Ten protokół wprowadza metodę zmiany klatki dla szczurów poprzez trening klikerowy. Szczury uczą się pożądanego zachowania nie tylko poprzez bezpośrednie szkolenie, ale także poprzez uczenie się przez obserwację. Wdrożenie tego szybkiego i łatwego protokołu może przyczynić się do poprawy samopoczucia i higieny w obiektach dla gryzoni.
Subskrypcja JoVE jest wymagana do oglądania tego materiału. Zaloguj się lub rozpocznij bezpłatny okres próbny.
Artykuł metodologiczny
Wykorzystanie treningu klikerowego i obserwacji społecznej do nauczenia szczurów dobrowolnej zmiany klatek
W tym artykule
Podsumowanie
Streszczenie
Czyszczenie klatki jest rutynowo wykonywaną procedurą hodowlaną i jest znane z wywoływania stresu u szczurów laboratoryjnych. Ponieważ stres może mieć negatywny wpływ na samopoczucie i może wpływać na porównywalność i odtwarzalność wyników badań, należy zminimalizować ilość stresu doświadczanego przez zwierzęta laboratoryjne i w miarę możliwości go unikać. Co więcej, bezpośredni kontakt między szczurem a opiekunem zwierzęcia podczas zmiany klatki niesie ze sobą ryzyko higieniczne, a zatem może negatywnie wpływać na dobrostan szczurów i jakość badań.
Nasz protokół ma na celu poprawę rutynowo przeprowadzanej procedury zmiany klatki. Z tego powodu przedstawiamy wykonalny protokół, który umożliwia szczurom nauczenie się poprzez trening klikerowy i obserwację, aby dobrowolnie zmienić klatkę na czystą. Szkolenie to pomaga zmniejszyć stres spowodowany fizycznymi zakłóceniami i obchodzeniem się ze zmianą klatki, a jednocześnie umożliwia zmniejszenie bezpośredniego kontaktu między zwierzęciem a opiekunem zwierzęcia po zakończeniu fazy szkolenia.
Wdrożenie treningu klikerowego dla szczurów jest szybkie i łatwe. Szczury są na ogół zainteresowane treningiem i skutecznie uczą się pożądanego zachowania, które polega na zmianie klatek przez rurę. Nawet bez treningu szczury uczą się wykonywać pożądane zachowanie poprzez obserwację, ponieważ 80% grupy uczącej się obserwacyjnie z powodzeniem zmieniło klatki podczas testów. Szkolenie dodatkowo pomaga w nawiązaniu relacji opartej na zaufaniu między trenerem a zwierzęciem. Ponieważ zarówno higiena, jak i dobre samopoczucie są bardzo ważne w eksperymentach na zwierzętach, protokół ten może również pomóc w poprawie jakości badań.
Wprowadzenie
Rutynowe procedury mogą powodować stres u zwierząt laboratoryjnych1,2,3,4. Wykazano, że zmiana klatki zwiększa parametry sercowo-naczyniowe i ogólną aktywność u szczurów4,5,6. Takie reakcje na stres mogą być przynajmniej częściowo spowodowane fizycznymi zakłóceniami i obchodzeniem się z procedurami zmiany klatku, a nie nowym, nieznanym środowiskiem2,4. Szczególne znaczenie ma negatywny wpływ stresu na samopoczucie ocenianego zwierzęcia7. Ponadto stres wywołuje zmiany w zachowaniu i innych parametrach organizmu, w tym w autonomicznym układzie nerwowym, układzie neuroendokrynnym i układzie odpornościowym. Dlatego stres jest często określany jako możliwe źródło nieoczekiwanych odchyleń w eksperymentach na zwierzętach i powinien być unikany w jak największym stopniu w wysokiej jakości badaniach na zwierzętach7,8. Jednym ze sposobów na zmniejszenie stresu u zwierząt laboratoryjnych jest trening. Szkolenie zwierząt może być bardzo pomocnym narzędziem do zarządzania zwierzętami laboratoryjnymi i jest wymagane przez dyrektywę UE 2010/63/UE9. Szkolenie może służyć jako forma wzbogacenia i pomaga przygotować zwierzęta do eksperymentów; W ten sposób szkolenie przyczynia się do utrzymania i poprawy samopoczucia w warunkach laboratoryjnych10,11,12. Możliwą metodą treningową jest trening pozytywnego wzmocnienia (PRT). PRT jest formą warunkowania instrumentalnego, w której nagroda (np. nagroda w postaci jedzenia) jest powiązana z pożądanym zachowaniem13. Ta forma treningu jest już powszechnie stosowana w warunkach laboratoryjnych dla naczelnych innych niż ludzie w celu zmniejszenia stresu i poprawy samopoczucia oraz zyskała popularność u różnych innych gatunków zwierząt10,13,14,15,16. Trening dobrowolnego ruchu jest również często wykorzystywany do doskonalenia zarządzania hodowlą zwierząt17,18,19. PRT to nie tylko pomocne narzędzie do współpracy podczas pracy ze zwierzętami; Jest to również ogólnie korzystne dla dobrostanu zwierząt, niezależnie od tego, czy wytrenowane zachowanie jest bezpośrednio używane20. Opisany tutaj protokół treningu pozytywnego wzmocnienia ma na celu uniknięcie jakiejkolwiek formy stresu podczas rutynowo wykonywanych zmian klatki poprzez umożliwienie szczurowi dobrowolnego udziału w procedurze.
Oprócz możliwego stresu dla zwierząt, procesy robocze w obiektach dla zwierząt zawsze dostarczają pułapek do utrzymania stanu higieny, zwłaszcza że bezpośredni kontakt między zwierzętami laboratoryjnymi a opiekunami zwierząt niesie ze sobą ryzyko skażenia higieny. W obiektach specjalizujących się w hodowli gryzoni przenoszenie zwierząt z brudnych do czystych klatek zapewnia regularne i duże obciążenie pracą. Procedura ta zwykle obejmuje bezpośredni kontakt między zwierzętami a ludźmi, a zatem stanowi higieniczny czynnik ryzyka ze względu na możliwe przenoszenie patogenów osadzonych na ludzkiej skórze21. Oprócz przenoszenia przez inne wektory zwierzęce, organizmy chorobotwórcze i niepatogenne najczęściej wdzierają się do obiektów zwierzęcych za pośrednictwem ludzi22,23. Ponieważ pogorszenie stanu zdrowia wiąże się z pogorszonym samopoczuciem, nawet subkliniczne infekcje mogą być przyczyną niepowtarzalnych wyników eksperymentalnych, a tego zdecydowanie należy unikać24,25. Z tego powodu szkolenie zwierząt w zakresie dobrowolnej zmiany klatek umożliwia dalszą zmianę klatki po treningu przy prawie zerowym bezpośrednim kontakcie między zwierzęciem a opiekunem zwierzęcia, zmniejszając w ten sposób potencjalne ryzyko higieniczne podczas wykonywania procedur eksperymentalnych.
Nasz protokół szkolenia szczurów do dobrowolnej zmiany klatki może być pomocnym narzędziem do zarządzania szczurami laboratoryjnymi, ponieważ łączy trening jako formę wzbogacenia poznawczego z wykonywaniem rutynowej pracy. W związku z tym nasz protokół jest procedurą przyjazną zwierzętom, która pomaga zwiększyć dobrostan szczurów w obiektach dla zwierząt laboratoryjnych. Ponieważ zmiana klatki po fazie treningu może być przeprowadzona prawie bez bezpośredniego kontaktu między zwierzęciem a opiekunem zwierząt, może to dodatkowo pomóc w utrzymaniu higieny na wysokim poziomie, a tym samym w dalszym usprawnieniu badań na zwierzętach.
Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.
Protokół
Postępowanie ze szczurami i procedury eksperymentalne były prowadzone zgodnie z europejskimi, krajowymi i instytucjonalnymi wytycznymi dotyczącymi opieki nad zwierzętami.
1. Aklimatyzacja i przyzwyczajenie
UWAGA: Jeśli szczury nie były transportowane, czas aklimatyzacji i przyzwyczajenia może zostać skrócony. Aby uzyskać nieinwazyjną identyfikację, pokoloruj ogon przyjaznym dla skóry markerem.
- Tydzień 1: Aklimatyzacja
UWAGA: W ciągu pierwszego tygodnia należy wykonać dwie sesje, jedną w dniu przyjazdu, a drugą 2 dni po przyjeździe.- W dniu przybycia szczurów:
- Przenieś szczury w parach po dwie do ich nowej klatki domowej. Przenieś część starego materiału gniazdowego i ściółkowego, a także niektóre z ich znajomych granulek pokarmowych, aby ułatwić przyzwyczajenie się do nowego środowiska.
- Unikaj podnoszenia szczura za ogon. Jeśli to możliwe, połóż jedną rękę pod brzuchem lub wokół klatki piersiowej, a drugą rękę podpieraj tylne nogi szczurów, aby je podnieść (Rysunek 1)26.
- Dwa dni po dniu przyjazdu:
- Otwórz domową klatkę szczurów i włóż rękę do klatki. Pozwól szczurom powąchać i zbadać rękę. Jeśli szczury próbują wydostać się z klatki, przeszkodzij im, delikatnie wciskając je z powrotem do klatki. Kontynuuj tę procedurę przez następne cztery minuty.
- Jeśli szczury boją się i nie zaczynają eksplorować swojego otoczenia, powtarzaj procedurę raz dziennie, aż szczury zaczną eksplorować. W takim przypadku konieczne może być przyzwyczajenie się do klikera.
UWAGA: Szczury odkrywają nowe rzeczy wszystkimi zmysłami, więc po pewnym czasie rozpoznają tego samego eksperymentatora jako znajomego. Może się zdarzyć, że szczur wykonuje ustne eksploracje dłoni, ale nie powinno to odbywać się w sposób inwazyjny. W takiej sytuacji należy powoli wyjąć rękę, aby upewnić się, że rękawice nie zostaną zniszczone. - Dodaj małe kawałki zamierzonej nagrody w postaci jedzenia do klatki domowej.
UWAGA: Nagroda w postaci karmy musi być zgodna z wymaganiami dotyczącymi żywienia zwierząt w laboratorium. W tym protokole używana jest biała czekolada (trzymana na końcu strzykawki), ale możliwe są inne pokarmy, takie jak suszone owoce, świeże owoce lub zboża. Jeśli wymagania higieniczne w pomieszczeniach dla zwierząt wymagają specjalnych warunków, istnieją różni dostawcy przysmaków dla zwierząt laboratoryjnych. Preferowana jest najzdrowsza opcja, ale mieszanka wysokiej zawartości tłuszczu i cukru może dać zwierzętom większą motywację do uczestnictwa.
- W dniu przybycia szczurów:
- Tydzień 2: Przyzwyczajenie do naukowca i nagroda w postaci jedzenia
- Kontynuuj zamieszkanie do ręki i nagrody w postaci jedzenia, które rozpoczęło się w poprzednim tygodniu. Ogranicz czas interakcji do dwóch minut dziennie.
- W przypadkach, gdy szczur jest bardzo niespokojny, może być konieczne przyzwyczajenie się do klikera.
- Aby ocenić to zachowanie, klikaj raz na pięć sekund po sesji w dniu 1. Jeśli szczur reaguje zachowaniem związanym ze strachem, kliker musi być przyzwyczajony.
- Aby przyzwyczaić się do klikera, kliknij pięć razy, podczas gdy szczur spożywa nagrodę, która jest umieszczana w klatce po sesji. Przyzwyczajenie do klikera zostaje zakończone, gdy tylko szczur nie wykazuje już żadnych zachowań związanych ze strachem.
- Tydzień 3: Przyzwyczajenie do intensywnego obchodzenia się z produktem
- W dniach od pierwszego do trzeciego zacznij od podnoszenia lub głaskania szczura przez kilka sekund i powoli wydłużaj czas (maks. dwie minuty na szczura). Zatrzymaj się, jeśli szczur wykazuje jakiekolwiek oznaki awersji, takie jak zamarcie, unik lub ukrywanie się.
- W czwartym i piątym dniu zakończ obchodzenie się z łaskotaniem, jak opisano w Cloutier i in. (2012). 27
UWAGA: Wskaźnikami udanej habituacji są, na przykład, szczur przyjmujący nagrodę w postaci jedzenia, jeśli jest ono podawane z ręki lub szczury zbliżające się do ręki, badające ją lub dotykające.
2. Trening klikera
UWAGA: Sesja treningowa trwa cztery minuty i składa się z 30 sekund treningu, po których następuje 15 sekund przerwy. Usuń wszelkie dodane materiały podczas pauzy. Szczur-obserwator może robić, co chce, może uczestniczyć i spożywać nagrodę, ale skupia się wyłącznie na drugim szczurze. Wszystkie szczury były łaskotane pierwszego i piątego dnia. Dla powodzenia treningu ważne jest, aby eksperymentator zwracał uwagę na zachowanie zwierząt i zachowywał się w spokojny sposób. Trening w dużym stopniu zależy od zdolności eksperymentatora do wyczucia czasu i siły obserwacji. Podczas treningu nie ma werbalnej informacji zwrotnej, a komunikacja werbalna ze zwierzętami może odbywać się tylko poza sesjami. Wskaźnikiem uczenia się pożądanego zachowania jest powtarzanie zachowania.
- preparat
- Przygotuj wymagany materiał, taki jak nagroda, kombinacja klikera/kija do tarczy, minutnik, czysta klatka, metalowa rurka i wszelkie inne specyficzne materiały treningowe.
- Przenieś klatkę domową w spokojne miejsce.
- Usuń wszystkie przedmioty z klatki. W klatce powinny pozostać tylko dwa szczury (wyszkolony i obserwator) oraz materiał ściółkowy.
- Dzień szkolenia 1: Ustanowienie połączenia między głównym i wtórnym wzmacniaczem
- Umieść krótki tunel w klatce domowej, najlepiej taki, który szczur jest zaznajomiony.
- Poczekaj, aż szczur usiądzie w tunelu, a następnie nakarm go nagrodą.
UWAGA: Jeśli szczur nie żeruje w okolicznościach sytuacji treningowej, faza przyzwyczajenia musi zostać przedłużona lub dostosowana. - Gdy tylko szczur wykaże zainteresowanie nagrodą i ma zamiar zacząć skubać nagrodę, kliknij, a następnie pozwól szczurowi nakarmić się nagrodą. Aby upewnić się, że parowanie dwóch wzmocnień zakończy się sukcesem, powtarzaj klikanie, a następnie nagradzanie przez 15 sekund. Zrób to co najmniej dwa razy podczas tej pierwszej sesji treningowej.
- Jeśli szczur brał w tym udział, sprawdź, czy nie ma oznak ustanowienia połączenia między pierwotnym i wtórnym wzmacniaczem. Głównym kryterium tej klasyfikacji jest oszacowanie nagrody w postaci jedzenia, którą szczur pokazuje poprzez wąchanie, rozglądanie się i na rękę, która prezentuje nagrodę w postaci jedzenia lub podnoszenie do tylnych kończyn w celu wyszukania nagrody (Rysunek 2). Jeśli tak się stanie, przejdź do następnej części; w przeciwnym razie powtórz "Dzień treningowy 1"
- Dni treningowe od 2 do 5: Przejazd przez krótki tunel<br />
UWAGA: Sesja treningowa składa się z naprzemiennych faz po 30 sekund treningu i 15 sekund przerwy przez cztery minuty.
- Umieść krótki tunel z tego samego materiału, co pierwszy używany/oryginalny tunel, który połączy dwie klatki w klatce domowej.
- Uruchom stoper i od razu rozpocznij trening przez pierwsze 30 sekund.
- Gdy szczur po raz pierwszy wejdzie do tunelu, przedstaw nagrodę na końcu tunelu. Gdy tylko szczur wejdzie do tunelu, kliknij i pozwól szczurowi zjeść nagrodę.
- Zabierz nagrodę w postaci jedzenia i poczekaj, aż szczur ponownie zainteresuje się tunelem. Kliknij jak tylko szczur wejdzie do tunelu i zaprezentuj nagrodę na końcu tunelu (Rysunek 3).
- Po 30 sekundach treningu dodaj 15-sekundową przerwę (usuń tunel).
- Powtórz 30 sekund treningu z kolejną 15-sekundową przerwą na cztery minuty.
- Jeśli szczur wykazuje pożądane zachowanie częściej niż cztery razy na minutę, przestań klikać i po prostu nagradzaj głównym wzmacniaczem.
- Zatrzymaj się po czterech minutach.
- Tydzień treningowy 2: Dotykanie drążka tarczowego
- Uruchom stoper i od razu rozpocznij trening przez pierwsze 30 sekund. Dodaj przerwę co 15 sekund, a następnie kontynuuj trening.
- Umieść kulę kija tarczowego w pobliżu szczura.
- Gdy tylko szczur wykaże zainteresowanie kulą ziemską, kliknij i nagrodź szczura. Powtórz to kilka razy.
- Jeśli szczur wykazuje zainteresowanie kulą ziemską więcej niż cztery razy na minutę, następnym zachowaniem, które należy wzmocnić, jest "dotykanie kuli ziemskiej nosem".
- Jeśli szczur powtarza to zachowanie więcej niż cztery razy na minutę, przestań klikać i po prostu nagradzaj go głównym wzmacniaczem.
- Zatrzymaj się po czterech minutach.
- Trening tydzień 3 (pięć dni) i tydzień 4 (trzy dni): Zmiana klatki przez tunel
UWAGA: W tym przypadku wzmocnione jest tylko przejście przez tunel w kierunku czystej klatki. Trening w 4 tygodniu został skrócony do trzech dni treningowych. Ten czas jest już wystarczający do osiągnięcia sukcesu szkoleniowego i daje możliwość jednego dodatkowego dnia na ewaluację lub zapis danych do dalszych eksperymentów.- Zbuduj połączenie między klatką domową a nową czystą klatką za pomocą tunelu, wstawiając dłuższą wersję tunelu, która jest już znana szczurowi.
- Pierwszego dnia nie wykonuj żadnego treningu i po prostu pozwól szczurom sprawdzić tunel. Jest duża szansa, że przeniosą się na nią nawet na własną rękę.
- Drugiego dnia daj szczurowi dwie minuty na samodzielne przejście przez tunel z brudnej na czystą stronę. Jeśli szczur swobodnie przechodzi przez tunel, przejdź do kroku 2.5.8.
- W przeciwnym razie rozpocznij pierwszą 30-sekundową sesję treningową (naprzemiennie 30 sekund treningu i 15-sekundową przerwę) na cztery minuty.
- Kliknij i nagrodź szczura, gdy tylko wykaże zainteresowanie tunelem.
- Przejdź dalej, aby kliknąć i nagrodzić wejście do tunelu.
- Przejdź do kliknięcia i nagrody, jeśli szczur wejdzie głębiej w tunel.
- Kontynuuj w podobny sposób, aż szczur przebiegnie przez cały tunel. Gdy tylko szczur zacznie wychylać się na końcu tunelu do czystej klatki, pokaż kulę ziemską kija tarczowego, kliknij i nagrodę za dotknięcie kuli ziemskiej.
- W końcu poprowadź szczura, aby opuścił tunel. Do tego procesu użyj kuli ziemskiej drążka tarczowego. Umieść kulę ziemską przed tunelem i kliknij i nagrodź szczura, gdy tylko wejdzie do nowej klatki i dotknie kuli ziemskiej.
- Przenieś szczura z powrotem do "brudnej" klatki domowej. Połóż jedną rękę pod brzuchem lub wokół klatki piersiowej, a drugą rękę podpieraj tylne nogi szczurów, aby je podnieść (Rysunek 1). Umieść kulę ziemską drążka tarczowego na środku czystej klatki. Kliknij i nagrodź, gdy szczur przebiega przez tunel i dotyka drążka tarczowego (Rysunek 4).
- Jeśli szczur powtarza to zachowanie więcej niż cztery razy na minutę, przestań klikać i po prostu nagradzaj głównym wzmacniaczem.
- Zatrzymaj się po czterech minutach.
Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.
Wyniki
Trening przeprowadzono na kohorcie dziesięciu samic szczurów linii Lister hooded (LD). Grupą kontrolną była grupa dziesięciu niewytrenowanych, lecz delikatnie traktowanych samic szczurów LD. Delikatne traktowanie oznaczało, że szczury podnoszono jedynie za ciało, a nie za nasadę ogona. Aby ocenić naukę poprzez obserwację, dodano kolejną grupę 10 samic szczurów LD, które nie były trenowane, lecz przebywały w tych samych klatkach co szczury trenowane i mogły obserwować proces treningu. Wszy...
Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.
Dyskusja
Opisany powyżej protokół jest użytecznym rozszerzonym zastosowaniem naszego wcześniej opisanego protokołu treningu klikerowego dla myszy laboratoryjnych10. Wdrożenie wymaga tylko minut dziennie przez łącznie siedem tygodni, wliczając w to aklimatyzację, habituację i trening klikerowy. Dla wykonalności, protokół ten był ograniczony do dni tygodnia z sesjami trwającymi około dziesięciu minut na parę szczurów. Może się wydawać, że ustanowienie protokołu w dużych koloniach szczurów jest czasochłonne, ...
Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.
Oświadczenia
Autorzy nie mają nic do ujawnienia.
Podziękowania
Autorzy są bardzo wdzięczni Thomasowi Wackerowi za jego wsparcie techniczne. Również dziękujemy dr Mirjam Roth za jej życzliwe wsparcie.
Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.
Materiały
| Nazwa | Firma | Numer katalogowy | Komentarze |
|---|---|---|---|
| Kij docelowy z metalową rurą Clicker | Trixie | 2282 | |
| (Alu Flexrohr nw 100) | Rotheigner | dostępny w markach budowlanych | |
| Biała czekolada / krem | Firma nie ma znaczenia, preferowana jakość organiczna | ||
| Prism w wersji 6.0 dla oprogramowania | GraphPad |
Bibliografia
- Balcombe, J. P., Barnard, N. D., Sandusky, C. Laboratory routines cause animal stress. Contemporary Topics in Laboratory Animal Science. 43 (6), 42-51 (2004).
- Sharp, J., Zammit, T., Azar, T., Lawson, D. Stress-like responses to common procedures in individually and group-housed female rats. Contemporary Topics in Laboratory Animal Science. 42 (1), 9-18 (2003).
- Sharp, J. L., Zammit, T. G., Lawson, D. M. Stress-like responses to common procedures in rats: effect of the estrous cycle. Contemporary Topics in Laboratory Animal Science. 41 (4), 15-22 (2002).
- Duke, J. L., Zammit, T. G., Lawson, D. M. The effects of routine cage-changing on cardiovascular and behavioral parameters in male Sprague-Dawley rats. Contemporary Topics in Laboratory Animal Science. 40 (1), 17-20 (2001).
- Saibaba, P., Sales, G. D., Stodulski, G., Hau, J. Behaviour of rats in their home cages: Daytime variations and effects of routine husbandry procedures analysed by time sampling techniques. Laboratory Animals. 30 (1), 13-21 (1996).
- Sharp, J. L., Zammit, T. G., Azar, T. A., Lawson, D. M. Stress-like responses to common procedures in male rats housed alone or with other rats. Contemporary Topics in Laboratory Animal Science. 41 (4), 8-14 (2002).
- Pekow, C. Defining, measuring, and interpreting stress in laboratory animals. Contemporary Topics in Laboratory Animal Science. 44 (2), 41-45 (2005).
- Wilson, L. M., Baldwin, A. L. Effects of environmental stress on the architecture and permeability of the rat mesenteric microvasculature. Microcirculation. 5 (4), 299-308 (1998).
- The European Union European Parliament and the Council of the European Union. Directive 2010/63/EU of the European Parliament and of the Council of 22. Official Journal of the European Union. , The European Union European Parliament and the Council of the European Union Directive 2010/63/EU of the European Parliament and of the Council of 22 33-79 (2010).
- Leidinger, C., Herrmann, F., Thöne-Reineke, C., Baumgart, N., Baumgart, J. Introducing Clicker Training as a Cognitive Enrichment for Laboratory Mice. Journal of Visualized Experiments. 2017 (121), 1-12 (2017).
- Westlund, K. Training is enrichment-And beyond. Applied Animal Behaviour Science. 152, 1-6 (2014).
- Laule, G., Desmond, T. Positive reinforcement training as an enrichment strategy. Second Nature: Environmental Enrichment for Captive Animals. , 302-313 (1998).
- Laule, G. E., Bloomsmith, M. A., Schapiro, S. J. The Use of Positive Reinforcement Training Techniques to Enhance the Care, Management, and Welfare of Primates in the Laboratory. Journal of Applied Animal Welfare Science. 6 (3), 163-173 (2003).
- Kogan, L., Kolus, C., Schoenfeld-Tacher, R. Assessment of clicker training for shelter cats. Animals. 7 (10), 1-11 (2017).
- Miller, R., King, C. E. Husbandry training, using positive reinforcement techniques, for Marabou stork Leptoptilos crumeniferus at Edinburgh Zoo. International Zoo Yearbook. 47 (1), 171-180 (2013).
- Vertein, R., Reinhardt, V. Training female rhesus monkeys to cooperate during in-homecage venipuncture. Laboratory Primate Newsletter. 28, 1-3 (1989).
- Bloomsmith, M. A., et al. Positive reinforcement training to elicit voluntary movement of two giant pandas throughout their enclosure. Zoo Biology. 22 (4), 323-334 (2003).
- Bloomsmith, M. A., Stone, A. M., Laule, G. E. Positive reinforcement training to enhance the voluntary movement of group-housed chimpanzees within their enclosures. Zoo Biology. 17 (4), 333-341 (1998).
- Veeder, C. L., Bloomsmith, M. A., McMillan, J. L., Perlman, J. E., Martin, A. L. Positive reinforcement training to enhance the voluntary movement of group-housed sooty mangabeys (Cercocebus atys atys). Journal of the American Association for Laboratory Animal Science. 48 (2), 192-195 (2009).
- Coleman, K., Maier, A. The use of positive reinforcement training to reduce stereotypic behavior in rhesus macaques. Applied Animal Behaviour Science. 124 (3-4), 142-148 (2010).
- Newcomer, C. E., Fox, J. G. Zoonoses and other human health hazards. The Mouse in Biomedical Research, Vol. II, Diseases. , 719-745 (2007).
- Boot, R., Koopman, J. P., Kunstýl, I. Microbiological standardization. Principles of Laboratory Animal Science. , 143-165 (1993).
- Nicklas, W. Possible routes of contamination of laboratory rodents kept in research facilities. Scandinavian Journal of Laboratory Animal Science. 20, 53(1993).
- FELASA working group on revision of guidelines for health monitoring of rodents and rabbits et al. FELASA recommendations for the health monitoring of mouse, rat, hamster, guinea pig and rabbit colonies in breeding and experimental units. Laboratory Animals. 48 (3), 178-192 (2014).
- Nicklas, W., et al. Implications of infectious agents on results of animal experiments. Laboratory Animals. 33, 39-87 (1999).
- Tierärztliche Vereinigung für Tierschutz e.V. Merkblatt Nr. 160. Heimtiere: Ratten. , (2014).
- Cloutier, S., Panksepp, J., Newberry, R. C. Playful handling by caretakers reduces fear of humans in the laboratory rat. Applied Animal Behaviour Science. 140 (3-4), 161-171 (2012).
- Bassett, L., Buchanan-Smith, H. M., McKinley, J., Smith, T. E. Effects of Training on Stress-Related Behavior of the Common Marmoset (Callithrix jacchus) in Relation to Coping With Routine Husbandry Procedures. Journal of Applied Animal Welfare Science. 6 (3), 221-233 (2003).
- Baker, D. G. Natural pathogens of laboratory mice, rats, and rabbits and their effects on research. Clinical Microbiology Reviews. 11 (2), 231-266 (1998).
- van Ruiven, R., Meijer, G. W., Wiersma, A., Baumans, V., Van Zutphen, L. F. M., Ritskes-Hoitinga, J. The influence of transportation stress on selected nutritional parameters to establish the necessary minimum period for adaptation in rat feeding studies. Laboratory Animals. 32 (4), 446-456 (1998).
- Capdevila, S., Giral, M., Ruiz de la Torre, J. L., Russell, R. J., Kramer, K. Acclimatization of rats after ground transportation to a new animal facility. Laboratory Animals. 41 (2), 255-261 (2007).
- Arts, J. W. M., Kramer, K., Arndt, S. S., Ohl, F. The impact of transportation on physiological and behavioral parameters in Wistar rats: implications for acclimatization periods. ILAR journal / National Research Council, Institute of Laboratory Animal Resources. 53 (1), 82-98 (2012).
- Sotocina, S. G., et al. The Rat Grimace Scale: A Partially Automated Method for Quantifying Pain in the Laboratory Rat via Facial Expressions. Molecular Pain. 7, (2011).
Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.
Przedruki i uprawnienia
