Artykuł metodologiczny

Ocena półilościowa przy użyciu znacznika FDG [18F] u pacjentów z ciężkim uszkodzeniem mózgu

DOI:

10.3791/58641

⸱

9 listopada 2018

 ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  , 
1Division of Neurosurgery, Rehabilitation Center for Traumatic Apallics Chiba, National Agency for Automotive Safety and Victims' Aid, 2Division of PET imaging, Rehabilitation Center for Traumatic Apallics Chiba, National Agency for Automotive Safety and Victims' Aid, 3Tokyo Nuclear Services Co. Ltd., 4Department of Neurological Surgery, Graduate School of Medicine, Chiba University

W tym artykule

Podsumowanie

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

[18F]-fluorodeoksyglukoza (FDG) pozytonowa tomografia emisyjna-tomografia komputerowa jest przydatna do badania metabolizmu glukozy związanego z funkcjonowaniem mózgu. W tym miejscu przedstawiamy protokół konfiguracji znacznika [18F] FDG i półilościowej oceny analizy regionu zainteresowania dla docelowych obszarów mózgu związanych z objawami klinicznymi u pacjentów z ciężkim urazowym uszkodzeniem mózgu.

Streszczenie

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Pacjenci z ciężkim urazowym uszkodzeniem mózgu (sTBI) mają trudności z określeniem, czy wyrażają swoje myśli i emocje poprawnie z powodu zaburzeń świadomości, zaburzonych wyższych funkcji mózgu i zaburzeń werbalnych. W wyniku niewystarczającej zdolności do komunikowania się potrzebne są obiektywne oceny ze strony członków rodziny, personelu medycznego i opiekunów. Jedną z takich ocen jest ocena funkcjonujących obszarów mózgu. Ostatnio multimodalne obrazowanie mózgu zostało wykorzystane do zbadania funkcji uszkodzonych obszarów mózgu. [18F]-fluorodeoksyglukoza pozytonowa tomografia emisyjna - tomografia komputerowa ([18F]FDG-PET/CT) jest skutecznym narzędziem do badania funkcji mózgu. Jednak ocena metabolizmu glukozy w mózgu na podstawie [18F]FDG-PET/CT nie jest ustandaryzowana i zależy od kilku różnych parametrów, a także od stanu pacjenta. W tym miejscu opisujemy serię półilościowych protokołów oceny dla analizy obrazu regionu zainteresowania (ROI) przy użyciu samodzielnie wyprodukowanych znaczników [18F]FDG u pacjentów z sTBI. Protokół koncentruje się na badaniach przesiewowych uczestników, przygotowaniu znacznika FDG [18F]FDG w gorącym laboratorium, zaplanowaniu akwizycji obrazów mózgu [18F]FDG-PET/CT oraz pomiarze metabolizmu glukozy za pomocą analizy ROI z docelowego obszaru mózgu.

Wprowadzenie

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Pacjenci z sTBI doświadczają nieprzewidywalnych trudności neurologicznych w trakcie rehabilitacji, które obejmują deficyty motoryczne, deficyty sensoryczne i niestabilność psychiczną1. Chociaż ocena kliniczna jest na ogół przeprowadzana werbalnie, pacjenci z sTBI, takimi jak zespół braku reakcji na czuwanie lub stan minimalnej świadomości, mają szczególne trudności z ustaleniem, czy dokładnie wyrażają swoje myśli i emocje z powodu zaburzeń świadomości, zakłóconych wyższych funkcji mózgu i zaburzeń werbalnych2,3. Członkowie rodziny, personel medyczny i opiekunowie są czasami zdezorientowani nieprzewidywalnymi zmianami neurologicznymi lub brakiem odpowiedzi, który może wynikać z niewystarczającej zdolności komunikacyjnej4,5.

Ostatnio multimodalne obrazowanie mózgu zostało wykorzystane do zbadania regionalnych funkcji mózgu6,7,8,9. Mózg jest głównym konsumentem energii pochodzącej z glukozy, a metabolizm glukozy dostarcza około 95% trifosforanu adenozyny (ATP) niezbędnego do funkcjonowania mózgu10. Wychwyt [18F]-fluorodeoksyglukozy (FDG) jest markerem wychwytu glukozy przez tkankę mózgową. [18plików]FDG-PET/CT może wykrywać [18F]wychwyt FDG i dlatego jest użytecznym narzędziem do badania funkcji mózgu11. Ogólnie rzecz biorąc, analiza obrazu [18F]FDG jest podzielona na dwie kategorie: analiza ROI i analiza oparta na wokselach (VBA)12. Poprzednie raporty pokazują, że analiza ROI jest preferowana do badania określonych regionów urazu. Dzieje się tak, ponieważ VBA (takie jak statystyczne mapowanie parametryczne [SPM]) wymaga korejestracji i normalizacji do standardowego mózgu, co nie działa dobrze w przypadkach TBI z powodu deformacji tkanki mózgowej, takiej jak atrofia mózgu, obrzęk, powiększenie i kurczenie się przestrzeni komorowej7,12. Chociaż opracowano różne algorytmy i oprogramowanie do analizy danych rezonansu magnetycznego (MRI), metale stosowane w chirurgii neurochirurgicznej i ortopedycznej generują artefakty hałasu7,12,13. Ostatnio zastosowanie fotopowielaczy w urządzeniach PET/CT poprawiło rozdzielczość przestrzenną obrazów mózgu pochodzących z PET/CT14. Obecny protokół koncentruje się na półilościowym pomiarze wychwytu glukozy za pomocą analizy ROI w [18F]FDG-PET/CT przy użyciu samodzielnie wyprodukowanych znaczników [18F]FDG u pacjentów z sTBI.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Protokół

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

To badanie zostało przeprowadzone zgodnie z instytucjonalną komisją rewizyjną (zatwierdzenie nr 07-01) i przestrzegało założeń Deklaracji Helsińskiej. Uzyskano świadomą zgodę na wykorzystanie dokumentacji medycznej i obrazu mózgu od przedstawicieli prawnych pacjentów. Badanie zostało przeprowadzone po zatwierdzeniu przez instytucjonalną komisję etyczną (2017-14). Protokół ten został sporządzony zgodnie z wytycznymi Japońskiego Towarzystwa Medycyny Nuklearnej i Europejskiego Towarzystwa Medycyny Nuklearnej jako odniesienie15,16.

1. Selekcja uczestników

  1. Uzyskanie świadomej zgody na wykorzystanie dokumentacji medycznej i obrazów mózgu pacjentów od ich przedstawicieli prawnych. Wynik w skali śpiączki Glasgow wynoszący 8 punktów w momencie wypadku ≤ musi być zapisany w dokumentacji medycznej każdego pacjenta17,18,19.
  2. Organizuj co sześć miesięcy konferencje dla personelu neurologicznego, psychologicznego i multidyscyplinarnego w celu oceny objawów klinicznych.
    Uwaga: Członkami konferencji powinien być personel medyczny, taki jak lekarze, pielęgniarki, fizjoterapeuci, terapeuci zajęciowi, logopedzi, dietetycy i medyczni pracownicy socjalni. Pamiętaj, aby stale sprawdzać, czy pacjenci mogą komunikować się (werbalnie lub niewerbalnie) i podejmować decyzje samodzielnie, ponieważ stan pobudzenia i stan neurologiczny są zazwyczaj niestabilne.
  3. Przeprowadź ocenę kliniczną funkcji słuchowych, funkcji wzrokowych, funkcji motorycznych, funkcji oromotorycznych/werbalnych, funkcji komunikacyjnych, stanu pobudzenia, wyrazu twarzy i innych istotnych funkcji, korzystając ze standardowych baterii oceniających, takich jak Skala Odzyskiwania Śpiączki (CRS-R), Skala Śpiączki Nocepcyjnej i Wessex Head Injury Matrix20,21,22.
  4. Harmonogram [18F]FDG-PET/CT dla pacjentów, którzy są stabilni medycznie i mogą bezpiecznie uczestniczyć w badaniach. Harmonogram należy składać wyłącznie z osób, które wyraziły świadomą zgodę lub których przedstawiciele prawni wyrazili świadomą zgodę, zgodnie z informacją zawartą w formularzu świadomej zgody. Harmonogram [18F]Akwizycja obrazu FDG-PET/CT w pobliżu dnia oceny klinicznej.

2. Przygotowanie [18F]FDG Tracer w gorącym laboratorium

  1. W gorącym laboratorium rozpocznij produkcję zestawów odczynników do zautomatyzowanej produkcji FDG dostosowanych do syntezatora FDG (patrz Tabela materiałów). Pamiętaj, aby użyć programu automatycznego, aby sprawdzić ruchomość układu pompującego w syntezatorze FDG i upewnić się, że powietrze nie wycieka z zestawu odczynników. Wysterylizuj obszar styku urządzenia (jest to czas rozpoczęcia).
    Uwaga: Pamiętaj, aby sprawdzić monitor promieniowania w gorącym laboratorium i użyć przenośnych dozymetrów promieniowania, aby sprawdzić poziom promieniowania każdej osoby przed wejściem do gorącego laboratorium.
  2. Sprawdź objętość [16O] wody i [18O] wody oraz objętość helu, wodoru i azotu w zbiorniku gazu. Sprawdź, czy temperatura wody wodociągowej do chłodzenia wstępnego jest niższa niż 25 °C, a temperatura wody do chłodzenia wtórnego jest niższa niż 22 °C. Do produkcji należy zużyć całą wodę z systemu zamkniętego (30 minut po uruchomieniu).
  3. Rozpocząć wstępne napromienianie [1:6O]-wody w cyklotronie (1 godzinę po rozpoczęciu). Sprawdź monitor, aby upewnić się, że 2 - 3 ml [16O] wody jest napromieniowane w optymalnych warunkach (np. 20 μA, 5 min) w obszarze docelowym cyklotronu. Po napromieniowaniu umieścić fiolkę z wodą [16O] w kalibratorze dawki radioizotopowej i zmierzyć poziom radioaktywności (patrz Tabela Materiałów).
    Uwaga: Rozpad promieniotwórczy należy obliczyć według następującego wzoru:
    figure-protocol-1
    Tutaj,
    N(t) jest liczbą jąder promieniotwórczych w t = t sekund;
    N(0) oznacza liczbę jąder promieniotwórczych w t = 0 sekund;
    T = okres półtrwania.
  4. Rozpocząć naświetlanie [18O] wodą w cyklotronie (1 h 30 min po starcie). Ustaw czas bombardowania na maksymalnie 20 minut, a energię uderzających protonów na 16,5 MeV.
  5. Uruchom syntezator FDG zgodnie z instrukcją obsługi22 (2 godziny po uruchomieniu). Zmodyfikowana procedura jest podana poniżej.
    1. Po napromieniowaniu należy użyć helu gazowego do przeniesienia 2 - 3 ml [18O]-wody z cyklotronu do polipropylenowego odbiornika syntezatora FDG.
    2. Zaczepić strzykawki o odpowiednie sterowniki strzykawek, zwiększyć ciśnienie w fiolkach z odczynnikami, rozpuścić 1,3,4,6-tetra-O-acetylo-2-O-trifluorometanosulfonylo-β-D-mannopiranozę w jednej fiolce (7 ± 0,2 ml) acetonitrylu (czystość ≥ 99,5%) i przepłukać kasetę acetonitrylem.
    3. Po bombardowaniu przenieść napromieniowaną [16O]-wodę i [18O]-wodę do syntezatora FDG.
      Uwaga: Po rozpoczęciu syntezy, napromieniowana woda [18O] przepływa przez wkład anionowymienny (patrz Tabela materiałów). Pamiętaj, aby kondycjonować i przekształcać wkład w węglan przed syntezą.
    4. Po przeniesieniu eluentu zawierającego [18F] aktywność bez cieczy do naczyń reakcyjnych, pozostawić rozpuszczalniki do odparowania do wyschnięcia. Podczas procesu suszenia dodać niewielkie ilości acetonitrylu do naczynia reakcyjnego 3x (za każdym razem dodać 80 μL). Przeprowadzić odparowanie w temperaturze 95 °C przy przepływie azotu i próżni.
    5. Dodać prekursor triflatu mannozy (25 mg) do suchej pozostałości po rozpuszczeniu jej w około 3,5 ml acetonitrylu (o czystości ≥ 99,5%). Reakcja substytucji nukleofilowej zachodzi w temperaturze 85 °C w syntezatorze FDG.
    6. Jako wstępne oczyszczenie wymieszaj oznakowany roztwór z 26 ml wody destylowanej. Wyślij około 4 ml rozcieńczonego roztworu do znakowania z powrotem do naczynia reakcyjnego, aby odzyskać pozostałą aktywność. Przepuścić roztwór przez wkład z odwróconą fazą (patrz Tabela materiałów). Wypłucz wkład zawierający uwięziony oznakowany prekursor 4x przy użyciu 10 ml, 10 ml, 13 ml i 13 ml wody destylowanej podczas kolejnych płukań.
    7. Przekształć acetylowany związek (znakowany prekursor) w FDG we wkładzie poprzez hydrolizę alkaliczną, używając 750 μl 2 N NaOH przez 2 minuty w temperaturze pokojowej.
    8. Po hydrolizie zebrać alkaliczny roztwór FDG w 7 ml wody i wymieszać go z roztworem neutralizującym (5 ml buforu cytrynianowego i 1 ml 2 N HCl).
    9. Oczyść powstały zneutralizowany roztwór FDG.
      1. Przepuścić zobojętniony roztwór FDG przez drugi wkład z odwróconą fazą (patrz Tabela materiałów), zachowując częściowo zhydrolizowane związki i niepolarne produkty uboczne.
      2. Przepuścić go przez wkład z tlenkiem glinu N (patrz Tabela materiałów), zachowując ostatnie ślady nieprzereagowanych jonów [18F]fluorku. Następnie przepuść go przez filtr 0,22 μm.
      3. Wypłucz kasetę i wkłady, przefiltruj je z 3 ml wody, aby odzyskać resztki FDG, które pozostały w przewodach, a następnie spuść FDG do końcowej fiolki, która zawiera 15 - 17 ml płynu.
    10. Przeprowadzić analizę jakościową znacznika [18F]FDG (2 h 30 min po starcie).
      1. Obserwować wzrokowo fiolkę. Upewnij się, że jest przezroczysty i że nie zawiera żadnych cząstek.
      2. Odmierz ilość płynu za pomocą wagi Robervala (powinna wynosić 15 - 17 ml).
      3. Zmierzyć radioaktywność i okres półtrwania za pomocą kalibratora dawki izotopów promieniotwórczych (tak samo jak w kroku 2.3, patrz tabela materiałów) (kryterium: 105 - 115 min).
      4. Dozować 0,5 ml z fiolki. Przeprowadzić test czystości radiochemicznej poprzez analizę węglowodanów. Do wysokosprawnej chromatografii cieczowej należy używać kolumn o wymiarach 3,9 x 300 mm (patrz tabela materiałów) w celu wykrycia szczytowej radioaktywności (powyżej 95).
        Uwaga: Pojedynczy pik oznacza wysoką czystość.
      5. Zmierz pH (pH 5,0 - 8,0) za pomocą bibuły testowej pH (patrz tabela materiałów). Zmierzyć pozostałość 4,7,13,16,21,24-heksaoksa-1,10-diazabicyklo[8.8.8]heksakozanu (patrz tabela materiałów) (< 40 ppm) za pomocą papieru testowego (patrz tabela materiałów). Zmierzyć endotoksyny za pomocą odpowiedniego urządzenia do pomiaru endotoksyn poprzez pomiar absorbancji (patrz tabela materiałów) (0,25 EU/ml). Wykonać test na sterylność (nie znajdując bakterii po 8 dniach w temperaturze 37 °C).
    11. Napełnić fiolkę pokrytą ołowiem i wolframem znacznikiem [18F]FDG w dawce 5 MBq/kg masy ciała.
    12. Przenieś znacznik [18F]FDG z gorącego laboratorium do pomieszczenia roboczego (3 h 25 min po rozpoczęciu).

3. Przebieg czasowy pozyskiwania [18f]obrazów mózgu FDG-PET/CT

  1. Zaplanuj pacjentów. Pamiętaj, aby poinformować personel, aby zaprzestał odżywiania i karmienia przez gastrostomię. Nie przestawaj dostarczać wody. Pacjenci powinni pościć od 7 godzin przed akwizycją obrazu.
  2. Przygotować drogę dożylną do podania znacznika [18F]FDG. Zabezpiecz igłę o sile od 22 do 24 g z 5 ml heparyny sodowej (10 jednostek/ml) na jednej z kończyn dolnych przed wejściem do obszaru kontrolowanego promieniowaniem.
  3. Niech pacjenci położą się na lekkich noszach przed wejściem do obszaru kontrolowanego promieniowaniem. Przyprowadź pacjentów do obszaru kontrolowanego promieniowaniem i poczekaj 30 minut w ciszy, podczas gdy personel medyczny będzie w gotowości.
  4. Ponownie sprawdź drożność drogi dożylnej, pobierając krew za pomocą strzykawki o pojemności 10 ml. Zmierz poziom glukozy we krwi za pomocą glukometru.
  5. Po przeniesieniu znacznika [18F]FDG z gorącego laboratorium do pomieszczenia roboczego, należy go ustawić w systemie automatycznego dozowania i wtryskiwania (patrz Tabela materiałów).
  6. Ponownie sprawdź następujące informacje (za pośrednictwem personelu medycznego): numer identyfikacyjny pacjenta, imię i nazwisko, data urodzenia, wzrost i masa ciała; nazwę znacznika, ilość znacznika (woda z 3,5 ml znacznika [18F]FDG + 12 ml soli fizjologicznej), zaprogramowaną radioaktywność (5 MBq/kg), czas wstrzyknięcia, numer serii znacznika FDG [18F]FDG, prędkość wstrzykiwania (normalnie, 0,3 mL/s) oraz poziom radioaktywności, który został zmierzony w gorącym laboratorium.
  7. Zapisać automatyczny pomiar wstępnie wstrzykniętej radioaktywności, który pojawia się na wyświetlaczu systemu automatycznego dozowania i wstrzykiwania.
  8. Wstrzyknąć znacznik [18F]FDG drogą dożylną przygotowaną w kroku 3.2 (3 godziny 30 minut po rozpoczęciu).
  9. Zapisać pozostałą objętość znacznika [18F]FDG, która jest automatycznie pokazywana na wyświetlaczu systemu automatycznego dozowania i wtryskiwania.
  10. Niech pacjenci czekają w poczekalni w obszarze kontrolowanym promieniowaniem przez 50 minut.
  11. Przenieść pacjentów z poczekalni do aparatu PET/CT (patrz Tabela Materiałów). Rejestruj obrazy mózgu przez 10 minut (4 godziny 30 minut po starcie).
    Uwaga: Parametry obrazowania dla obrazów [18FDG-PET/CT] to 10-minutowy tryb listy. Odtwórz dane z 10-minutowych pojemników. Dane poniżej 3 minut nie są używane, ponieważ sygnały o niskiej intensywności nie są odpowiednie. Ustaw parametry rekonstrukcji obrazu: blokowy sekwencyjny, regularny algorytm rekonstrukcji maksymalizacji oczekiwań (patrz Tabela materiałów); rozmiar matrycy = 192; pole widzenia = 25 cm; β-wartość: 100 - 200; Filtr osi Z: brak.
  12. Po wykonaniu zdjęć należy sprawdzić, czy w miejscu wstrzyknięcia nie doszło do wynaczynienia. Wyrzuć cały mocz, jeśli pacjent ma cewnik moczowy z workiem na mocz.
  13. Usunąć pacjenta z obszaru kontrolowanego promieniowaniem (4 h 50 min po rozpoczęciu).
    Uwaga: Zobacz Rysunek 1 dla schematu harmonogramu wydarzeń (procedura pacjenta i synteza znacznika [18F]FDG).

4. Analiza [18obrazów FDG-PET/CT

]
  1. Oceń wszystkie dane obrazu w celu pomiaru znormalizowanej wartości wychwytu (SUV) za pomocą oprogramowania do obrazowania (patrz Tabela materiałów).
  2. Wybierz pacjentów.
  3. Przypisz dane do przepływu pracy w onkologii MM.
  4. Kliknij przycisk dla przeglądarek funkcjonalnych.
  5. Kliknij przycisk progu VOI (wolumen zainteresowania).
  6. Ustaw sferę VOI na przeglądarkę trójwymiarową.
    Uwaga: Maksymalny SUV (SUVmax) i średni SUV (SUVmean) są automatycznie mierzone dla VOI zgodnie z wybranym progiem SUVmax. Pamiętaj, aby narysować obramowanie wokół docelowego VOI w przeglądarce za pomocą trójwymiarowej sfery, wykluczając inne cele, mięśnie zewnątrzgałkowe i skórę głowy, ponieważ mają one tendencję do zakłócania ustawionego progu SUV. Sprawdź obszar docelowy na wycinkach osiowych, czołowych i strzałkowych.
  7. Po wybraniu wszystkich odpowiednich ustawień kliknij przycisk Edytuj miarę.
  8. Zmień wartość progową (np. 50%) VOI i kliknij OK.
  9. Zapisz SUVmax, SUVmean, objętość docelową i próg obszaru docelowego, które są mierzone automatycznie.
  10. Aby sterycznie zobrazować metabolizm glukozy na całej powierzchni mózgu, użyj oprogramowania (patrz tabela materiałów) w celu ustawienia mapy kolorów dla obrazów [18F]FDG-PET/CT na podstawie stężenia glukozy we krwi.
  11. Na koniec porównaj ocenę kliniczną z obrazami [18F]FDG-PET/CT.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Wyniki

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

63-letni mężczyzna, który został przejechany przez samochód podczas jazdy na rowerze, został przewieziony karetką na pogotowie. Badanie wykazało wynik w skali śpiączki Glasgow wynoszący 7 (otwarcie oczu = 1, najlepsza odpowiedź werbalna = 2, najlepsza reakcja motoryczna = 4), anizokoria (po prawej: 2 mm i po lewej: 3 mm) oraz negatywna odpowiedź rogówki17. Tomografia komputerowa głowy wykazała krwotok podpajęczynówkowy i śródczaszkowy oraz złamanie czaszk...

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Dyskusja

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Protokół ten zapewnia środki do przeprowadzenia serii ocen metabolicznych glukozy w mózgu za pomocą [18F]FDG-PET/CT przy użyciu samodzielnie wyprodukowanego znacznika [18F]FDG w jednej instytucji.

Produkcja znacznika [18F]FDG przebiega zgodnie z procedurą opisaną w instrukcji obsługi syntezatora FDG; Należy jednak zachować ostrożność w odniesieniu do trzech punktów. Po pierwsze, czas i energia bombardowania (krok 2.5) powinny być dostosowane do liczby pacjentów...

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Oświadczenia

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Autorzy nie mają nic do ujawnienia.

Podziękowania

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Autorzy pragną podziękować doktorowi Uchino w szpitalu w Sousen za wszystkie zabiegi. Autorzy dziękują również Adamowi Phillipsowi z Edanz Group (www.edanzediting.com/ac) za redakcję szkicu tego manuskryptu.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
Strzykawka 20mlTerumoSS-20ESZ
10ml strzykawkaTerumoSS-10ESZ
Strzykawka 1mlTerumoSS-01T
Korek ochronnyTopML-KS
L typ 180°TerumoTS-TL2K
Rurka przedłużającaTopX1-50
Igła na stałe 22G lub 24GTerumoSR-OT2225C
Tegaderm przezroczysty opatrunek3M1624W
Hepaflash 10U/ml 10mlTerumoPF-10HF10UA
Automatyczny system dozowania i wstrzykiwaniaUniversal Giken Co., Ltd.UG-01
Płyn do automatycznego systemu dozowania i wtryskuUniversal Giken Co., Ltd.UG-01-001
Millex-GS Filtr strzykawkowyMilliporeSLGSV255F
Igła powietrznaTerumoXX-MFA2038
Zawór zwrotnyHakko23310100
Saline 500mlHIKARI pharmaceutical Co., Ltd.18610155-3
Yukiban 25x7mmNitto3252
Elascot No.3Alcare44903221
Presnet No.3 27x20mmAlcare11674
Steri Cotto A 4x4cmKawamoto023-720220-00
StatstripXp3Nova Biomedical11-110
Statstrip Paski glukozyNova Biomedyczny11-106
JMSsheetJMSJN-SW3X
Podkładka iniekcyjnaNichibanNo.30-N
SteptyNichibanNo.80
Advantage Stacja roboczaGE HealthcareVolume Share 7. Wersja 4.7
Discovery MI PET/CTGE Healthcare
EV InsitePSP
Zestaw odczynników do syntezatora GE TRACERlab MXFDGABXK-105TM
Kaseta TRACERlab MXFDGHealthcareP5150ME
Rurka przedłużającaUniversal Giken Co., LtdAT511-ST-001
Igła do wstrzykiwań sterylizowana TSK 18x100TochigiseikoAT511-ST-004
Sterylizowana igła iniekcyjna TSK 18x60TochigiseikoAT511-ST-002
Sterylizowana igła iniekcyjna TSK 21x65TochigiseikoAT511-ST-003
Uszczelka sterylna fiolka -N 5mlMita Rika Kogyo Co., Ltd.
Płyta TLC k222Universal Giken Co., Ltd.AT511-01-005
Papier testowy kationów anionówToyo Roshi Kaisha7030010
Zestaw Endospecy ES-24SSeikagaku corporation20170
Sterylna fiolka próżniowaGi phama10214
Strzykawka 5 mlTerumoSS-05SZ
Rurka przedłużającaTopX-120
Filtr dokładny FForte uprawia Co.Ltd medyczne.F162
Millex FGMerckSLFG I25 LS
Wentylowany Millex GSMerckSLGS V25 5F
Igła iniekcyjna 18x38TerumoNN-1838R
Igła iniekcyjna 21x38TerumoNN-2138R
Water-18OTaiyo Nippon SansoF03-0027
Woda destylowanaOtsuka frmakeutyka
Wodór gazowy G1Hosi Iryou Sanki
Hel gazowy G1Hosi Iryou Sanki
Azot G1Hosi Iryou Sanki
TRACERlabMXFDGGE Healthcare
Sep-Pak Light Accell Plus QMAWATERS
Sep-Pak Plus tC18WATERS
Sep-Pak Plus Alumina NWATERS
HPLC z kolumnami 3,9 x 300 mmWATERS
US-2000Universal Giken CO., Ltd.
Kryptofix222Merck
EG Czytnik SV-12Seikagaku Corporation
UG-01Universal Giken Co., Ltd.
syngo.viaSiemens Healthineers
Advantage Workstation Volume Share 7, wersja 4.7GE Healthcare
CRC-15PET kalibrator dawkiCAPINTEC, INC.
Kurek trójdrogowy GE SSVN5CBFA Q clear GE Healthcare

Bibliografia

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Godbolt, A. K., et al. Disorders of consciousness after severe traumatic brain injury: a Swedish-Icelandic study of incidence, outcomes and implications for optimizing care pathways. Journal of Rehabilitation Medicine. 45 (8), 741-748 (2013).
  2. Klingshirn, H., et al. Quality of evidence of rehabilitation interventions in long-term care for people with severe disorders of consciousness after brain injury: A systematic review. Journal of Rehabilitation Medicine. 47 (7), 577-585 (2015).
  3. Fischer, D. B., Truog, R. D. What is a reflex? A guide for understanding disorders of consciousness. Neurology. 85 (6), 543-548 (2015).
  4. Klingshirn, H., et al. RECAPDOC - a questionnaire for the documentation of rehabilitation care utilization in individuals with disorders of consciousness in long-term care in Germany: development and pretesting. BMC Health Services Research. 18 (1), 329(2018).
  5. Stéfan, A., Mathé, J. F. SOFMER group. What are the disruptive symptoms of behavioral disorders after traumatic brain injury? A systematic review leading to recommendations for good practices. Annals of Physical and Rehabilitation. 59, 5-17 (2016).
  6. Liu, S., et al. Multimodal neuroimaging computing: a review of the applications in neuropsychiatric disorders. Brain Informatics. 2 (3), 167-180 (2015).
  7. Wong, K. P., et al. A semi-automated workflow solution for multimodal neuroimaging: application to patients with traumatic brain injury. Brain Informatics. 3 (1), 1-15 (2016).
  8. Chennu, S., et al. Brain networks predict metabolism, diagnosis and prognosis at the bedside in disorders of consciousness. Brain. 140 (8), 2120-2132 (2017).
  9. Di Perri, C., et al. Neural correlates of consciousnes s in patients who have emerged from a minimally conscious state: a cross-sectional multimodal imaging study. The Lancet Neurology. 15 (8), 830-842 (2016).
  10. Erecińska, M., Silver, I. A. ATP and brain function. Journal of Cerebral Blood Flow & Metabolism. 9 (1), 2-19 (1989).
  11. Lundgaard, I., et al. Direct neuronal glucose uptake heralds activity-dependent increases in cerebral metabolism. Nature Communications. 6, 6807(2015).
  12. Byrnes, K. R., et al. FDG-PET imaging in mild traumatic brain injury: a critical review. Frontiers in Neuroenergetics. 5, 13(2014).
  13. Mortensen, K. N., et al. Impact of Global Mean Normalization on Regional. Glucose Metabolism in the Human Brain. Neural Plasticity. , 6120925(2018).
  14. Wagatsuma, K., et al. Comparison between new-generation SiPM-based and conventional PMT-based TOF-PET/CT. Physica Medica. 42, 203-210 (2017).
  15. Fukukita, H., et al. Japanese guideline for the oncology FDG-PET/CT data acquisition protocol: synopsis of Version 2.0. Annals of Nuclear Medicine. 28 (7), 693-705 (2014).
  16. Varrone, A., et al. European Association of Nuclear Medicine Neuroimaging Committee. EANM procedure guidelines for PET brain imaging using [18F]FDG, version 2. European Journal of Nuclear Medicine and Molecular Imaging. 36 (12), 2103-2110 (2009).
  17. Teasdale, G., Jennett, B. Assessment of coma and impaired consciousness. A practical scale. The Lancet. 2 (7872), 81-84 (1974).
  18. Valadka, A. B. Injury to the cranium. Trauma. Moore, E. J., Feliciano, D. V., Moore, E. E. , McGraw-Hill. New York, NY. 377-399 (2000).
  19. Carney, N., et al. Guidelines for the Management of Severe Traumatic Brain Injury, Fourth Edition. Neurosurgery. 80 (1), 6-15 (2017).
  20. Giacino, J. T., Kalmar, K., Whyte, J. The JFK Coma Recovery Scale-Revised: measurement characteristics and diagnostic utility. Archives of Physical Medicine and Rehabilitation. 85 (12), 2020-2029 (2004).
  21. Schnakers, C., et al. The Nociception Coma Scale: a new tool to assess nociception in disorders of consciousness. Pain. 148 (2), 215-219 (2010).
  22. Shiel, A., et al. The Wessex Head Injury Matrix (WHIM) main scale: a preliminary report on a scale to assess and monitor patient recovery after severe head injury. Clinical Rehabilitation. 14 (4), 408-416 (2000).
  23. GE Healthcare. TRACERlabMXFDG operator manual, Version 1. , (2003).
  24. Yamaki, T., et al. Association between uncooperativeness and the glucose metabolism of patients with chronic behavioral disorders after severe traumatic brain injury: a cross-sectional retrospective study. BioPsychoSocial Medicine. 12, 6(2018).
  25. Schwaiger, M., Wester, H. J. How many PET tracers do we need? Journal of Nuclear Medicine. 52, Suppl 2, 36S-41S (2011).

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Przedruki i uprawnienia

Poproś o pozwolenie na ponowne wykorzystanie tekstu lub ilustracji tego artykułu JoVE

Poproś o pozwolenie

Tagi

Obrazowanie PET CTmetabolizm glukozy w m zguanaliza obszaru zainteresowaniaautomatyczna synteza FDGtest czysto ci radiochemicznejpodanie do ylnestandaryzowana warto pobraniaobszar kontrolowany radiologicznieprzygotowanie w laboratorium radiochemicznym

Powiązane artykuły