$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Mitofagia jest niezbędnym szlakiem kontroli jakości mitochondriów, który jest kluczowy dla bioenergetyki komórek beta wysp trzustkowych do napędzania stymulowanego glukozą uwalniania insuliny. Ocena mitofagii jest trudna i często wymaga reporterów genetycznych lub wielu uzupełniających technik, które nie są łatwe do wykorzystania w próbkach tkanek, takich jak pierwotne ludzkie wyspy trzustkowe. W tym miejscu demonstrujemy solidne podejście do wizualizacji i ilościowego określania powstawania kluczowych endogennych kompleksów mitofagii w pierwotnych ludzkich wyspach trzustkowych. Wykorzystując czułą technikę ligacji zbliżeniowej do wykrywania interakcji regulatorów mitofagii NRDP1 i USP8, jesteśmy w stanie specyficznie określić ilościowo powstawanie niezbędnych kompleksów mitofagii in situ. Łącząc to podejście z przeciwbarwieniem dla czynnika transkrypcyjnego PDX1, możemy określić ilościowo kompleksy mitofagiczne i czynniki, które mogą upośledzać mitofagię, szczególnie w komórkach beta. Metodologia, którą opisujemy, przezwycięża potrzebę dużych ilości ekstraktów komórkowych wymaganych do innych badań interakcji białko-białko, takich jak immunoprecypitacja (IP) lub spektrometria mas, i jest idealna dla cennych próbek ludzkich wysp trzustkowych, które na ogół nie są dostępne w wystarczających ilościach dla tych podejść. Co więcej, metodologia ta eliminuje potrzebę stosowania technik sortowania przepływowego w celu oczyszczenia komórek beta z heterogenicznej populacji wysp trzustkowych do dalszych zastosowań białkowych. W ten sposób opisujemy cenny protokół wizualizacji mitofagii, wysoce kompatybilny do stosowania w heterogenicznych i ograniczonych populacjach komórek.