Subskrypcja JoVE jest wymagana do oglądania tego materiału. Zaloguj się lub rozpocznij bezpłatny okres próbny.

Artykuł metodologiczny

Ocena półilościowa przy użyciu znacznika FDG [18F] u pacjentów z ciężkim uszkodzeniem mózgu

6.7K wyświetleń

⸱

DOI:

10.3791/58641

⸱

9 listopada 2018

 ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  , 
1Division of Neurosurgery, Rehabilitation Center for Traumatic Apallics Chiba, National Agency for Automotive Safety and Victims' Aid, 2Division of PET imaging, Rehabilitation Center for Traumatic Apallics Chiba, National Agency for Automotive Safety and Victims' Aid, 3Tokyo Nuclear Services Co. Ltd., 4Department of Neurological Surgery, Graduate School of Medicine, Chiba University

W tym artykule

Podsumowanie

[18F]-fluorodeoksyglukoza (FDG) pozytonowa tomografia emisyjna-tomografia komputerowa jest przydatna do badania metabolizmu glukozy związanego z funkcjonowaniem mózgu. W tym miejscu przedstawiamy protokół konfiguracji znacznika [18F] FDG i półilościowej oceny analizy regionu zainteresowania dla docelowych obszarów mózgu związanych z objawami klinicznymi u pacjentów z ciężkim urazowym uszkodzeniem mózgu.

Streszczenie

Pacjenci z ciężkim urazowym uszkodzeniem mózgu (sTBI) mają trudności z określeniem, czy wyrażają swoje myśli i emocje poprawnie z powodu zaburzeń świadomości, zaburzonych wyższych funkcji mózgu i zaburzeń werbalnych. W wyniku niewystarczającej zdolności do komunikowania się potrzebne są obiektywne oceny ze strony członków rodziny, personelu medycznego i opiekunów. Jedną z takich ocen jest ocena funkcjonujących obszarów mózgu. Ostatnio multimodalne obrazowanie mózgu zostało wykorzystane do zbadania funkcji uszkodzonych obszarów mózgu. [18F]-fluorodeoksyglukoza pozytonowa tomografia emisyjna - tomografia komputerowa ([18F]FDG-PET/CT) jest skutecznym narzędziem do badania funkcji mózgu. Jednak ocena metabolizmu glukozy w mózgu na podstawie [18F]FDG-PET/CT nie jest ustandaryzowana i zależy od kilku różnych parametrów, a także od stanu pacjenta. W tym miejscu opisujemy serię półilościowych protokołów oceny dla analizy obrazu regionu zainteresowania (ROI) przy użyciu samodzielnie wyprodukowanych znaczników [18F]FDG u pacjentów z sTBI. Protokół koncentruje się na badaniach przesiewowych uczestników, przygotowaniu znacznika FDG [18F]FDG w gorącym laboratorium, zaplanowaniu akwizycji obrazów mózgu [18F]FDG-PET/CT oraz pomiarze metabolizmu glukozy za pomocą analizy ROI z docelowego obszaru mózgu.

Wprowadzenie

Pacjenci z sTBI doświadczają nieprzewidywalnych trudności neurologicznych w trakcie rehabilitacji, które obejmują deficyty motoryczne, deficyty sensoryczne i niestabilność psychiczną1. Chociaż ocena kliniczna jest na ogół przeprowadzana werbalnie, pacjenci z sTBI, takimi jak zespół braku reakcji na czuwanie lub stan minimalnej świadomości, mają szczególne trudności z ustaleniem, czy dokładnie wyrażają swoje myśli i emocje z powodu zaburzeń świadomości, zakłóconych wyższych funkcji mózgu i zaburzeń werbalnych2,3. Członkowie rodziny, personel medyczny i opiekunowie są czasami zdezorientowani nieprzewidywalnymi zmianami neurologicznymi lub brakiem odpowiedzi, który może wynikać z niewystarczającej zdolności komunikacyjnej4,5.

Ostatnio multimodalne obrazowanie mózgu zostało wykorzystane do zbadania regionalnych funkcji mózgu6,7,8,9. Mózg jest głównym konsumentem energii pochodzącej z glukozy, a metabolizm glukozy dostarcza około 95% trifosforanu adenozyny (ATP) niezbędnego do funkcjonowania mózgu10. Wychwyt [18F]-fluorodeoksyglukozy (FDG) jest markerem wychwytu glukozy przez tkankę mózgową. [18plików]FDG-PET/CT może wykrywać [18F]wychwyt FDG i dlatego jest użytecznym narzędziem do badania funkcji mózgu11. Ogólnie rzecz biorąc, analiza obrazu [18F]FDG jest podzielona na dwie kategorie: analiza ROI i analiza oparta na wokselach (VBA)12. Poprzednie raporty pokazują, że analiza ROI jest preferowana do badania określonych regionów urazu. Dzieje się tak, ponieważ VBA (takie jak statystyczne mapowanie parametryczne [SPM]) wymaga korejestracji i normalizacji do standardowego mózgu, co nie działa dobrze w przypadkach TBI z powodu deformacji tkanki mózgowej, takiej jak atrofia mózgu, obrzęk, powiększenie i kurczenie się przestrzeni komorowej7,12. Chociaż opracowano różne algorytmy i oprogramowanie do analizy danych rezonansu magnetycznego (MRI), metale stosowane w chirurgii neurochirurgicznej i ortopedycznej generują artefakty hałasu7,12,13. Ostatnio zastosowanie fotopowielaczy w urządzeniach PET/CT poprawiło rozdzielczość przestrzenną obrazów mózgu pochodzących z PET/CT14. Obecny protokół koncentruje się na półilościowym pomiarze wychwytu glukozy za pomocą analizy ROI w [18F]FDG-PET/CT przy użyciu samodzielnie wyprodukowanych znaczników [18F]FDG u pacjentów z sTBI.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Protokół

Badanie to zostało przeprowadzone zgodnie z decyzją instytucjonalnej komisji bioetycznej (zatwierdzenie nr 07-01) i zgodnie z zasadami Deklaracji Helsińskiej. Od prawnych reprezentantów pacjentów uzyskano świadomą zgodę na wykorzystanie dokumentacji medycznej oraz obrazów mózgu. Badanie przeprowadzono po uzyskaniu zgody instytucjonalnej komisji etyki (2017-14). Niniejszy protokół został opracowany w oparciu o wytyczne Japońskiego Towarzystwa Medycyny Nuklearnej oraz Europejskiego Stowarzyszenia Medycyny Nuklearnej15,16.

1. Przesiewowe badanie uczestników

  1. Uzyskać świadomą zgodę od prawnych reprezentantów pacjentów na wykorzystanie ich dokumentacji medycznej oraz obrazów mózgu. W dokumentacji medycznej każdego pacjenta musi być odnotowany wynik w skali Glasgow Coma Scale ≤ 8 w momencie wypadku17,18,19.
  2. Przeprowadzać co sześć miesięcy konsylia zespołu neurologicznego, psychologicznego i wielodyscyplinarnego w celu oceny manifestacji klinicznych.
    Uwaga: W skład konsylium powinni wchodzić pracownicy medyczni, tacy jak lekarze, pielęgniarki, fizjoterapeuci, terapeuci zajęciowi, logopedzi, dietetycy oraz pracownicy socjalni. Należy stale sprawdzać, czy pacjenci mogą komunikować się (werbalnie lub niewerbalnie) i samodzielnie podejmować decyzje, ponieważ stan pobudzenia i status neurologiczny są zazwyczaj niestabilne.
  3. Przeprowadzić oceny kliniczne funkcji słuchu, funkcji wzroku, funkcji motorycznych, funkcji okołoustnych/werbalnych, funkcji komunikacyjnych, stanu pobudzenia, mimiki twarzy oraz innych istotnych funkcji, wykorzystując standardowe baterie testowe, takie jak Coma Recovery Scale-Revised (CRS-R), Nociception Coma Scale oraz Wessex Head Injury Matrix20,21,22.
  4. Zaplanować badania [18F]FDG-PET/CT dla pacjentów, którzy są stabilni medycznie i mogą bezpiecznie uczestniczyć w badaniach. Zaplanować badania wyłącznie dla osób, które wyraziły świadomą zgodę lub których prawni reprezentanci wyrazili świadomą zgodę, zgodnie z treścią formularza świadomej zgody. Nabycie obrazów [18F]FDG-PET/CT należy zaplanować w terminie bliskim dacie oceny klinicznej.

2. Przygotowanie znacznika [18F]FDG w laboratorium radiochemicznym

  1. W laboratorium gorącym rozpocznij przygotowywanie zestawów odczynnikowych do zautomatyzowanej produkcji FDG, dostosowanych do syntezatora FDG (patrz Tabela materiałów). Należy użyć programu automatycznego, aby sprawdzić mobilność systemu pompowania w syntezatorze FDG oraz upewnić się, że z zestawu z odczynnikami nie wycieka powietrze. Sterylizację powierzchni kontaktowej urządzenia należy przeprowadzić w czasie startowym.
    Uwaga: Należy pamiętać o sprawdzeniu monitora promieniowania w laboratorium radiologicznym oraz użyciu przenośnych dozymetrów do sprawdzenia poziomu promieniowania u każdej osoby przed wejściem do laboratorium radiologicznego.
  2. Sprawdź objętość [16woda i [18wodę oraz objętość helu, wodoru i azotu w zbiorniku gazowym. Sprawdzić, czy temperatura wody z kranu do chłodzenia wstępnego jest poniżej 25 °C a dla chłodzenia wtórnego wynosi poniżej 22 °CWszystkie zasoby wody w układzie zamkniętym (30 min po rozpoczęciu) należy wykorzystać do produkcji.
  3. Rozpocząć wstępne naświetlanie [16wodę w cyklotronie (1 h po rozpoczęciu). Sprawdzić monitor, aby upewnić się, że 2–3 ml [16Wodę [O] naświetla się w optymalnych warunkach (np., 20 µA, 5 min) w obszarze docelowym cyklotronu. Po napromieniowaniu zainstaluj fiolkę z [16wodę do kalibratora dawek radioizotopowych i zmierz poziom radioaktywności (patrz Tabela materiałów).
    Uwaga: Rozpad promieniotwórczy należy obliczyć za pomocą następującego wzoru.
    Równanie rozpadu promieniotwórczego N(t)=N(0)×(1/2)^(t/T) obrazujące proces rozpadu wykładniczego.
    Tutaj,
    N(t) to liczba jąder promieniotwórczych w czasie t = t sekundy;
    N(0) to liczba jąder promieniotwórczych w czasie t = 0 sekund;
    T = okres połowicznego rozpadu.
  4. Rozpocząć naświetlanie [18wodę w cyklotronie (1 h 30 min po rozpoczęciu). Ustawić czas bombardowania do 20 min oraz energię padających protonów na 16,5 MeV.
  5. Uruchom syntezator FDG zgodnie z instrukcją obsługi22 (2 h po rozpoczęciu). Zmodyfikowana procedura została przedstawiona poniżej.
    1. Po napromieniowaniu należy użyć helu do przeniesienia 2–3 ml [18woda z cyklotronu do polipropylenowego odbiornika syntetyzatora FDG.
    2. Zamocuj strzykawki do odpowiednich sterowników strzykawek, wtłocz ciśnienie do fiolek z odczynnikami, rozpuść 1,3,4,6-tetra-O-acetylo-2-O-trifluorometanosulfonylo-β-D-mannopiranozę w jednej fiolce (7 ± 0,2 ml) acetonitrylu (czystość ≥ 99,5%) i przepłucz kasetę acetonitrylem.
    3. Po bombardowaniu przenieś napromieniowane [16woda i [18wodę do syntetyzatora FDG.
      Uwaga: Po rozpoczęciu syntezy naświetlane [18woda przepływa przez kartridż do wymiany anionowej (patrz Tabela materiałów). Przed syntezą należy pamiętać o kondycjonowaniu i konwersji kolumny na formę węglanową.
    4. Po przeniesieniu eluentu zawierającego [18bez wprowadzenia cieczy do naczyń reakcyjnych, należy pozwolić rozpuszczalnikom odparować do całkowitego wyschnięcia. W trakcie procesu suszenia do naczynia reakcyjnego należy dodać niewielkie ilości acetonitrylu 3 razy (za każdym razem dodając 80 µL). Odparowanie należy przeprowadzić w 95 °C w przepływie azotu i próżni.
    5. Do suchego pozostałości dodać prekursor triflanu mannozy (25 mg) po uprzednim rozpuszczeniu go w około 3,5 ml acetonitrylu (o czystości ≥ 99,5%). Wówczas zachodzi reakcja substytucji nukleofilowej w 85 °C w syntetyzatorze FDG.
    6. W ramach wstępnego oczyszczania wymieszać roztwór z etykietą z 26 ml wody destylowanej. Około 4 ml rozcieńczonego roztworu znakującego przenieść z powrotem do naczynia reakcyjnego w celu odzyskania pozostałej aktywności. Przepuścić roztwór przez kartridż do chromatografii odwróconej (patrz Tabela materiałów). Wypłukać wkład zawierający zatrzymany znakowany prekursor 4 razy, używając w kolejnych etapach płukania odpowiednio 10 ml, 10 ml, 13 ml i 13 ml wody destylowanej.
    7. Przekształcić związek acetylowany (prekursor znakowany) w FDG wewnątrz kartridża poprzez hydroliza alkaliczna, z użyciem 750 µL 2 N NaOH przez 2 min w temperaturze pokojowej.
    8. Po hydrolizie zebrać zasadowy roztwór FDG w 7 ml wody i wymieszać go z roztworem neutralizującym (5 ml buforu cytrynianowego i 1 ml 2 N HCl).
    9. Oczyść otrzymany zneutralizowany roztwór FDG.
      1. Przepuść zneutralizowany roztwór FDG przez drugi kartridż do chromatografii odwróconej (patrz Tabela materiałów), zatrzymując związki częściowo zhydrolizowane oraz niepolarne produkty uboczne.
      2. Przepuść roztwór przez kartridż Alumina N (patrz Tabela materiałów), zachowując ostatnie ślady nieprzereagowanego [18jony fluorkowe. Następnie przepuścić je przez filtr 0,22-µm filtr
      3. Przepłucz kasetę i wkłady, filtrując 3 ml wody w celu odzyskania pozostałego w liniach FDG, a następnie odprowadź FDG do końcowej fiolki zawierającej 15–17 ml cieczy.
    10. Przeprowadź analizę jakościową [18znacznik F]FDG (2 h 30 min po rozpoczęciu).
      1. Dokonaj oględzin fiolki. Potwierdź, że jest przezroczysta i nie zawiera żadnych cząstek.
      2. Odmierzyć ilość cieczy za pomocą wagi Robervala (powinno to być 15–17 ml).
      3. Zmień aktywność promieniotwórczą oraz okres połowicznego rozpadu za pomocą kalibratora dawek izotopów promieniotwórczych (tak jak w kroku 2.3, patrz Tabela materiałów) (kryterium: 105–115 min).
      4. Odmierz 0,5 ml z fiolki. Wykonaj badanie czystości radiochemicznej. poprzez analiza węglowodanów. Do wysokosprawnej chromatografii cieczowej należy użyć kolumn o wymiarach 3,9 x 300 mm (patrz Tabela materiałów) w celu wykrycia szczytowej radioaktywności (powyżej 95).
        Uwaga: Pojedynczy piki oznacza wysoką czystość.
      5. Zmierz pH (pH 5,0–8,0) za pomocą papierka lakmusowego (patrz Tabela materiałów). Zmierz pozostałą ilość 4,7,13,16,21,24-heksaoaksa-1,10-diazabicyklo[8.8.8]heksakozanu (patrz Tabela materiałów) (< 40 ppm) przy użyciu papierka testowego (patrz Lista materiałów). Poziom endotoksyn należy zmierzyć za pomocą odpowiedniego urządzenia do pomiaru endotoksyn poprzez pomiar absorbancji (patrz Tabela materiałów) (0,25 EU/mL). Przeprowadzić test jałowości (brak bakterii po 8 dniach w temp. 37 °C).
    11. Napełnić fiolkę osłoniętą ołowiem i wolframem za pomocą [18znacznik F-FDG w dawce 5 MBq/kg masy ciała.
    12. Przenieś [18Przeniesienie znacznika F-FDG z laboratorium izotopowego do pomieszczenia roboczego (3 h 25 min po rozpoczęciu).

3. Harmonogram czasowy pozyskiwania obrazów PET/CT mózgu z użyciem [18F]FDG

  1. Zaplanuj wizyty pacjentów. Pamiętaj, aby poinformować personel o konieczności zaprzestania żywienia. poprzez gastrostomia. Nie należy przerywać podawania wody. Pacjenci powinni być na czczo na 7 h przed wykonaniem obrazowania.
  2. Przygotuj drogę dożylną dla [18Podanie znacznika FDG. Przed wejściem do strefy kontrolowanej pod kątem promieniowania należy założyć do jednej z kończyn dolnych igłę o rozmiarze 22–24 G z 5 ml heparyny sodowej (10 j./ml).
  3. Pacjenci powinni położyć się na lekkich noszach przed wejściem do strefy kontrolowanej radiologicznie. Należy wprowadzić pacjentów do strefy kontrolowanej radiologicznie i odczekać 30 min w ciszy, podczas gdy personel medyczny pozostaje w gotowości.
  4. Ponownie sprawdź drożność drogi dożylnej, pobierając krew za pomocą strzykawki 10 ml. Zmierz poziom glukozy we krwi za pomocą glukometru.
  5. Po przeniesieniu [18Przenieś znacznik F-FDG z laboratorium gorącego do pomieszczenia roboczego i umieść go w systemie automatycznego dozowania i iniekcji (patrz Tabela materiałów).
  6. Ponownie sprawdź następujące informacje (poprzez personelu medycznego): numer identyfikacyjny pacjenta, imię i nazwisko, data urodzenia, wzrost oraz masa ciała; nazwę znacznika, ilość znacznika (woda z 3,5 ml [18znacznika [18F]FDG + 12 ml soli fizjologicznej), zaprogramowaną aktywność promieniotwórczą (5 MBq/kg), czas wstrzyknięcia, [18numer partii znacznika FDG, prędkość wstrzykiwania (zwykle 0,3 ml/s) oraz poziom radioaktywności zmierzony w laboratorium radiologicznym.
  7. Zapisz wynik automatycznego pomiaru radioaktywności przed wstrzyknięciem, który wyświetla się na ekranie systemu automatycznego dozowania i wstrzykiwania.
  8. Wstrzyknij [18znacznik F-FDG poprzez drogę dożylną przygotowaną w kroku 3.2 (3 h 30 min po rozpoczęciu).
  9. Zapisz objętość pozostałości [18znacznika F-FDG, który jest automatycznie wyświetlany na ekranie systemu do automatycznego dozowania i wstrzykiwania.
  10. Pacjenci powinni oczekiwać w poczekalni strefy kontrolowanej radiologicznie przez 50 min.
  11. Przenieść pacjentów z poczekalni do urządzenia PET/CT (patrz Tabela materiałów). Rejestrować obrazy mózgu przez 10 min (4 h 30 min po rozpoczęciu).
    Uwaga: Parametry obrazowania dla [18Obrazy F-FDG-PET/CT są pozyskane w trybie list mode z czasem trwania 10 min. Dane należy zrekonstruować z przedziałów 10-minutowych. Dane z pierwszych 3 min nie są wykorzystywane ze względu na niewystarczającą intensywność sygnałów. Należy ustawić parametry rekonstrukcji obrazu: sekwencyjny blokowy algorytm maksymalizacji oczekiwania z regularyzacją (patrz Tabela materiałów); rozmiar macierzy = 192; pole widzenia = 25 cm; wartość β: 100–200; filtr osi z: brak.
  12. Po wykonaniu obrazów należy sprawdzić miejsce wstrzyknięcia pod kątem wystąpienia pozanaczyniowego przedostania się kontrastu. W przypadku pacjentów z cewnikiem moczowym i workiem na mocz należy opróżnić worek z całej zawartości.
  13. Wyprowadź pacjenta ze strefy kontrolowanej pod względem promieniowania (4 h 50 min po rozpoczęciu).
    Uwaga: Zobacz Rycina 1 schemat harmonogramu zdarzeń (procedura pacjenta i synteza [18znacznika FDG).

4. Analiza obrazów [18F]FDG-PET/CT

  1. Oceń wszystkie dane obrazowe w celu pomiaru standaryzowanej wartości wychwytu (SUV) przy użyciu oprogramowania do obrazowania (patrz Tabela materiałów).
  2. Wybrać pacjentów.
  3. Przypisz dane do onkologia szpiczaka mnogiego przepływ pracy
  4. Kliknij przycisk w celu Ffunkcjonalny przeglądarki
  5. Kliknij VOI (objętość próg (wartość graniczna) zainteresowania przycisk
  6. Ustaw sferę VOI w przeglądarce trójwymiarowej.
    Uwaga: Maksymalna wartość SUV (SUVmax) oraz średnia wartość SUV (SUVmean) są automatycznie mierzone dla VOI zgodnie z wybranym progiem SUVmax. Należy upewnić się, że w przeglądarce wyznaczono obrys wokół docelowego VOI za pomocą trójwymiarowej sfery, wykluczając inne cele, mięśnie pozagałkowe oraz skórę głowy, ponieważ mogą one zaburzać ustawiony próg SUV. Należy sprawdzić obszar docelowy na przekrojach osiowych, czołowych i strzałkowych.
  7. Po wybraniu wszystkich odpowiednich ustawień kliknij przycisk Edytuj pomiar przycisk
  8. Zmień wartość progu (np., 50%) obszaru zainteresowania (VOI) i kliknij Proszę podać tekst źródłowy do tłumaczenia..
  9. Zapisz wartości SUVmax, SUVmean, objętość celu oraz próg obszaru docelowego, które są mierzone automatycznie.
  10. Aby w sposób stereologiczny zwizualizować metabolizm glukozy na powierzchni całego mózgu, należy użyć oprogramowania (patrz Tabela materiałów) w celu ustawienia mapy kolorów dla [18Obrazy FDG-PET/CT w zależności od poziomu glukozy we krwi.
  11. Na koniec należy porównać ocenę kliniczną z [18Obrazy F-FDG-PET/CT.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Wyniki

Do izby przyjęć trafił 63-letni mężczyzna, który podczas jazdy na rowerze został potrącony przez samochód poprzez karetką pogotowia. Badanie wykazało wynik 7 punktów w skali Glasgow (otwieranie powiek = 1, najlepsza odpowiedź werbalna = 2, najlepsza odpowiedź motoryczna = 4), anizokorię (prawe oko: 2 mm, lewe oko: 3 mm) oraz ujemny odruch rogówkowy17Tomografia komputerowa (TK) głowy wykazała krwotok podpajęczynówkowy i wewnątrzczaszkowy oraz złamanie kości...

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Dyskusja

Protokół ten zapewnia środki do przeprowadzenia serii ocen metabolicznych glukozy w mózgu za pomocą [18F]FDG-PET/CT przy użyciu samodzielnie wyprodukowanego znacznika [18F]FDG w jednej instytucji.

Produkcja znacznika [18F]FDG przebiega zgodnie z procedurą opisaną w instrukcji obsługi syntezatora FDG; Należy jednak zachować ostrożność w odniesieniu do trzech punktów. Po pierwsze, czas i energia bombardowania (krok 2.5) powinny być dostosowane do liczby pacjentów...

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Oświadczenia

Autorzy nie mają nic do ujawnienia.

Podziękowania

Autorzy pragną podziękować doktorowi Uchino w szpitalu w Sousen za wszystkie zabiegi. Autorzy dziękują również Adamowi Phillipsowi z Edanz Group (www.edanzediting.com/ac) za redakcję szkicu tego manuskryptu.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
Strzykawka 20mlTerumoSS-20ESZ
10ml strzykawkaTerumoSS-10ESZ
Strzykawka 1mlTerumoSS-01T
Korek ochronnyTopML-KS
L typ 180°TerumoTS-TL2K
Rurka przedłużającaTopX1-50
Igła na stałe 22G lub 24GTerumoSR-OT2225C
Tegaderm przezroczysty opatrunek3M1624W
Hepaflash 10U/ml 10mlTerumoPF-10HF10UA
Automatyczny system dozowania i wstrzykiwaniaUniversal Giken Co., Ltd.UG-01
Płyn do automatycznego systemu dozowania i wtryskuUniversal Giken Co., Ltd.UG-01-001
Millex-GS Filtr strzykawkowyMilliporeSLGSV255F
Igła powietrznaTerumoXX-MFA2038
Zawór zwrotnyHakko23310100
Saline 500mlHIKARI pharmaceutical Co., Ltd.18610155-3
Yukiban 25x7mmNitto3252
Elascot No.3Alcare44903221
Presnet No.3 27x20mmAlcare11674
Steri Cotto A 4x4cmKawamoto023-720220-00
StatstripXp3Nova Biomedical11-110
Statstrip Paski glukozyNova Biomedyczny11-106
JMSsheetJMSJN-SW3X
Podkładka iniekcyjnaNichibanNo.30-N
SteptyNichibanNo.80
Advantage Stacja roboczaGE HealthcareVolume Share 7. Wersja 4.7
Discovery MI PET/CTGE Healthcare
EV InsitePSP
Zestaw odczynników do syntezatora GE TRACERlab MXFDGABXK-105TM
Kaseta TRACERlab MXFDGHealthcareP5150ME
Rurka przedłużającaUniversal Giken Co., LtdAT511-ST-001
Igła do wstrzykiwań sterylizowana TSK 18x100TochigiseikoAT511-ST-004
Sterylizowana igła iniekcyjna TSK 18x60TochigiseikoAT511-ST-002
Sterylizowana igła iniekcyjna TSK 21x65TochigiseikoAT511-ST-003
Uszczelka sterylna fiolka -N 5mlMita Rika Kogyo Co., Ltd.
Płyta TLC k222Universal Giken Co., Ltd.AT511-01-005
Papier testowy kationów anionówToyo Roshi Kaisha7030010
Zestaw Endospecy ES-24SSeikagaku corporation20170
Sterylna fiolka próżniowaGi phama10214
Strzykawka 5 mlTerumoSS-05SZ
Rurka przedłużającaTopX-120
Filtr dokładny FForte uprawia Co.Ltd medyczne.F162
Millex FGMerckSLFG I25 LS
Wentylowany Millex GSMerckSLGS V25 5F
Igła iniekcyjna 18x38TerumoNN-1838R
Igła iniekcyjna 21x38TerumoNN-2138R
Water-18OTaiyo Nippon SansoF03-0027
Woda destylowanaOtsuka frmakeutyka
Wodór gazowy G1Hosi Iryou Sanki
Hel gazowy G1Hosi Iryou Sanki
Azot G1Hosi Iryou Sanki
TRACERlabMXFDGGE Healthcare
Sep-Pak Light Accell Plus QMAWATERS
Sep-Pak Plus tC18WATERS
Sep-Pak Plus Alumina NWATERS
HPLC z kolumnami 3,9 x 300 mmWATERS
US-2000Universal Giken CO., Ltd.
Kryptofix222Merck
EG Czytnik SV-12Seikagaku Corporation
UG-01Universal Giken Co., Ltd.
syngo.viaSiemens Healthineers
Advantage Workstation Volume Share 7, wersja 4.7GE Healthcare
CRC-15PET kalibrator dawkiCAPINTEC, INC.
Kurek trójdrogowy GE SSVN5CBFA Q clear GE Healthcare

Bibliografia

  1. Godbolt, A. K., et al. Disorders of consciousness after severe traumatic brain injury: a Swedish-Icelandic study of incidence, outcomes and implications for optimizing care pathways. Journal of Rehabilitation Medicine. 45 (8), 741-748 (2013).
  2. Klingshirn, H., et al. Quality of evidence of rehabilitation interventions in long-term care for people with severe disorders of consciousness after brain injury: A systematic review. Journal of Rehabilitation Medicine. 47 (7), 577-585 (2015).
  3. Fischer, D. B., Truog, R. D. What is a reflex? A guide for understanding disorders of consciousness. Neurology. 85 (6), 543-548 (2015).
  4. Klingshirn, H., et al. RECAPDOC - a questionnaire for the documentation of rehabilitation care utilization in individuals with disorders of consciousness in long-term care in Germany: development and pretesting. BMC Health Services Research. 18 (1), 329(2018).
  5. Stéfan, A., Mathé, J. F. SOFMER group. What are the disruptive symptoms of behavioral disorders after traumatic brain injury? A systematic review leading to recommendations for good practices. Annals of Physical and Rehabilitation. 59, 5-17 (2016).
  6. Liu, S., et al. Multimodal neuroimaging computing: a review of the applications in neuropsychiatric disorders. Brain Informatics. 2 (3), 167-180 (2015).
  7. Wong, K. P., et al. A semi-automated workflow solution for multimodal neuroimaging: application to patients with traumatic brain injury. Brain Informatics. 3 (1), 1-15 (2016).
  8. Chennu, S., et al. Brain networks predict metabolism, diagnosis and prognosis at the bedside in disorders of consciousness. Brain. 140 (8), 2120-2132 (2017).
  9. Di Perri, C., et al. Neural correlates of consciousnes s in patients who have emerged from a minimally conscious state: a cross-sectional multimodal imaging study. The Lancet Neurology. 15 (8), 830-842 (2016).
  10. Erecińska, M., Silver, I. A. ATP and brain function. Journal of Cerebral Blood Flow & Metabolism. 9 (1), 2-19 (1989).
  11. Lundgaard, I., et al. Direct neuronal glucose uptake heralds activity-dependent increases in cerebral metabolism. Nature Communications. 6, 6807(2015).
  12. Byrnes, K. R., et al. FDG-PET imaging in mild traumatic brain injury: a critical review. Frontiers in Neuroenergetics. 5, 13(2014).
  13. Mortensen, K. N., et al. Impact of Global Mean Normalization on Regional. Glucose Metabolism in the Human Brain. Neural Plasticity. , 6120925(2018).
  14. Wagatsuma, K., et al. Comparison between new-generation SiPM-based and conventional PMT-based TOF-PET/CT. Physica Medica. 42, 203-210 (2017).
  15. Fukukita, H., et al. Japanese guideline for the oncology FDG-PET/CT data acquisition protocol: synopsis of Version 2.0. Annals of Nuclear Medicine. 28 (7), 693-705 (2014).
  16. Varrone, A., et al. European Association of Nuclear Medicine Neuroimaging Committee. EANM procedure guidelines for PET brain imaging using [18F]FDG, version 2. European Journal of Nuclear Medicine and Molecular Imaging. 36 (12), 2103-2110 (2009).
  17. Teasdale, G., Jennett, B. Assessment of coma and impaired consciousness. A practical scale. The Lancet. 2 (7872), 81-84 (1974).
  18. Valadka, A. B. Injury to the cranium. Trauma. Moore, E. J., Feliciano, D. V., Moore, E. E. , McGraw-Hill. New York, NY. 377-399 (2000).
  19. Carney, N., et al. Guidelines for the Management of Severe Traumatic Brain Injury, Fourth Edition. Neurosurgery. 80 (1), 6-15 (2017).
  20. Giacino, J. T., Kalmar, K., Whyte, J. The JFK Coma Recovery Scale-Revised: measurement characteristics and diagnostic utility. Archives of Physical Medicine and Rehabilitation. 85 (12), 2020-2029 (2004).
  21. Schnakers, C., et al. The Nociception Coma Scale: a new tool to assess nociception in disorders of consciousness. Pain. 148 (2), 215-219 (2010).
  22. Shiel, A., et al. The Wessex Head Injury Matrix (WHIM) main scale: a preliminary report on a scale to assess and monitor patient recovery after severe head injury. Clinical Rehabilitation. 14 (4), 408-416 (2000).
  23. GE Healthcare. TRACERlabMXFDG operator manual, Version 1. , (2003).
  24. Yamaki, T., et al. Association between uncooperativeness and the glucose metabolism of patients with chronic behavioral disorders after severe traumatic brain injury: a cross-sectional retrospective study. BioPsychoSocial Medicine. 12, 6(2018).
  25. Schwaiger, M., Wester, H. J. How many PET tracers do we need? Journal of Nuclear Medicine. 52, Suppl 2, 36S-41S (2011).

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Przedruki i uprawnienia

Tagi

Obrazowanie PET CTmetabolizm glukozy w m zguanaliza obszaru zainteresowaniaautomatyczna synteza FDGtest czysto ci radiochemicznejpodanie do ylnestandaryzowana warto pobraniaobszar kontrolowany radiologicznieprzygotowanie w laboratorium radiochemicznym
Ocena półilościowa przy użyciu znacznika FDG [18F] u pacjentów z ciężkim uszkodzeniem mózgu
Skontaktuj się z nami
Poleć bibliotece

Prywatność

Warunki korzystania z usługi

Zasady

Prawa autorskie © 2026 MyJoVE Corporation. Wszelkie prawa zastrzeżone.