Artykuł metodologiczny

Manipulacja mikrocząstkami poprzez powierzchniowe fale akustyczne z wzbudzeniami o podwójnej częstotliwości

DOI:

10.3791/58085

⸱

21 sierpnia 2018

 , 
1School of Mechanical and Aerospace Engineering, Nanyang Technological University

W tym artykule

Podsumowanie

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Przedstawiono protokół manipulowania mikrocząstkami w kanale mikroprzepływowym z wzbudzeniem o podwójnej częstotliwości.

Streszczenie

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Pokazujemy metodę zwiększania zdolności strojenia fali akustycznej na powierzchni stojącej (SSAW) do manipulacji mikrocząstkami w systemie lab-on-a-chip (LOC). Jednoczesne wzbudzenie częstotliwości podstawowej i jej trzeciej harmonicznej, które określa się jako wzbudzenie dwuczęstotliwościowe, do pary przetworników międzypalcowych (IDT) może wygenerować nowy rodzaj stojących fal akustycznych w kanale mikroprzepływowym. Zmiana mocy i fazy w sygnałach wzbudzenia o podwójnej częstotliwości powoduje powstanie rekonfigurowalnego pola siły promieniowania akustycznego przyłożonej do mikrocząstek w poprzek mikrokanału (np. liczba i lokalizacja węzłów ciśnieniowych oraz stężenia mikrocząstek w odpowiednich węzłach ciśnienia). W artykule tym pokazano, że czas ruchu mikrocząstki do tylko jednego węzła ciśnienia może być skrócony ~2-krotnie przy stosunku mocy częstotliwości podstawowej większym niż ~90%. Natomiast w mikrokanale znajdują się trzy węzły ciśnienia, jeśli są mniejsze niż ten próg. Co więcej, dostosowanie początkowej fazy między częstotliwością podstawową a trzecią harmoniczną skutkuje różnymi szybkościami ruchu trzech węzłów ciśnieniowych SSAW, a także procentową zawartością mikrocząstek w każdym węźle ciśnieniowym w mikrokanale. Istnieje dobra zgodność między obserwacją eksperymentalną a przewidywaniami numerycznymi. Ta nowatorska metoda wzbudzania może być łatwo i nieinwazyjnie zintegrowana z systemem LOC, z szerokim zakresem możliwości i tylko kilkoma zmianami w konfiguracji eksperymentalnej.

Wprowadzenie

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Technologia LOC integruje jedną lub kilka funkcji na mikrochipie dla biologii, chemii, biofizyki i procesów biomedycznych. LOC umożliwia konfigurację laboratorium w skali mniejszej niż submilimetry, szybkie tempo reakcji, krótki czas reakcji, wysoką kontrolę procesu, niskie zużycie objętości (mniej odpadów, niższy koszt odczynników i mniejsza wymagana objętość próbki), wysoką przepustowość dzięki zrównolegleniu, niski koszt przyszłej produkcji masowej i opłacalne materiały jednorazowego użytku, wysokie bezpieczeństwo dla chemikaliów, badania radioaktywne lub biologiczne oraz zalety kompaktowego i przenośnego urządzenia1,2. Precyzyjna manipulacja komórkami (tj. akumulacja i separacja) ma kluczowe znaczenie w analizie i diagnostyce opartej na LOC3,4. Jednak dokładność i powtarzalność manipulacji mikrocząstkami wiąże się z wieloma wyzwaniami. Wiele technik, takich jak elektroosmoza5, dielektroforeza (DEP)6, magnetoforeza7, termoforeza8,9, podejście optyczne10, podejście optoelektroniczne11, podejście hydrodynamiczne12 i akustoforeza13,14,15, zostały opracowane. Dla porównania, podejścia akustyczne są odpowiednie dla aplikacji LOC, ponieważ teoretycznie wieloma rodzajami mikrocząstek/komórek można skutecznie i nieinwazyjnie manipulować z wystarczająco wysokim kontrastem (gęstością i ściśliwością) w porównaniu z otaczającym płynem. W związku z tym, w porównaniu do swoich odpowiedników, podejścia akustyczne są z natury odpowiednie dla większości mikrocząstek i obiektów biologicznych, bez względu na ich właściwości optyczne, elektryczne i magnetyczne16.

Powierzchniowe fale akustyczne (SAW) z IDT rozchodzą się głównie na powierzchni podłoża piezoelektrycznego o grubości kilku długości fal, a następnie przeciekają pod kątem Rayleigha do płynu w mikrokanale, zgodnie z prawem Snella17,18,19,20,21,22. Mają one zalety techniczne, takie jak wysoka efektywność energetyczna wzdłuż powierzchni dzięki lokalizacji energii, duża elastyczność projektowania przy wysokiej częstotliwości, dobra integracja systemu z kanałem mikroprzepływowym i miniaturyzacja za pomocą technologii systemów mikroelektroniczno-mechanicznych (MEMS) oraz wysoki potencjał masowej produkcji23. W tym protokole SAW są generowane z pary identycznych IDT i propagowane w przeciwnym kierunku w celu wygenerowania fali stojącej lub SSAW w mikrokanale, gdzie zawieszone mikrocząstki są popychane do węzłów ciśnieniowych, głównie przez przyłożoną siłę promieniowania akustycznego24. Amplituda takiej wypadkowej siły zależy od częstotliwości wzbudzenia, wielkości mikrocząstek i ich akustycznego współczynnika kontrastu22,25.

Takie akustoforeza ma ograniczenie do z góry określonych wzorców manipulacyjnych, które nie są łatwe do regulacji. Częstotliwość wzbudzenia IDT zależy od ich okresowej odległości, więc szerokość pasma jest dość ograniczona. Opracowano kilka strategii mających na celu zwiększenie możliwości przestrajania i manipulacji. Pierwszy i drugi tryb akustycznych fal stojących zastosowanych w różnych częściach mikrokanału może skuteczniej rozdzielać mikrocząstki w zależności od różnych prędkości ruchu w kierunku linii węzłowych26. Te dwa tryby można również zastosować do całej części mikrokanału i przełączać naprzemiennie27,28,29. Jednak do tego celu potrzebna jest duża liczba urządzeń (tj. trzy generatory funkcyjne, dwie jednostki dopasowujące impedancję i przekaźnik elektromagnetyczny), przy zwiększonych kosztach i złożoności sterowania zestawu eksperymentalnego ze względu na różne impedancje elektryczne przy częstotliwości podstawowej i trzeciej harmonicznej płytki piezoceramicznej30. Co więcej, przetworniki międzypalcowe z ukośnymi palcami (SFIT) mogą być stosowane do regulacji komórek i wzoru mikrocząstek poprzez wzbudzanie okresu skośnych palców dla określonego rezonansu20,31. Jednak wtedy szerokość pasma jest odwrotnie proporcjonalna do liczby skośnych palców. Wielociśnieniowe linie węzłowe mają wyższą skuteczność separacji i czułość w porównaniu z pojedynczą linią węzłową w konwencjonalnym separatorze mikrocząstek opartym na SSAW. Alternatywnie, położenie węzłów ciśnienia można również zmienić, po prostu dostosowując różnicę faz zastosowaną do dwóch IDT w design32,33.

Podstawowa częstotliwość i trzecia harmoniczna IDT mają podobne odpowiedzi częstotliwościowe, dzięki czemu mogą być wzbudzane jednocześnie, co zapewnia większą możliwość dostrajania mikrocząstek manipulacji34. W porównaniu z konwencjonalnym wzbudzeniem IDT przy pojedynczej częstotliwości, regulacja ciśnień akustycznych wzbudzenia dwuczęstotliwościowego i fazy między nimi zapewnia wyjątkowość techniczną, taką jak do ~2-krotnie skrócony czas ruchu do linii węzła ciśnieniowego lub środka mikrokanału, zróżnicowana liczba i lokalizacja linii węzłowych ciśnienia, i stężenia mikrocząstek.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Protokół

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

1. Przygotowanie kanału mikroprzepływowego

  1. Zmieszać polidimetylosiloksan (PDMS) z bazą elastomerową w stosunku 10:1.
  2. Odgazuj mieszaninę w piecu próżniowym i wylej ją na wafel krzemowy z ujemnym wzorem fotorezystu na górze.
  3. Ponownie odgazuj wzorzystą płytkę krzemową i podgrzewaj ją w temperaturze 70 °C przez 3 godziny w inkubatorze w celu zestalenia.

2. Produkcja przetworników międzypalcowych

  1. Osadzać 20 nm Cr i 400 nm Al na płytce LiNbO3; ułóż 20 pasków o szerokości 150 μm i otworze 2 cm na plastikowej masce do fotolitografii, osadzając dodatni fotorezyst na podłożu.
  2. Usuń warstwę Cr-Al z nienaświetlonego obszaru za pomocą acetonu.
  3. Potraktuj ich powierzchnię plazmą tlenową (o stosunku azotu i tlenu 2:1) o mocy 30 W przez 60 s.
  4. Wyrównaj mikrokanał PDMS i przymocuj go do podłoża LiNbO3, naciskając go kciukiem przez kilka sekund.
  5. Umieścić zintegrowane urządzenie w komorze grzewczej o temperaturze 60 °C na 3 godziny.

3. Wzbudzenie o podwójnej częstotliwości

  1. Do pary IDT należy jednocześnie przyłożyć dwie składowe częstotliwości (f1 i f3, odpowiednio częstotliwość podstawową i jej trzecią harmoniczną wytworzonego IDT) z różnicą faz φ między nimi, tak aby wytworzony SAW można było wyrazić w następujący sposób><. figure-protocol-1
    Tutaj,
    figure-protocol-2 i figure-protocol-3 = ciśnienia akustyczne.
  2. Zsyntetyzuj przebieg o podwójnej częstotliwości za pomocą edytora równań w oprogramowaniu aplikacyjnym ArbExpress z częstotliwością próbkowania 100 MS/s, a następnie zapisz go w generatorze funkcyjnym jako dowolne wejście do wzbudzenia SAW w eksperymencie za pomocą USB.
  3. Zmień moc częstotliwości podstawowej na całkowitą moc emitowaną figure-protocol-4 od 100% (wzbudzenie przy częstotliwości czysto podstawowej) do 0% (wzbudzenie przy czysto trzeciej harmonicznej); dla dobrego porównania, zmień, ale zachowaj całkowitą moc na tym samym poziomie.
  4. Zmieniaj różnicę faz wzbudzenia o podwójnej częstotliwości od 0° do 360°.

4. Symulacja numeryczna

  1. Opisz ruch nieściśliwego przepływu laminarnego z niskimi liczbami Reynoldsa (tj. Re = 0,55) i Macha w następujący sposób35,
    figure-protocol-5
    figure-protocol-6
    Tutaj,
    figure-protocol-7 = prędkość płynu,
    figure-protocol-8 = lepkość dynamiczna,
    figure-protocol-9 = gęstość płynu,
    figure-protocol-10 = ciśnienie płynu,
    figure-protocol-11 = macierz jednostkowa, and
    figure-protocol-12 = siła zewnętrzna.
  2. Opisz wytworzoną siłę oporu Stoke na obiekcie w następujący sposób36.
    figure-protocol-13
    Tutaj,
    figure-protocol-14 = promień mikrocząstki,
    figure-protocol-15 = prędkość płynu, i
    figure-protocol-16 = prędkość mikrocząstki.
  3. Wyprowadź siłę promieniowania akustycznego przyłożoną do mikrocząstki w mikrokanale wzdłuż osi x (w poprzek szerokości mikrokanału) przy pojedynczej częstotliwości w następujący sposób16 .
    figure-protocol-17
    Tutaj,
    figure-protocol-18 = objętość mikrocząstki,
    figure-protocol-19 = gęstość mikrocząstki,
    figure-protocol-20 = gęstość podłoża,
    figure-protocol-21 = ściśliwość mikrocząstki, i
    figure-protocol-22 = ściśliwość nośnika.
  4. Wyprowadź wypadkową siłę promieniowania akustycznego wzbudzenia o podwójnej częstotliwości w następujący sposób.
    figure-protocol-23
  5. Wyraź ruch poprzeczny w poprzek szerokości kanału (wzdłuż osi y) zarówno pod wpływem siły promieniowania akustycznego, jak i siły oporu Stokesa rządzonej przez drugie prawo Newtona w następujący sposób.
    figure-protocol-24
  6. Rozwiąż powyższe równania różniczkowe zwyczajne (ODE) za pomocą metody Rungego-Kutty czwartego rzędu na komputerze osobistym. Ustaw przedział czasowy i całkowity czas trwania odpowiednio na 1 μs i 20 s.

5. Obserwacja eksperymentalna

  1. Odwirować roztwór w stężeniu 5,9 x 107 z 4 μm zielonymi kulkami polistyrenowego fluorescencyjnego na 1 ml przez wir przez około 2 - 3 minuty, a następnie zanurzyć go w ultradźwiękowym sonografie na 10 minut, aby zakłócić jakąkolwiek aglomerację przed każdym badaniem.
  2. Wlać mieszaninę do strzykawki o pojemności 3 ml, a następnie napędzać ją pompą strzykawkową z natężeniem przepływu 3 - 5 μl/min.
  3. Steruj IDT sygnałem o podwójnej częstotliwości z generatora funkcyjnego, a następnie wzmacniacza mocy.
  4. Obserwuj ustabilizowane mikrocząstki w dolnym mikrokanale pod mikroskopem świetlnym pod 40-krotnym powiększeniem i rejestruj obraz za pomocą kamery cyfrowej.
  5. Zmierz położenie nagromadzonych mikrocząstek na przechwyconych obrazach cyfrowych za pomocą ImageJ i ustalonej skali, a następnie ilościowo określ stężenie nagromadzonej mikrocząstki ze znormalizowaną jasnością fluorescencji w każdym węźle ciśnienia.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Wyniki

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Rozkłady ciśnienia akustycznego i siły promieniowania akustycznego SSAW przy wzbudzeniu dwuczęstotliwościowym (6,2 i 18,6 MHz) są pokazane w Rysunek 1. W tym przypadku wzbudzenie dwuczęstotliwościowe zachodzi na mikrocząstkach polistyrenu (o średnicy 4 μm) w mikrokanaliku o szerokości 300 μm przy mocy akustycznej 146 mW. Wynikowe ciśnienie akustyczne występuje zawsze w fazie, gdy P1 > 90%, tak że tylko jeden węzeł ciśnienia występuje pr...

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Dyskusja

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Ruch mikrocząstek w mikrokanale przez SSAW przy wzbudzeniu o podwójnej częstotliwości został szeroko zbadany w tym badaniu, a także opracowano i przetestowano skutecznie dostrajalną technikę modelowania poprzez zmianę sygnałów wzbudzenia o podwójnej częstotliwości. Wytwarzanie takiego kształtu fali jest łatwo realizowane przez większość generatorów funkcyjnych, a podejście do regulacji jest bardzo wygodne. Zarówno pasma przenoszenia S12, jak i S11 sfabrykowanych IDT ilustrują kilka modów rezonansowy...

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Oświadczenia

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Autorzy nie mają nic do ujawnienia.

Podziękowania

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Ta praca była sponsorowana przez Fundusz Badań Akademickich (AcRF) Tier 1 (RG171/15), Ministerstwo Edukacji, Singapur.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
poli-dimetylosiloksanDow CorningSylgard 184
baza elastomeru poli-dimetylosiloksanowegoWafel krzemowy DowCorning Sylgard 184
Bonda TechnologySI8PSPD
fotorezystuł o ujemnym tonieMicrochemSU-8
dwustronnie polerowany LiNbO3 wafeluniwersyteckiY-128°
fotorezystor dodatniNicolaus-Otto-Straß eAZ 9260
plazma tlenowaPlastikowa maska Harrick Plasma
Nieskończona grafika

Bibliografia

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Chin, C. D., Linder, V., Sia, S. K. Commercialization of microfluidic point-of-care diagnostic devices. Lab on a Chip. 12 (12), 2118-2134 (2012).
  2. Figeys, D., Pinto, D. Lab-on-a-chip: a revolution in biological and medical sciences. Analytical Chemistry. 72 (9), 330 A-335 A (2000).
  3. den Toonder, J. Circulating tumor cells: the Grand Challenge. Lab on a Chip. 11 (3), 375-377 (2011).
  4. Yu, L., et al. Advances of lab-on-a-chip in isolation, detection and post-processing of circulating tumour cells. Lab on a Chip. 13 (16), 3163-3182 (2013).
  5. Jorgenson, J. W., Lukacs, K. D. High-resolution separations based on electrophoresis and electroosmosis. Journal of Chromatography A. 218, 209-216 (1981).
  6. Gascoyne, P. R., Vykoukal, J. Particle separation by dielectrophoresis. Electrophoresis. 23 (13), 1973(1973).
  7. Xia, N., et al. Combined microfluidic-micromagnetic separation of living cells in continuous flow. Biomedical Microdevices. 8 (4), 299-308 (2006).
  8. Garcés-Chávez, V., et al. Extended organization of colloidal microparticles by surface plasmon polariton excitation. Physical Review B. 73 (8), 085417(2006).
  9. Zhu, T., Ye, W. Origin of Knudsen forces on heated microbeams. Physical Review E. 82 (3), 036308(2010).
  10. Ashkin, A., Dziedzic, J., Yamane, T. Optical trapping and manipulation of single cells using infrared laser beams. Nature. 330 (6150), 769-771 (1987).
  11. Chiou, P. Y., Ohta, A. T., Wu, M. C. Massively parallel manipulation of single cells and microparticles using optical images. Nature. 436 (7049), 370-372 (2005).
  12. Yamada, M., Seki, M. Hydrodynamic filtration for on-chip particle concentration and classification utilizing microfluidics. Lab on a Chip. 5 (11), 1233-1239 (2005).
  13. Burguillos, M. A., et al. Microchannel acoustophoresis does not impact survival or function of microglia, leukocytes or tumor cells. PLoS One. 8 (5), e64233(2013).
  14. Lin, S. -C. S., Mao, X., Huang, T. J. Surface acoustic wave (SAW) acoustophoresis: now and beyond. Lab on a Chip. 12 (16), 2766-2770 (2012).
  15. Petersson, F., Åberg, L., Swärd-Nilsson, A. -M., Laurell, T. Free flow acoustophoresis: microfluidic-based mode of particle and cell separation. Analytical Chemistry. 79 (14), 5117-5123 (2007).
  16. Ding, X., et al. On-chip manipulation of single microparticles, cells, and organisms using surface acoustic waves. Proceedings of the National Academy of Sciences. 109 (28), 11105-11109 (2012).
  17. Friend, J., Yeo, L. Y. Microscale acoustofluidics: Microfluidics driven via acoustics and ultrasonics. Reviews of Modern Physics. 83 (2), 647(2011).
  18. Destgeer, G., Lee, K. H., Jung, J. H., Alazzam, A., Sung, H. J. Continuous separation of particles in a PDMS microfluidic channel via travelling surface acoustic waves (TSAW). Lab on a Chip. 13 (21), 4210-4216 (2013).
  19. Guo, F., et al. Controlling cell-cell interactions using surface acoustic waves. Proceedings of the National Academy of Sciences. 112 (1), 43-48 (2015).
  20. Ding, X., et al. Cell separation using tilted-angle standing surface acoustic waves. Proceedings of the National Academy of Sciences. 111 (36), 12992-12997 (2014).
  21. Roshchupkin, D., et al. X-ray diffraction by standing surface acoustic waves. Nuclear Instruments and Methods in Physics Research Section B: Beam Interactions with Materials and Atoms. 142 (3), 432-436 (1998).
  22. Shi, J., Mao, X., Ahmed, D., Colletti, A., Huang, T. J. Focusing microparticles in a microfluidic channel with standing surface acoustic waves (SSAW). Lab on a Chip. 8 (2), 221-223 (2008).
  23. Ding, X., et al. Surface acoustic wave microfluidics. Lab on a Chip. 13 (18), 3626-3649 (2013).
  24. King, L. V. On the acoustic radiation pressure on spheres. Proceedings of the Royal Society of London A: Mathematical, Physical and Engineering Sciences. , The Royal Society. 212-240 (1934).
  25. Yosioka, K., Kawasima, Y. Acoustic radiation pressure on a compressible sphere. Acta Acustica United with Acustica. 5 (3), 167-173 (1955).
  26. Ratier, C., Hoyos, M. Acoustic programming in step-split-flow lateral-transport thin fractionation. Analytical Chemistry. 82 (4), 1318-1325 (2010).
  27. Mandralis, Z., Feke, D., Bolek, W., Burger, W., Benes, E. Enhanced synchronized ultrasonic and flow-field fractionation of suspensions. Ultrasonics. 32 (2), 113-122 (1994).
  28. Laurell, T., Petersson, F., Nilsson, A. Chip integrated strategies for acoustic separation and manipulation of cells and particles. Chemical Society Reviews. 36 (3), 492-506 (2007).
  29. Liu, Y., Lim, K. -M. Particle separation in microfluidics using a switching ultrasonic field. Lab on a Chip. 11 (18), 3167-3173 (2011).
  30. Brissaud, M. Characterization of piezoceramics. IEEE Transactions on Ultrasonics, Ferroelectrics, and Frequency Control. 38 (6), 603-617 (1991).
  31. Ding, X., et al. Tunable patterning of microparticles and cells using standing surface acoustic waves. Lab on a Chip. 12 (14), 2491-2497 (2012).
  32. Jo, M. C., Guldiken, R. Particle manipulation by phase-shifting of surface acoustic waves. Sensors and Actuators A: Physical. 207, 39-42 (2014).
  33. Meng, L., et al. Transportation of single cell and microbubbles by phase-shift introduced to standing leaky surface acoustic waves. Biomicrofluidics. 5 (4), 044104(2011).
  34. Sriphutkiat, Y., Zhou, Y. Particle manipulation using standing surface acoustic waves (SSAW) at dual frequency excitation: effect of power ratio. Sensors and Actuators A: Physical. 263, 521-529 (2017).
  35. Batchelor, G. K. An Introduction to Fluid Dynamics. , Cambridge University Press. Cambridge, UK. (2000).
  36. Glynne-Jones, P., Hill, M. Acoustofluidics 23: acoustic manipulation combined with other force fields. Lab on a Chip. 13 (6), 1003-1010 (2013).
  37. Winkler, A., Brünig, R., Faust, C., Weser, R., Schmidt, H. Towards efficient surface acoustic wave (SAW)-based microfluidic actuators. Sensors and Actuators A: Physical. 247, 259-268 (2016).
  38. Chen, Y., et al. Standing surface acoustic wave (SSAW)-based microfluidic cytometer. Lab on a Chip. 14, 916-923 (2014).
  39. Devendran, C., et al. The importance of travelling wave components in standing surface acoustic wave (SSAW) systems. Lab on a Chip. 16, 3756-3766 (2016).
  40. Destgeer, G., et al. Submicron separation of microspheres via travelling surface acoustic waves. Lab on a Chip. 14, 4665-4672 (2014).
  41. Ding, X., et al. Standing surface acoustic wave (SSAW) based multichannel cell sorting. Lab on a Chip. 12, 4228-4231 (2012).
  42. Chen, Y., et al. Continuous enrichment of low-abundance cell samples using standing surface acoustic waves (SSAW). Lab on a Chip. 14, 924-930 (2014).

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Przedruki i uprawnienia

Poproś o pozwolenie na ponowne wykorzystanie tekstu lub ilustracji tego artykułu JoVE

Poproś o pozwolenie

Tagi

Wzbudzanie dwucz stotliwo ciowesystem lab on a chipprzetworniki interdygitalnesi a promieniowania akustycznegow z y ci nieniaregulacja stosunku mocystrojenie r nicy fazkana mikrofluidyczny

Powiązane artykuły