Method Article

Skuteczna strategia generowania specyficznych tkankowo binarnych systemów transkrypcyjnych u Drosophila poprzez edycję genomu

DOI:

10.3791/58268

September 19th, 2018

In This Article

Summary

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Tutaj prezentujemy metodę generowania specyficznych dla tkanek binarnych systemów transkrypcyjnych u Drosophila poprzez zastąpienie pierwszego kodującego eksonu genów sterownikami transkrypcji. Metoda oparta na CRISPR/Cas9 umieszcza sekwencję transaktywatora pod endogenną regulacją zastąpionego genu, a w konsekwencji ułatwia ekspresję transktywatora wyłącznie we wzorcach czasoprzestrzennych specyficznych dla genu.

Abstract

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Binarne systemy transkrypcyjne to potężne narzędzia genetyczne szeroko stosowane do wizualizacji i manipulowania losem komórek oraz ekspresją genów w określonych grupach komórek lub tkanek w organizmach modelowych. Systemy te zawierają dwa składniki jako oddzielne linie transgeniczne. Linia sterująca wyraża aktywator transkrypcji pod kontrolą specyficznych tkankowo promotorów / wzmacniaczy, a linia reporterowa / efektorowa zawiera gen docelowy umieszczony poniżej miejsca wiązania aktywatora transkrypcji. Zwierzęta, w których znajdują się oba składniki, indukują specyficzną tkankowo transaktywację docelowej ekspresji genu. Precyzyjna czasoprzestrzenna ekspresja genu w docelowych tkankach ma kluczowe znaczenie dla bezstronnej interpretacji aktywności komórki/genu. W związku z tym niezbędne jest opracowanie metody generowania wyłącznych linii sterujących specyficznych dla komórek/tkanek. W tym miejscu przedstawiamy metodę generowania wysoce specyficznego tkankowo ukierunkowanego systemu ekspresji poprzez zastosowanie techniki edycji genomu opartej na "Clustered Regularly Interspaced Short Palindromic Repeat/CRISPR-associated" (CRISPR/Cas). W tej metodzie endonukleaza Cas9 jest kierowana przez dwa chimeryczne przewodnikowe RNA (gRNA) do określonych miejsc w pierwszym egzonie kodującym genu w genomie Drosophila w celu wytworzenia pęknięć dwuniciowych (DSB). Następnie, wykorzystując egzogenny plazmid dawcy zawierający sekwencję transaktywatora, autonomiczna maszyneria naprawcza komórki umożliwia naprawę ukierunkowaną na homologię (HDR) DSB, co skutkuje precyzyjną delecją i zastąpieniem eksonu sekwencją transaktywatora. Wbity transaktywator ulega ekspresji wyłącznie w komórkach, w których funkcjonalne są cis-regulatorowe elementy zastąpionego genu. Przedstawiony tutaj szczegółowy protokół krok po kroku do generowania binarnego sterownika transkrypcyjnego ulegającego ekspresji w komórkach nabłonkowych/neuronalnych Drosophila fgf / bezgałęziowych może być przyjęty do dowolnej ekspresji specyficznej dla genu lub tkanki.

Introduction

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Genetyczny zestaw narzędzi do ukierunkowanej ekspresji genów został dobrze rozwinięty u Drosophila, co czyni go jednym z najlepszych systemów modelowych do badania funkcji genów zaangażowanych w różnorodne procesy komórkowe. Binarne systemy ekspresji, takie jak drożdże Gal4/UAS (sekwencja aktywacji upstream), zostały po raz pierwszy przyjęte do wychwytywania specyficznych tkankowo wzmacniaczy i nieprawidłowej ekspresji genów w modelu genetycznym Drosophila1 (Rysunek 1). System ten umożliwił opracowanie wielu technik, takich jak czasoprzestrzenna regulacja nadekspresji genów, błędna ekspres....

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Protocol

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

1. Projektowanie i konstruowanie wektora ekspresji gRNA

  1. Aby precyzyjnie zastąpić długi zdefiniowany region eksonu, należy użyć podejścia z podwójnym gRNA6, w którym każdy gRNA może specyficznie celować w dwa końce wybranego regionu zainteresowania. Aby uzyskać dokładną, specyficzną dla genu czasoprzestrzenną ekspresję sterownika, wybierz dwa miejsca docelowe gRNA w pierwszym egzonie kodującym genu.
  2. W przypadku Drosophila melanogaster wybierz miejsca docelowe gRNA za pomocą narzędzia flyCRISPR Optimal Target Finder (http://tools.flycrispr.molbio.wisc.edu/targetFinder/). Można również korzystać z innych dost....

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Results

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Ten protokół został z powodzeniem wykorzystany do wygenerowania docelowego systemu raportowania wyrażeń binarnych specyficznego dla komórek wyrażających btl5. Elementy cis-regulatorowe (CRE), które kontrolują złożoną czasoprzestrzenną ekspresję btl, nie są scharakteryzowane. Dlatego, aby osiągnąć ekspresję czasoprzestrzenną pod kontrolą endogennej sekwencji regulatorowej bln, zaprojektowano tylko pierwszy kodujący ekson bln

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Discussion

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Tradycyjnie, pułapki wzmacniające Drosophila były generowane dwiema różnymi metodami. Jednym ze sposobów jest losowa insercja sekwencji sterownika (np. Gal4) do genomu poprzez transpozycję (np. transpozycję elementu P)1 . Alternatywnie, sekwencje sterujące można umieścić pod kontrolą transkrypcyjną domniemanego regionu wzmacniacza / promotora w konstrukcie plazmidowym, który następnie zostałby zintegrowany z ektopowym miejscem genomu 3,11

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Disclosures

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Autorzy nie mają do ujawnienia żadnych konfliktów interesów.

Acknowledgements

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Dziękujemy Dr. F. Portowi, Dr. K. O'Connor-Gilesowi i Dr. S. Fengowi za dyskusje na temat strategii CRISPR; Dr. T.B. Kornbergowi i Bloomington Stock Center za odczynniki; Podstawowe urządzenie do obrazowania UMD; oraz finansowanie z NIH: R00HL114867 i R35GM124878 do SR.

....

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Materials

List of materials used in this article
NameCompanyCatalog NumberComments
X-Gal/IPTGGentrox (Genesee Scientific)18-218klonowanie
LB-AgarBD DifcoBD  244520klonowanie
Tris-HClSigma AldrichT3253Biologia molekularna
EDTASigma AldrichE1161Biologia molekularna
NaClSigma AldrichS7653Biologia molekularna
UltraPure Woda wolna od DNaz / RNazThermoFisher Scientific10977-023Biologia molekularna
10% SDSSigma Aldrich71736Biologia molekularna
KOAcFisher-ScientificP1190Biologia molekularna
EtOHFisher-Scientific04-355-451Biologia molekularna
GeneJET MiniprepThermoFisherScientific K0503
Miniprep PureLink HiPure Plasmid Maxipep ZestawyThermoFisher ScientificK210006Maxiprep
BbsINEBR0539SResrogacyjne
starteryenzymatyczne IDT-DNAPCR
pCFD4Kornberg LabMatryca i wektor DNA dla gRNA
KAPA HiFi Hot Start- (Kapa Biosystems)Kapa biosystemsKK2601PCR
Q5-wysoka wierność TaqNEBNEB #M0491PCR
Gibson Assembly Master MixNEBNEB #E2611Składanie DNA
pBPnlsLexA:p65UwAddgeneMatryca DNA do amplifikacji LexA
Proteinaza KThermoFisher Scientific25530049Molecular Biology
2x PCR PreMix, z barwnikiem (czerwony)SydlabMB067-EQ2RBiologia molekularna
Zestaw do elucji żeluZymo Research (Genesee Scientific)11-300Odczynnik
TRI do biologii molekularnejSigma-AldrichBiologia molekularna
Zestawy do oczyszczania RNA z bezpośrednim zolemZymo Research (Genesee Scientific)11-330Biologia molekularna
OneTaq Jednoetapowy zestaw RT-PCRNEBE5315SBiologia molekularna
lexO-CherryCAAXKornberg LabFly line
UAS-CD8: GFPLaboratorium KornbergaLinia muchowa
btl-Gal4Kornberg labFly line
MKRS/TB6BKornberg labFly line
Mikroskop konfokalny SP5XLeicaImaging Wzór ekspresji
CO2 stacjaGenesee Scientific59-122WCUpchanie muchy
Mikroskop stereoskopowyOlympusSZ-61pchanie muchy
Tłuczki homogenizujące do mikroprobówekFisher-Scientific03-421-217do izolacji genomowego DNA
NanoDropThermoFisher ScientificND-1000Kwantyfikacja DNA
spektrofotometr

References

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Brand, A. H., Perrimon, N. Targeted gene expression as a means of altering cell fates and generating dominant phenotypes. Development. 118 (2), 401-415 (1993).
  2. Lai, S. -L., Lee, T. Genetic mosaic with dual binary transcriptional systems in Drosophil....

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article

Request Permission

Tags

CRISPR Cas9Binary Transcription SystemTissue specific ExpressionDrosophila Genome EditingHomology directed RepairGuide RNA DesignTransactivator Knock inExon ReplacementSpatiotemporal RegulationGAL4 LexA System

Related Articles