$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Przez wiele lat, wyjątkowo silna i szybko powstająca interakcja między biotyną a streptawidyną była z powodzeniem wykorzystywana do częściowego oczyszczania biologicznie ważnych kompleksów RNA/białkowych. Strategia ta ma jednak jedną poważną wadę, która ogranicza jej szersze wykorzystanie: interakcja biotyna/streptawidyna może zostać przerwana tylko w warunkach denaturacji, które również zakłócają integralność eluowanych kompleksów, uniemożliwiając w ten sposób ich późniejszą analizę funkcjonalną i/lub dalsze oczyszczanie innymi metodami. Ponadto eluowane próbki są często zanieczyszczone białkami tła, które niespecyficznie kojarzą się z kulkami streptawidyny, co komplikuje analizę oczyszczonych kompleksów za pomocą barwienia srebrem i spektrometrii mas. Aby przezwyciężyć te ograniczenia, opracowaliśmy wariant strategii biotyny/streptawidyny, w którym biotyna jest przyłączana do substratu RNA za pomocą łącznika fotorozszczepialnego, a kompleksy unieruchomione na kulkach streptawidyny są selektywnie eluowane do roztworu w postaci natywnej przez długofalowe promieniowanie UV, pozostawiając białka tła na kulkach. Krótsze substraty wiążące RNA mogą być syntetyzowane chemicznie z biotyną i fotorozszczepialnym łącznikiem kowalencyjnie przyłączonym do końca 5' RNA, podczas gdy dłuższe substraty RNA mogą być dostarczane z dwiema grupami przez komplementarny oligonukleotyd. Te dwa warianty metody elucji UV zostały przetestowane pod kątem oczyszczania zależnych od U7 snRNP kompleksów przetwarzających, które rozszczepiają histony pre-mRNA na końcu 3' i oba okazały się korzystne w porównaniu z innymi wcześniej opracowanymi metodami oczyszczania. Próbki eluowane promieniami UV zawierały łatwo wykrywalne ilości snRNP U7, który był wolny od głównych zanieczyszczeń białkowych i nadawał się do bezpośredniej analizy za pomocą spektrometrii mas i testów funkcjonalnych. Opisana metoda może być łatwo zaadaptowana do oczyszczania innych kompleksów wiążących RNA i stosowana w połączeniu z jedno- i dwuniciowymi miejscami wiązania DNA w celu oczyszczania białek specyficznych dla DNA i kompleksów makromolekularnych.