Subskrypcja JoVE jest wymagana do oglądania tego materiału. Zaloguj się lub rozpocznij bezpłatny okres próbny.

Artykuł metodologiczny

Inżynieria genomu oparta na CRISPR-Cas9 do generowania modeli reporterowych Jurkat dla zakażenia HIV-1 z wybranymi miejscami integracji prowirusa

9.1K wyświetleń

DOI:

10.3791/58572

14 listopada 2018

* These authors contributed equally

W tym artykule

Podsumowanie

Prezentujemy proces inżynierii genomu do generowania nowych modeli in vitro dla zakażenia HIV-1, które podsumowują integrację prowirusową w wybranych miejscach genomu. Ukierunkowanie na osoby zgłaszające pochodzące od wirusa HIV jest ułatwione dzięki manipulacji genomem specyficznej dla danego miejsca za pośrednictwem CRISPR-Cas9. Dostępne są szczegółowe protokoły generowania klonów pojedynczych komórek, badań przesiewowych i weryfikacji prawidłowego celowania.

Streszczenie

Ludzki wirus niedoboru odporności (HIV) integruje swoje prowirusowe DNA nielosowo z genomem komórki gospodarza w powtarzających się miejscach i gorących punktach genomu. W niniejszym artykule przedstawiamy szczegółowy protokół generowania nowych modeli in vitro zakażenia wirusem HIV z wybranymi miejscami integracji genomowej z wykorzystaniem technologii inżynierii genomu opartej na CRISPR-Cas9. Dzięki tej metodzie wybrana sekwencja reporterowa może zostać zintegrowana z docelowym, wybranym locus genomowym, odzwierciedlającym klinicznie istotne miejsca integracji.

W protokole opisany jest projekt reportera pochodzącego od HIV oraz wybór miejsca docelowego i sekwencji gRNA. Wektor celujący z ramionami homologicznymi jest konstruowany i transfekowany do limfocytów T Jurkat. Sekwencja reporterowa jest ukierunkowana na wybrane miejsce genomowe za pomocą rekombinacji homologicznej, ułatwionej przez pęknięcie podwójnej nici za pośrednictwem Cas9 w miejscu docelowym. Klony pojedynczych komórek są generowane i badane pod kątem zdarzeń docelowych za pomocą cytometrii przepływowej i PCR. Wybrane klony są następnie namnażane, a prawidłowe celowanie jest weryfikowane za pomocą PCR, sekwencjonowania i Southern blot. Analizowane są potencjalne zdarzenia niezgodne z celem inżynierii genomu za pośrednictwem CRISPR-Cas9.

Korzystając z tego protokołu, można wygenerować nowe systemy hodowli komórkowych, które modelują zakażenie wirusem HIV w klinicznie istotnych miejscach integracji. Chociaż generowanie klonów jednokomórkowych i weryfikacja prawidłowej integracji sekwencji reporterowej jest czasochłonne, uzyskane linie klonalne są potężnymi narzędziami do funkcjonalnej analizy wyboru miejsca integracji prowirusa.

Wprowadzenie

Integracja DNA prowirusa z genomem gospodarza po zakażeniu jest kluczowym krokiem w cyklu życia ludzkiego wirusa niedoboru odporności (HIV). Po integracji HIV utrzymuje się poprzez ustanowienie opóźnienia w długożyciowych podzbiorach limfocytów T CD4 +, takich jak limfocyty T CD4 + pamięci. Integracja wirusa HIV wydaje się być nielosowa1,2. W kilku badaniach wykryto szereg gorących punktów genomowych z rekurencyjnie zintegrowanym prowirusowym DNA poprzez sekwencjonowanie miejsc integracji u osób zakażonych ostro i przewlekle2,3,

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Protokół

1. Strategia celowania w inżynierii genomu i projektowanie wektora celującego (tv)

UWAGA: Pierwszy krok inżynierii genomu obejmuje wybór i wytworzenie narzędzi niezbędnych do celowania za pomocą systemu CRISPR-Cas9. Wybór miejsca integracji genomowej, dobór typu komórek do modyfikacji oraz zaprojektowanie reportera pochodzącego z HIV do integracji powinny poprzedzać ten etap. Niniejszy protokół opisuje celowanie minimalnego reporteru HIV-LTR_tdTomato_BGH-PA w komórkach docelowych Jurkat. Schemat blokowy procesu celowania opartego na CRISPR-Cas9, generowania, przesiewania i weryfikacji linii klonalnych przedstawiono na

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Wyniki

W tym reprezentatywnym eksperymencie zdecydowaliśmy się na skierowanie minimalnego reportera pochodnego od HIV-1, składającego się z LTR, sekwencji kodującej tdTomato oraz sekwencji sygnału polyA, do dwóch loci w intronie 5 genu BACH217. Loci do targetowania wybrano na podstawie bliskości do opublikowanych powtarzalnych miejsc integracji zidentyfikowanych w różnych badaniach nad pierwotnymi limfocytami T od pacjentów zakażonych HIV2,

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Dyskusja

W tym miejscu opisujemy protokół generowania modeli reporterowych Jurkat pochodzących z HIV-1 z wybranymi miejscami integracji prowirusa przy użyciu inżynierii genomu opartej na CRISPR-Cas9.

Kilka punktów protokołu wymaga szczególnej uwagi na etapie planowania. Po pierwsze, locus, który ma być docelowy, powinien być starannie wybrany, ponieważ niektóre loci mogą być łatwiejsze do namierzenia niż inne (np. w zależności od statusu chromatyny regionu i samej sekwencji docelowej). Powtarz.......

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Oświadczenia

Autorzy nie mają nic do ujawnienia.

Podziękowania

Dziękujemy Britta Weseloh i Bettina Abel za pomoc techniczną. Dziękujemy również Arne Düsedau i Janie Hennesen (platforma technologiczna cytometrii przepływowej, Heinrich Pette Institut) za wsparcie techniczne.

....

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
pX330-U6-Chimeric_BB-cBh-hSpCas9Addgene42230wektor do ekspresji SpCas9 i gRNA
pMKGeneArtekspresyjny ssaków do klonowania
cDNA3.1Wektor ekspresji ssakówInvitrogenV79020
BbsINew England BiolabsEnzym restrykcyjnyR0539S
NEBuilder Hifi DNA Zestaw do klonowania montażowegoNew England BiolabsE5520SZestaw do klonowania montażowego używany do generowania wektorów docelowych
TaqPlus Precision PCR SystemAgilent Technologies600210Polimeraza DNA z aktywnością korekcyjną stosowana do amplifikacji ramion homologicznych (krok 1.2.2.2), weryfikacji miejsca integracji i sekwencji reporterowej (kroki 3.3.3 i 3.3.5), generowania sondy genomowej dla Southern blot (krok 3.4.1.5) i analizy zdarzeń niedocelowych (krok 3.5.4)
96-dołkowa płytka do hodowli tkankowej (okrągłodenna)TPP92097do rozcieńczania
Polimeraza DNA Phusion High-FidelityNew England BiolabsM0530 LPolimeraza DNA stosowana do wykrywania zdarzeń docelowych (krok 2.4.2) i generowania sondy specyficznej dla reportera dla Southern blot (krok 3.4.1.4)
Dimetylosulfotlenek (DMSO)Sigma-AldrichD9170dimetylosulfotlenek jako PCR dodatek
Chlorek magnezu (MgCl2) RoztwórNew England BiolabsB9021SMgCl2 jako dodatek do PCR
Roztwór deoksynukleotydu (dNTP) Mieszanina NewEngland BiolabsN0447SdNTP z 10 mM każdego nt do reakcji PCR
5PRIME HotMasterMix5PRIME2200400gotowa do użycia mieszanina PCR używana do przesiewowego PCR (krok 3.2.11)
QIAamp DNA blood mini kitQiagen51106Zestaw do izolacji i oczyszczania DNA
QIAquick PCR Zestaw do oczyszczaniaQiagen28106PCR Zestaw do oczyszczania
RPMI 1640 bez glutaminyPożywka do hodowli komórkowychLonzaBE12-167F
Surowica bydlęca płodu Republika Południowej Afryki OpłataPAN BiotechP123002suplement pożywki
do hodowli komórkowychL-glutaminaBiochromK 0282pożywka do hodowli komórkowych
suplement Penicylina/Streptomycyna 10.000 U/mL/ 10.000 &mikro; g/mLBiochromA 2212suplement pożywki do hodowli komórkowych
Gibco Opti-MEM Reduced Serum MediaThermo Fisher Scientific31985062o obniżonym stężeniu w surowicy zoptymalizowana pod kątem transfekcji
TransIT-JurkatMirus BioMIR2125odczynnik do transfekcji
12-mirysianianu 13-octanSigma-AldrichP8139-1MG odczynnik
JonomycynaSigma-AldrichI0634-1MGodczynnik do hodowli komórkowych
Jednostka filtrująca napędzana strzykawką, membrana PES, 0,22 i mikro; mMillexSLGP033RBdo filtracji sterylnej
Inkubator Heracell 150iTermo Fisher Naukowyinkubator kultur tkankowych
51026280 Amershan Hybond-N+GE HealthcareRPN1520Bdodatnio naładowana membrana nylonowa do blottingu DNA i RNA
Stratalinker 1800Stratagene400072UV Crosslinker
High PrimeZestaw Roche11585592001do znakowania DNA radioaktywnym dCTP przy użyciu losowych oligonukleotydów jako starterów ilustruje
Mikrokolumny ProbeQuant G-50GE Healthcare28-9034-08chromatograficzne kolumny spinowe do oczyszczania znakowanego DNA
wektor do klonowania Płytki do hodowli tkankowych Pożywka do hodowli komórkowych Jednostka filtrująca

Bibliografia

  1. Hughes, S. H., Coffin, J. M. What Integration Sites Tell Us about HIV Persistence. Cell Host and Microbe. 19 (5), 588-598 (2016).
  2. Marini, B., Kertesz-Farkas, A., et al. Nuclear architecture dictates HIV-1 integration site selection. Nature. 521 (7551), 227-231 ....

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Przedruki i uprawnienia

Tagi

In ynieria genomu CRISPR Cas9miejsca integracji HIV 1rekombinacja homologicznaprzesiew cytometrii przep ywowejklonowanie pojedynczych kom rekweryfikacja metod Southern blotprojektowanie przewodz cego RNAkonstrukcja wektora celuj cegointegracja reportera prowirusowego