywnego za pomocą szwów 6-0 i ciągłych biegnących wokół obwodu, łącząc dwa końce ścięgien (Rysunek 3B). Odbywa się to tak, aby przeszczep mógł być łatwo przesuwany na szwie, wywierając napięcie na natywne ścięgno20.
  4. Po zabezpieczeniu szwu zgodnie z powyższym opisem należy ręcznie upewnić się, że napięcie szwów jest odpowiednie i że nie ma wiotkości w całym szwie.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Wyniki

Użyliśmy przeszczepów kolagenowych wykonanych z kolagenu typu I, ponieważ jest to dominujące białko występujące w ścięgnie. Stanowi ono niemal 95% całkowitej zawartości kolagenu w ścięgnie; w związku z tym kolagen wykazuje wszystkie idealne właściwości pozwalające na naśladowanie ścięgna in vivo21,2.

W niniejszym badaniu wykorzystano kolagen typu I wyekstrahowan...

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Dyskusja

W tym badaniu przeszczepy kolagenu typu I wybrano jako przeszczep ścięgna, ponieważ kolagen jest naturalnym polimerem i jest używany jako biomateriał do różnych zastosowań inżynierii tkankowej27,28. Ponadto kolagen stanowi 60% suchej masy ścięgna, z czego 95% to kolagen typu 1 21,29,30,31,32.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Oświadczenia

Autorzy oświadczają, że nie pozostają w konflikcie interesów.

Podziękowania

Autorzy pragną podziękować UCL za finansowanie tego projektu.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
Ogon szczura typ 1 Kolagen First Link, Birmingham, Wielka Brytania60-30-810
nici prolenowe 6-0Ethicon Ltd, Edynburg, Wielka Brytania
szwy prolenowe 3-0Ethicon Ltd, Edynburg, Wielka BrytaniaD8911
Bibuła filtracyjna WhatmanSIGMA-ALDRICH 
Gibco  DMEM, wysoka glukozaThermo Fisher Scientific 
Siatka nylonowa Plastok (Siatki i Filtracja) Sp. z o.o.nie
EP8726HWHA1001015511574486

Bibliografia

  1. Wollensak, G., Spoerl, E., Seiler, T. Riboflavin/ultraviolet-a-induced collagen crosslinking for the treatment of keratoconus. American Journal of Ophthalmology. 135, 620-627 (2003).
  2. Tanzer, M. L. Cross-Linking of Collagen. Science. 180, 561-566 (1973).
  3. Reiser, K., McCormick, R. J., Rucker, R. B. Enzymatic and nonenzymatic cross-linking of collagen and elastin. FASEB Journal. 6, 2439-2449 (1992).
  4. Kanungo, B. P., Gibson, L. J. Density-property relationships in collagen-glycosaminoglycan scaffolds. Acta Biomaterialia. 6, 344-353 (2010).
  5. Weadock, K. S., Miller, E. J., Bellincampi, L. D., Zawadsky, J. P., Dunn, M. G. Physical crosslinking of collagen fibers: comparison of ultraviolet irradiation and dehydrothermal treatment. Journal of Biomedical Materials Research. 29, 1373-1379 (1995).
  6. Kalson, N. S., et al. Slow Stretching That Mimics Embryonic Growth Rate Stimulates Structural and Mechanical Development of Tendon-Like Tissue In Vitro. Developmental Dynamics. 240, 2520-2528 (2011).
  7. Torigoe, K., et al. Mechanisms of collagen fibril alignment in tendon injury: from tendon regeneration to artificial tendon. Journal of Orthopaedic Research. 29, 1944-1950 (2011).
  8. Ketchum, L. D. Suture materials and suture techniques used in tendon repair. Hand Clinics. 1, 43-53 (1985).
  9. Lawrence, T. M., Davis, T. R. A biomechanical analysis of suture materials and their influence on a four-strand flexor tendon repair. The Journal of Hand Surgery. 30, 836-841 (2005).
  10. Strickland, J. W. Development of flexor tendon surgery: Twenty-five years of progress. The Journal of Hand Surgery. 25, 214-235 (2000).
  11. Moriya, K., et al. Clinical outcomes of early active mobilization following flexor tendon repair using the six-strand technique: short- and long-term evaluations. The Journal of Hand Surgery, European volume. , (2014).
  12. Savage, R. In vitro studies of a new method of flexor tendon repair. Journal of Hand Surgery. 10, 135-141 (1985).
  13. Uslu, M., et al. Flexor tendons repair: effect of core sutures caliber with increased number of suture strands and peripheral sutures. A sheep model. Orthopaedics & Traumatology: Surgery & Research : OTSR. 100, 611-616 (2014).
  14. Osei, D. A., et al. The Effect of Suture Caliber and Number of Core Suture Strands on Zone II Flexor Tendon Repair: A Study in Human Cadavers. Journal of Hand Surgery. 39, 262-268 (2013).
  15. Dovan, T. T., Ditsios, K. T., Boyer, M. I. Eight-strand core suture technique for repair of intrasynovial flexor tendon lacerations. Techniques in Hand & Upper Extremity Surgery. 7, 70-74 (2003).
  16. Silva, M. J., et al. The effects of multiple-strand suture techniques on the tensile properties of repair of the flexor digitorum profundus tendon to bone. The Journal of Bone and Joint surgery. 80, American Volume 1507-1514 (1998).
  17. Wong, J. K., Alyouha, S., Kadler, K. E., Ferguson, M. W., McGrouther, D. A. The cell biology of suturing tendons. Matrix Biology. 29, 525-536 (2010).
  18. Strickland, J. W. Flexor Tendon Injuries: II. Operative Technique. The Journal of the American Academy of Orthopaedic Surgeons. 3, 55-62 (1995).
  19. Brown, R. A., Wiseman, M., Chuo, C. B., Cheema, U., Nazhat, S. N. Ultrarapid Engineering of Biomimetic Materials and Tissues: Fabrication of Nano- and Microstructures by Plastic Compression. Advanced Functional Materials. 15, 1762-1770 (2005).
  20. Sawadkar, P., Alexander, S., Mudera, V. Tissue-engineered collagen grafts to treat large tendon defects. Regenerative Medicine. 9, 249-251 (2014).
  21. Evans, J. H., Barbenel, J. C. Structural and mechanical properties of tendon related to function. Equine veterinary journal. 7, 1-8 (1975).
  22. Riley, G. P., et al. Glycosaminoglycans of human rotator cuff tendons: changes with age and in chronic rotator cuff tendinitis. Annals of the Rheumatic Diseases. 53, 367-376 (1994).
  23. Bell, E., Ivarsson, B., Merrill, C. Production of a tissue-like structure by contraction of collagen lattices by human fibroblasts of different proliferative potential in vitro. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 76, 1274-1278 (1979).
  24. Kim, H. M., et al. Technical and biological modifications for enhanced flexor tendon repair. The Journal of Hand Surgery. 35, 1031-1038 (2010).
  25. Kim, J. B., de Wit, T., Hovius, S. E., McGrouther, D. A., Walbeehm, E. T. What is the significance of tendon suture purchase. The Journal of Hand Surgery, European Volume. 34, 497-502 (2009).
  26. Sawadkar, P., et al. Development of a surgically optimized graft insertion suture technique to accommodate a tissue-engineered tendon in vivo. BioResearch Open Access. 2, 327-335 (2013).
  27. Hadjipanayi, E., et al. Mechanisms of structure generation during plastic compression of nanofibrillar collagen hydrogel scaffolds: towards engineering of collagen. Journal of Tissue Engineering and Regenerative Medicine. 5, 505-519 (2011).
  28. Micol, L. A., et al. High-density collagen gel tubes as a matrix for primary human bladder smooth muscle cells. Biomaterials. 32, 1543-1548 (2011).
  29. Lian Cen, L., Liu, W., Cui, L., Zhang, W., Cao, Y. Collagen Tissue Engineering: Development of Novel Biomaterials and applications. Pediatric Research. 63, 492-496 (2008).
  30. Harris, M. T., et al. Mesenchymal stem cells used for rabbit tendon repair can form ectopic bone and express alkaline phosphatase activity in constructs. Journal of Orthopaedic Research. 22, 998-1003 (2004).
  31. Butler, D. L., et al. The use of mesenchymal stem cells in collagen-based scaffolds for tissue-engineered repair of tendons. Nature Protocols. 5, 849-863 (2010).
  32. Cen, L., Liu, W., Cui, L., Zhang, W., Cao, Y. Collagen Tissue Engineering: Development of Novel Biomaterials and Applications. Pediatric Research. 63, 492-496 (2008).
  33. Yamaguchi, H., Suenaga, N., Oizumi, N., Hosokawa, Y., Kanaya, F. Will Preoperative Atrophy and Fatty Degeneration of the Shoulder Muscles Improve after Rotator Cuff Repair in Patients with Massive Rotator Cuff Tears. Advances in Orthopedics. 2012, 195876(2012).
  34. Silver, F. H., Freeman, J. W., Seehra, G. P. Collagen self-assembly and the development of tendon mechanical properties. Journal of Biomechanics. 36, 1529-1553 (2003).
  35. Schneppendahl, J., et al. Initial stability of two different adhesives compared to suture repair for acute Achilles tendon rupture--a biomechanical evaluation. International Orthopaedics. 36, 627-632 (2012).
  36. Herbort, M., et al. Biomechanical comparison of the primary stability of suturing Achilles tendon rupture: a cadaver study of Bunnell and Kessler techniques under cyclic loading conditions. Archives of Orthopaedic and Trauma Surgery. 128, 1273-1277 (2008).
  37. Piskin, A., et al. Tendon repair with the strengthened modified Kessler, modified Kessler, and Savage suture techniques: a biomechanical comparison. Acta Orthopaedica et Traumatologica Turcica. 41, 238-243 (2007).
  38. de Wit, T., Walbeehm, E. T., Hovius, S. E., McGrouther, D. A. The mechanical interaction between three geometric types of nylon core suture and a running epitenon suture in repair of porcine flexor tendons. The Journal of Hand Surgery, European Volume. 38, 788-794 (2013).
  39. Trail, I. A., Powell, E. S., Noble, J. The mechanical strength of various suture techniques. Journal of Hand Surgery. 17, 89-91 (1992).
  40. Wong, J. K., Peck, F. Improving results of flexor tendon repair and rehabilitation. Plastic and Reconstructive Surgery. 134, 913-925 (2014).
  41. Amis, A. A. Absorbable sutures in tendon repair. Journal of Hand Surgery. 21, 286(1996).
  42. Faggioni, R., de Courten, C. Short and long-term advantages and disadvantages of prolene monofilament sutures in penetrating keratoplasty. Klinische Monatsblatter fur Augenheilkunde. 200, 395-397 (1992).
  43. Wong, J. K., Cerovac, S., Ferguson, M. W., McGrouther, D. A. The cellular effect of a single interrupted suture on tendon. Journal of Hand Surgery. 31, 358-367 (2006).
  44. Savage, R., Risitano, G. Flexor tendon repair using a "six strand" method of repair and early active mobilisation. Journal of Hand Surgery. 14, 396-399 (1989).
  45. Okubo, H., Kusano, N., Kinjo, M., Kanaya, F. Influence of different length of core suture purchase among suture row on the strength of 6-strand tendon repairs. Hand Surgery. 20, 19-24 (2015).
  46. Noguchi, M., Seiler, J. G., Gelberman, R. H., Sofranko, R. A., Woo, S. L. In vitro biomechanical analysis of suture methods for flexor tendon repair. Journal of Orthopaedic Research. 11, 603-611 (1993).
  47. Aoki, M., Pruitt, D. L., Kubota, H., Manske, P. R. Effect of suture knots on tensile strength of repaired canine flexor tendons. Journal of Hand Surgery. 20, 72-75 (1995).
  48. Pruitt, D. L., Aoki, M., Manske, P. R. Effect of suture knot location on tensile strength after flexor tendon repair. The Journal of Hand Surgery. 21, 969-973 (1996).
  49. Khor, W. S., et al. Improving Outcomes in Tendon Repair: A Critical Look at the Evidence for Flexor Tendon Repair and Rehabilitation. Plastic and Reconstructive Surgery. 138, 1045-1058 (2016).
  50. Strickland, J. W. Flexor Tendon Injuries: I. Foundations of Treatment. The Journal of the American Academy of Orthopaedic Surgeons. 3, 44-54 (1995).
  51. Mashadi, Z. B., Amis, A. A. Strength of the suture in the epitenon and within the tendon fibres: development of stronger peripheral suture technique. Journal of Hand Surgery. 17, 172-175 (1992).
  52. Wade, P. J., Muir, I. F., Hutcheon, L. L. Primary flexor tendon repair: the mechanical limitations of the modified Kessler technique. Journal of Hand Surgery. 11, 71-76 (1986).
  53. Wade, P. J., Wetherell, R. G., Amis, A. A. Flexor tendon repair: significant gain in strength from the Halsted peripheral suture technique. Journal of Hand Surgery. 14, 232-235 (1989).
  54. Silfverskiold, K. L., May, E. J. Gap formation after flexor tendon repair in zone II. Results with a new controlled motion programme. Scandinavian Journal of Plastic and Reconstructive Surgery and Hand Surgery / Nordisk Plastikkirurgisk forening [and] Nordisk Klubb for Handkirurgi. 27, 263-268 (1993).
  55. Silfverskiold, K. L., May, E. J., Tornvall, A. H. Gap formation during controlled motion after flexor tendon repair in zone II: a prospective clinical study. The Journal of Hand Surgery. 17, 539-546 (1992).
  56. Silfverskiold, K. L., May, E. J. Flexor tendon repair in zone II with a new suture technique and an early mobilization program combining passive and active flexion. The Journal of Hand Surgery. 19, 53-60 (1994).
  57. Pennington, D. G. Atraumatic retrieval of the proximal end of a severed digital flexor tendon. Plastic and Reconstructive Surgery. 60, 468-469 (1977).
  58. Lin, G. T., An, K. N., Amadio, P. C., Cooney, W. P. Biomechanical studies of running suture for flexor tendon repair in dogs. The Journal of Hand Surgery. 13, 553-558 (1988).
  59. Papandrea, R., Seitz, W. H., Shapiro, P., Borden, B. Biomechanical and clinical evaluation of the epitenon-first technique of flexor tendon repair. The Journal of Hand Surgery. 20, 261-266 (1995).

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Przedruki i uprawnienia

Tagi

Naprawa ubytku ci gnakolagen typu 1w a ciwo ci mechaniczneintegracja in vivotworzenie nowego ci gnaprzygotowanie hydro elu kolagenowegokontrola napi cia szw wnaprawa przerwy w ci gnie
Nowatorska technika szwów tenorrhaphy z przeszczepem kolagenu modyfikowanym tkankowo w celu naprawy dużych ubytków ścięgien
Skontaktuj się z nami
Poleć bibliotece

Prywatność

Warunki Korzystania

Zasady

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. Wszelkie prawa zastrzeżone.