Artykuł metodologiczny

Gromadzenie danych na temat połykania odpadów morskich przez żółwie morskie i progów dobrego stanu środowiska

13.5K wyświetleń

DOI:

10.3791/59466

18 maja 2019

W tym artykule

Podsumowanie

Protokół skupia się na zbieraniu próbek żółwi morskich, opisując wszystkie etapy od odzyskania zwierząt i sekcji zwłok do klasyfikacji i kwantyfikacji spożytych odpadów morskich. Ponadto reprezentatywne wyniki pokazują, w jaki sposób można wykorzystać zebrane dane do opracowania możliwych progów dobrego stanu środowiska.

Streszczenie

Poniższy protokół ma na celu spełnienie wymagań określonych przez Dyrektywy Ramowe Strategii Morskiej Unii Europejskiej (MSFD) dla kryteriów D10C3 zgłoszonych w decyzji Komisji (UE), związanych z ilością śmieci spożywanych przez zwierzęta morskie. Przedstawiono ustandaryzowane metodologie wydobywania śmieci połkniętych z martwych żółwi morskich wraz z wytycznymi dotyczącymi analizy danych. Protokół rozpoczyna się od pobrania martwych żółwi morskich i klasyfikacji próbek według statusu rozkładu. Sekcja zwłok żółwi musi być przeprowadzona w autoryzowanych ośrodkach, a opisany tutaj protokół wyjaśnia najlepszą procedurę izolacji przewodu pokarmowego (GI). Trzy części przewodu pokarmowego (przełyk, żołądek, jelito) należy rozdzielić, otworzyć wzdłuż, a zawartość przefiltrować za pomocą sita o oczkach 1 mm. W artykule opisano klasyfikację i kwantyfikację spożytych odpadów, klasyfikując zawartość oznaczeń geograficznych do siedmiu różnych kategorii odpadów morskich i dwóch kategorii szczątków naturalnych. Ilość spożytej ściółki należy zgłaszać jako całkowitą suchą masę (masa w gramach, z podaniem dwóch miejsc po przecinku) i obfitość (liczbę sztuk). W protokole zaproponowano dwa możliwe scenariusze osiągnięcia dobrego stanu środowiska (GES). Po pierwsze: "W próbkach 50-100 martwych żółwi z każdego podregionu powinno być mniej niż X% żółwi morskich zawierających Y g lub więcej plastiku", gdzie Y oznacza średnią masę spożytego plastiku, a X% oznacza odsetek żółwi morskich o większej masie (w gramach) plastiku niż Y. Drugi, który rozważa ilość pozostałości żywności w porównaniu z plastikiem jako wskaźnik indywidualnego zdrowia, brzmi: "W próbkach 50-100 martwych żółwi z każdego subregionu powinno być mniej niż X% żółwi morskich o większej masie plastiku (w gramach) niż resztek żywności".

Wprowadzenie

Odpady morskie to złożony problem do rozwiązania, ponieważ mogą dostać się do oceanów za pośrednictwem wielu źródeł i form. Ponad 80% śmieci, które można napotkać w środowisku morskim, składa się z plastiku1. Rola tego materiału z ekonomicznego punktu widzenia wzrasta w ciągu ostatnich 50 lat. W konsekwencji od 1960 r. jego produkcja również wzrosła dwudziestokrotnie, osiągając w 2016 r. 335 mln ton. Oczekuje się, że wartość ta podwoi się w ciągu najbliższych 20 lat2. Co więcej, szacuje się, że każdego roku do oceanów trafia od 5 do 13 milionów ton plastiku (co odpowiada 1,5 do 4% światowej produkcji plastiku)2,3. Na ruch tworzywa sztucznego mają wpływ jego właściwości fizyczne (np. wyporność) lub zmienne środowiskowe (np. pływy i strumienie), a plastik może być gromadzony we wszystkich przedziałach morskich4,5. Aby stawić czoła problemowi plastiku, należy pamiętać, że podobnie jak wiele innych problemów związanych z ochroną środowiska, ma on charakter transgraniczny, a zatem rozwiązania w zakresie zarządzania są skomplikowane do spełnienia6. Aby lepiej osiągnąć ten cel, musimy wziąć pod uwagę ramy regionalne i międzynarodowe, aby zwiększyć lub utrzymać świadomość i ochronę środowiska morskiego na całym świecie7. Ostatecznym celem dyrektywy ramowej Unii Europejskiej w sprawie strategii morskiej (MSFD) jest osiągnięcie dobrego stanu środowiska (GES) na wodach europejskich do 2020 r., ochrona morskiej różnorodności biologicznej oraz promowanie zrównoważonego użytkowania środowiska morskiego. Zostanie to osiągnięte za pomocą 11 deskryptorów jakościowych, z których deskryptor 10 koncentruje się na odpadach morskich i jest zdefiniowany jako "Właściwości i ilości odpadów morskich nie powodują szkód w środowisku przybrzeżnym i morskim". W ramach tego deskryptora nowa decyzja Komisji 8 postanowiła dodać kryterium D10C3 - "Ilość śmieci i mikrośmieci spożywanych przez zwierzęta morskie jest na poziomie, który nie wpływa negatywnie na zdrowie danych gatunków" - ponieważ uznano je za istotne kryterium w ocenie GES. W związku z tym państwa członkowskie zostały poproszone o sporządzenie wykazu gatunków, opracowanie norm metodologicznych i określenie wartości progowych w ramach współpracy regionalnej lub subregionalnej.

Po pierwszej publikacji naukowej w 1838 roku9, na Storm-Petrel z połkniętym świecznikiem, ponad 500 gatunków morskich zostało wymienionych do spożycia odpadów morskich10,11,12,13,14, a żółwie morskie były jednymi z pierwszych zarejestrowanych taksonów, które połykały plastikowe śmieci15. Biorąc pod uwagę ich skłonność do połykania śmieci, ich szerokie rozmieszczenie i duży zakres siedlisk wykorzystywanych podczas ich życia, żółwie morskie, w szczególności gatunek karetta caretta (Linneusz 1758), zostały wybrane jako potencjalny wskaźnik dla basenu Morza Śródziemnego16, podobnie jak ptak morski Fulmarus glacialis (Linnaeus, 1761) dla wód północnoeuropejskich17. Nawet po pięćdziesięciu latach badań dyskusja na temat standaryzacji metod była bardzo ograniczona18 i brakuje spójnego podejścia społeczności naukowej do ilościowego określania spożycia plastiku przez dzikie zwierzęta19. Potrzebne są znormalizowane protokoły pobierania próbek oraz analityczne metody wykrywania i wskaźniki do oceny spożycia tworzyw sztucznych przez faunę i florę morską; Niedawny artykuł wykazał potencjalne korzyści i ograniczenia wynikające z wykorzystania gatunków morskich jako biowskaźników zanieczyszczenia tworzywami sztucznymi20. Zgodnie z propozycją Matiddi i in. z 2011 r. 21 dotyczącą wykorzystania karetty jako biowskaźnika oraz Grupy Technicznej ds. Raportu o Odpadach Morskich22, dziesięciu partnerów z siedmiu krajów na Morzu Śródziemnym i Oceanie Atlantyckim opracowało i przetestowało specjalny protokół uwzględniania odpadów morskich spożywanych przez żółwie morskie w ramach europejskiego projektu INDICIT (GA nr 11.0661/2016/748064/SUB/ENV. Punkt C2). Protokół ten zapewnia znormalizowane metodologie analizy odpadów morskich spożywanych przez żółwie morskie w celu wsparcia nowej decyzji Komisji (UE)8, kryteria D10C3, w której wymagane są wartości progowe. Zgodnie z definicją podaną przez COM8, wartość progowa to liczba lub zakres, który pozwala ocenić, czy kryterium poziomu jakości zostało osiągnięte, pomagając w ten sposób w ocenie GES. Proponowany protokół oceny odpadów spożywanych przez żółwie morskie będzie przydatny w gromadzeniu danych na temat składu i liczebności odpadów oraz ocenie ich wpływu na środowisko morskie. Co więcej, gromadzenie tego typu ustandaryzowanych danych pomoże w zdefiniowaniu wartości progowych. W tym miejscu rozważamy dwa rodzaje scenariuszy. Pierwszy scenariusz uwzględnia monitorowanie EcoQO odpadów Fulmar, które jest wdrażane dla obszaru OSPAR: "W próbkach 50-100 martwych żółwi z każdego podregionu powinno być mniej niż X% żółwi morskich o masie Y g lub więcej plastiku w oznaczeniu geograficznym, gdzie Y to średnia masa spożytego plastiku z uwzględnieniem wszystkich próbek, a X% to odsetek żółwi morskich o większej masie (w gramach) plastiku niż Y. Drugi ma na celu rozważenie wskaźnika zastępczego indywidualnego poziomu zdrowia: "W próbkach od 50 do 100 martwych żółwi z każdego podregionu powinno być mniej niż X% żółwi morskich mających większą masę plastiku (w gramach) niż resztek pokarmu w GI ", gdzie waga spożytego plastiku jest porównywana z żywnością pozostałą w każdym osobniku.

Protokół

Zaproponowano gromadzenie serii parametrów „podstawowych” i „opcjonalnych”. Parametry podstawowe stanowią minimum niezbędne do spełnienia kryteriów D10C3, natomiast parametry opcjonalne pozwalają na zdobycie szerszej wiedzy na temat biologii i zachowania żółwi morskich. W celu ułatwienia rejestracji danych oraz analizy statystycznej zgodnie ze standaryzowaną tabelą, dołączono arkusz danych obserwacyjnych oraz listę materiałów niezbędnych do pobierania próbek od osobników w terenie i analizy odpadów w laboratorium. Podkategorie odpadów morskich są dobierane na podstawie kształtu i rodzaju przedmiotów. Prosi się o odnotowanie pozostałości pokarmu żółwi morskich oraz wszelkich naturalnych przedmiotów niebędących pokarmem (kamienie, drewno, pumeks itp.) w celu uwzględnienia progów oraz diety zwierzęcia. Wszystkie działania eksperymentalne opisane w tym protokole zostały przeprowadzone na martwych żółwiach, zgodnie z prawem krajów uczestniczących oraz przepisami międzynarodowymi. Wszystkie sekcje zwłok muszą być wykonywane w autoryzowanych ośrodkach.

1. Pobieranie próbek z padliny: wypełnienie arkusza obserwacji (Załącznik 1 w Plikach uzupełniających 1 i 2)

  1. Wypełnij dane kontaktowe, w tym imię i nazwisko, dane kontaktowe (telefon, e-mail) oraz instytucję obserwatora(ów) (osoby zbierającej dane).
  2. Zidentyfikuj gatunek w następujący sposób: Cc (Caretta caretta, Linnaeus 1758); Dc (Dermochelys coriacea, Vandelli 1761); Cm (Chelonia mydas, Linnaeus 1758); Ei (Eretmochelys imbricata, Linnaeus 176); Lo (Lepidochelys olivacea, Eschscholtz 1829); Lk (Lepidochelys Kempii, Garman 1880); Nd (Natator depressus, Garman 180).
  3. Znaczniki: Jeśli na płetwie znajduje się już znacznik, podaj jego numer (N°). Wskaż obecność i liczbę chipów elektronicznych. W przeciwnym razie zaznacz NO.
  4. Określ kod identyfikacyjny zwierzęcia. Na przykład: „dwie litery oznaczające kraj”_„dwie litery oznaczające lokalizację (np. region lub instytucję)”_„RR” _ „MM”_„DD”_„numer chipa”.
  5. Zanotuj datę znalezienia (rr/mm/dd).
  6. Określ miejsce znalezienia, którym jest obszar odzyskania lub współrzędne w stopniach dziesiętnych.
  7. Zgłoś stopień stanu zachowania ciała okaza: 1 (Żywy), 2 (Świeży – niedawno martwy), 3 ( Częściowo rozkład { częściowo z decomposed – organy wewnętrzne są nadal w dobrym stanie), 4 (Zaawansowany rozkład – łuski skóry są uniesione lub utracone), 5 (Zmumifikowany – brak części szkieletu lub części ciała). Patrz Rycina 1.
  8. Okoliczności znalezienia: Zanotuj okoliczności spośród czterech kategorii: Wypłynięcie na brzeg (zwierzę znalezione na plaży lub linii brzegowej); Przyłów/Rybołówstwo (zwierzę schwytane aktywnie przez rybaków, np. połknięcie haczyka, zaplątanie w sieć, przyniesione przez rybaków itp.); Znalezione na morzu (zwierzę odkryte na powierzchni morza); Padło w ośrodku rehabilitacji (zwierzę przybyło żywe, ale padło podczas rekonwalescencji).

Etapy rozkładu żółwia morskiego, poziomy 1–5, od osobnika żywego do zmumifikowanego; tabela edukacyjna.
Rycina 1Stopień uwarunkowania kondycji ciała lub stan rozkładu okazu. Kliknij tutaj, aby wyświetlić większą wersję tej figury.

2. Nekropsja żółwia morskiego: pomiary biometryczne i wypreparowanie zawartości przewodu pokarmowego

  1. Zorganizuj transport zwierzęcia do autoryzowanego ośrodka sekcyjnego. W przypadku zwierzęcia w zaawansowanym stanie rozkładu, oceń integralność przewodu pokarmowego przed przekazaniem go do utylizacji w autoryzowanym ośrodku. Jeśli sekcja nie może zostać przeprowadzona natychmiast po odzyskaniu ciała, zamroź truchło w temperaturze -20 °C.
  2. Przed przystąpieniem do sekcji zanotuj pomiary biometryczne w odpowiedniej sekcji arkusza odzyskania ciała. Obowiązkowy jest pomiar długości zakrzywionego pancerza, od wcięcia do czubka23; pozostałe pomiary są opcjonalne (np. szerokość zakrzywionego pancerza, masa ciała).
  3. Przeprowadź badanie zewnętrzne ciała zwierzęcia i odnotuj informacje w odpowiedniej sekcji arkusza sekcyjnego. Sprawdź również jamę ustną pod kątem ewentualnej obecności ciał obcych.
  4. Oddziel i usuń plastron od karapaksen, wykonując nacięcie wzdłuż krawędzi, zgodnie z zaznaczoną żółtą linią (Rycina 2a).
  5. Użyj krótkiego ostrza lub tnij z nachyleniem poziomym, aby uniknąć uszkodzenia części wewnętrznych (Rycina 2 b - c). Przy oddzielaniu plastronu od karapaksen należy przeciąć przyczepy więzadeł do obręczy barkowej i miednicznej, aby ułatwić dostęp i manipulację.
  6. Obnaż przewód pokarmowy (GI), usuwając mięśnie piersiowe i serce żółwia (Rycina 2d).
  7. (Opcjonalnie) Oceń jakościowo stan troficzny, oceniając zanik mięśni piersiowych (brak-umiarkowany-silny) oraz grubość tkanki tłuszczowej w jamach stawowych i na błonie współcoelomicznej (obfita-normalna-mała-brak).
  8. Wyjmij przewód pokarmowy i połóż go na stole sekcyjnym. Czynność tę należy wykonać w dwie osoby, aby ułatwić pracę. Podczas gdy jeden operator podtrzymuje truchło w pozycji bocznej, drugi oddziela więzadła od poszczególnych organów oraz błony od karapaksen za pomocą małych ostrzy lub nożyczek i usuwa przewód pokarmowy ze zwierzęcia (Rycina 2f).
  9. Izoluj przełyk, żołądek i jelita za pomocą klamer plastikowych. Umieść je na przełyku blisko otworu gębowego, na zaworze przełykowym, na szpucie oraz przy klozace, jak najbliżej otworu odbytniczego, zgodnie z żółtymi strzałkami (Rycina 2f).
  10. Jeśli to możliwe, określ płeć zwierzęcia.
  11. Definitywnie oddziel przełyk, żołądek i jelita, zakładając drugą klamerę (w miejscu cięcia), aby uniknąć wycieku treści.
  12. Otwórz fragmenty przewodu pokarmowego wzdłuż za pomocą nożyczek (lub palcami, jeśli to możliwe), a następnie przenieś zawartość bezpośrednio na sito o oczkach 1 mm, płucząc ściany przewodu pokarmowego bieżącą wodą.
  13. Zanotuj każdą anomalię w przewodzie pokarmowym (np. owrzodzenia, perforacje, zrosty, stany zapalne).
  14. Obejrzyj zawartość sita w celu ewentualnego wykrycia smoły, oleju lub materiałów kruchych, które należy usunąć i potraktować oddzielnie.
  15. Przepłucz zawartość przez sito, aby usunąć frakcję płynną, śluz i nieidentyfikowalną materię trawioną.
  16. Powtórz tę sekwencję oddzielnie dla każdej części przewodu pokarmowego.
  17. Zamroź cały materiał zebrany na sitach lub przechowuj go w słoikach z 70% roztworem alkoholu.
    UWAGA: Więcej szczegółów na temat anatomii żółwi morskich można znaleźć w pracy Wyneken (201)24.

Nekropsja żółwia morskiego, sekcja z odsłoniętymi organami, proces krok po kroku, badanie biologiczne.
Rycina 2Kolejność przeprowadzania nekropsji żółwia. (a) Widok brzuszny martwego żółwia. Żółta linia wskazuje miejsce nacięcia w celu oddzielenia plastronu od reszty ciała żółwia. (b,c) Cięcia poziome, aby zapobiec uszkodzeniu narządów wewnętrznych. (d) Widok brzuszny otwartego żółwia. (e) Wyjęcie przewodu pokarmowego. (f) Widok całego przewodu pokarmowego; żółte strzałki wskazują miejsca, w których należy założyć zaciski w celu oddzielenia trzech różnych sekcji przewodu pokarmowego. Prosimy o kliknięcie tutaj, aby wyświetlić powiększoną wersję tej ryciny.

3. Gromadzenie i analiza danych: klasyfikacja odpadów morskich

  1. Oznacz kod próbki i odpowiednią sekcję przewodu pokarmowego (GI).
  2. Wysyp zawartość słoików na sito o oczkach 1 mm, zbierając cały materiał.
  3. Ponownie przemyj zebrany materiał wodą, aby usunąć alkohol i oczyścić śmieci.
  4. Oddziel śmieci morskie od komponentów organicznych lub innych materiałów, identyfikując kategorię śmieci morskich poprzez analizę wizualną, sortując materiał na szalce Petriego i dzieląc zebrane przedmioty na poszczególne kategorie.
  5. Wypełnij arkusz danych zebranymi informacjami.
  6. Użyj stereomikroskopu, aby dokładniej przyjrzeć się jakimikolwiek nieidentyfikowalnym materiałom.
  7. Wysusz śmieci morskie w temperaturze pokojowej lub w suszarce w 35 °C przez 12 h.
  8. Wysusz frakcję organiczną w suszarce w 35 °C przez 12 h lub w suszarce do tkanek.
  9. Zarejestruj liczbę i suchą masę poszczególnych kategorii śmieci morskich.
  10. Zarejestruj suchą masę frakcji organicznej z podziałem na resztki pokarmowe oraz naturalne pozostałości niepokarmowe. Całkowita sucha masa (waga w gramach, dokładna do 2nd miejsca po przecinku) jest główną informacją wykorzystywaną w programie monitorowania, a następnie liczba elementów (obfitość).
  11. Zapisz inne informacje, takie jak kolor elementów, objętość śmieci, różna częstotliwość występowania śmieci w przełyku, żołądku i jelitach oraz częstotliwość w poszczególnych kategoriach śmieci, ponieważ jest to przydatne dla badań i analizy wpływu. Surowe dane dostarczą zróżnicowanych informacji dla każdej pojedynczej sekcji GI; całkowita zawartość śmieci morskich w trzech częściach zostanie uwzględniona w końcowych danych.

Wyniki

Ten protokół, opracowany na podstawie wytycznych MSFD22 i wspólnie stworzony oraz ulepszony przez ponad 50 podmiotów (biologów z centrów ratunkowych, sieci rejestrujących przypadki napływania, weterynarzy oraz laboratoriów badawczych) z 7 krajów położonych nad Morzem Śródziemnym i wybrzeżem europejskim Oceanu Atlantyckiego, proponuje ujednoliconą, wykonalną i łatwą ocenę połknięcia śmieci przez żółwie morskie. Protokół został przetestowany na żółwiach trójzębnych, a większość manipulacji można również zastosować do innych gatunków żółwi morskich. Pierwszym ważnym wynikiem tego protokołu jest opis elementów morskich śmieci podzielonych na siedem kategorii według cech wizualnych (Rysunek 3). Klasyfikacja ta została opracowana na podstawie Fulmar EcoQo17,25 i zmodyfikowana na podstawie doświadczeń autorów w zakresie ekologii żółwi morskich. Pierwsza kategoria, zazwyczaj najmniej liczna, to plastik przemysłowy (IND PLA), obejmujący granulki i pelety plastikowe, zwykle o kształcie cylindrycznym lub okrągłym, ale również owalnym lub sześciennym, rzadko spotykany w jelitach żółwia trójzębnego16,26. Druga kategoria obejmuje pozostałości materiałów typu foliowego (USE SHE), takich jak worki plastikowe, folie rolnicze lub folie plastikowe. Pojawiają się w nieregularnych kształtach, ale zawsze są cienkie i giętkie. Trzecia kategoria obejmuje liny, włókna i inne materiały nitkowate, takie jak pozostałości wyrzuconego sprzętu do połowów, zwykle wykonane z nylonu (USE THR). Czwarta kategoria obejmuje wszystkie plastiki piankowe (USE FOA), takie jak pianka polistyrenowa lub miękka gumowa pianka. Piąta kategoria obejmuje fragmenty twardych przedmiotów plastikowych (USE FRA). Fragmenty są bardzo liczne w treściach przewodu pokarmowego i występują w różnorodnych kolorach. Pochodzą z większych, rozłamanych elementów i są zazwyczaj sztywne, o nieregularnych kształtach i ostrych, krzywych krawędziach. Wszystkie inne przedmioty plastikowe, w tym gumki, twarda guma, kawałki balonów oraz miękkie pociski do broni pneumatycznej, są klasyfikowane jako inne użytkowe plastiki (USE POTH). Wszystkie nieplastikowe morskie śmieci, takie jak niedopałki papierosów, gazety, odpadki i twarde zanieczyszczenia, są zawarte w ostatniej kategorii śmieci innych niż plastik (OTHER), nawet jeśli nie są łatwo spotykane u żółwi morskich. Pozostałe dwie kategorie, niezaliczane do morskich śmieci, to (i) pozostałości naturalnej diety żółwia (FOO) oraz (ii) wszelkie przedmioty naturalne, nieuznawane za zdobycz dla żółwia morskiego, takie jak kamienie, drewno lub pumeks (NFO).

Rycina 4 przedstawia przykład reprezentatywnych wyników dotyczących suchej masy kategorii śmieci morskich, gdzie plastik o strukturze arkusza (USE SHE) był najliczniejszą klasą, a worki plastikowe lub ich fragmenty stanowiły główne połknięte przedmioty. Podobne wyniki pokazano na Rycinie 5 w odniesieniu do liczby przedmiotów (liczebność). Tabela 1 przedstawia przykładowy wynik analizy suchej masy śmieci w sześciu różnych obszarach, co jest przydatne przy ustalaniu wartości progowej zgodnie z wymaganiami MSFD Unii Europejskiej. Obszary te powinny być reprezentowane, na przykład, przez kraje lub podregiony basenu Morza Śródziemnego. Podaną średnią oblicza się na podstawie wszystkich przebadanych osobników, w tym próbek bez połkniętych śmieci morskich. Zgodnie z naszym przykładem, obszar 5 reprezentuje najczystszy rejon basenu Morza Śródziemnego, a dane z tego obszaru można wykorzystać do ustalenia wartości progowej do osiągnięcia. Dla tego obszaru pierwszy scenariusz mógłby brzmieć: „Mniej niż 25% żółwi morskich powinno mieć 0,5 g lub więcej plastiku w przewodzie pokarmowym w próbkach liczących 50–100 żółwi morskich”. Drugi scenariusz mógłby brzmieć: „Mniej niż 32% żółwi morskich powinno mieć więcej gramów plastiku niż pozostałości pokarmu (FOO) w przewodzie pokarmowym w próbkach liczących 50–100 żółwi morskich”.

Diagram typów mikroplastiku; badanie środowiskowe różnorodności i klasyfikacji zanieczyszczeń.
Rycina 3: Przykłady kategorii śmieci morskich ustalonych do monitorowania połknięcia przez żółwie morskie. (a) IND PLA, (b) USE SHE, (c) USE THR, (d) USE FOA, (e) USE FRA, (f) USE POTH, (g) OTHER, (h) FOO. Kliknij tutaj, aby wyświetlić powiększoną wersję tego rysunku.

Wykres słupkowy porównujący wagę przedmiotów według kategorii; zawiera IND PLA, USE SHE. Wyniki analizy danych.
Rycina 4: Przykładowe wyniki wag śmieci morskich połkniętych przez żółwie morskie w różnych kategoriach. Średnie wartości wagi podano w gramach przedmiotów na osobnika (± SE). Kliknij tutaj, aby wyświetlić większą wersję tego rysunku.

Wykres słupkowy porównujący liczbę przedmiotów w poszczególnych kategoriach; analiza danych dotycząca rozkładu częstości.
Rycina 5: Przykładowe wyniki liczby kategorii morskiego śmiecia połkniętych przez żółwie morskie. Podano średnią liczbę przedmiotów na osobnika (± SE). Kliknij tutaj, aby wyświetlić większą wersję tego rysunku.

STREFAWielkość próbki (n)Średnia wartość ±SE dla suchej masy połkniętego plastiku (g)Procent żółwi z większą ilością plastiku niż średnia wartość (%)Procent żółwi z większą ilością plastiku niż resztek pokarmu (%)
11001.32±0.032764
21001.61±0.012867
31001.35±0.022662
4950.73±0.023440
5650.55±0.032532
6500.90±0.044454

Tabela 1: Przykład wyników z różnych obszarów (np. krajów, podregionów itp.) uzyskanych z wykorzystaniem suchej masy odpadów morskich. Kliknij tutaj, aby pobrać tę tabelę jako plik Excel.

Pliki dodatkowe 1. Kliknij tutaj, aby pobrać ten plik.

Suplementarne pliki 2. Kliknij tutaj, aby pobrać ten plik.

Dyskusja

Niniejszy protokół umożliwia ocenę całkowitej liczności odpadów morskich oraz identyfikację głównych kategorii odpadów połkniętych przez żółwie morskie. Jest on mniej kosztowny w porównaniu do innych programów monitoringu obejmujących działania na morzu, ponieważ żółwie morskie mogą być zbierane po wyrzuceniu na plażę lub odzyskiwane przez rybaków. Identyfikacja kategorii odpadów morskich jest łatwa i szybka, gdyż dolna granica wielkości elementów wynosi 1 mm. Ograniczeniem protokołu jest wykorzystanie żółwi morskich, biorąc pod uwagę, że wszystkie 7 gatunków żółwi morskich jest wymienionych w Załączniku I Konwencji o międzynarodowym handlu zagrożonymi gatunkami roślin, zwierząt i produktów pochodzenia roślinnego i zwierzęcego27; w związku z tym tylko upoważniony personel może obracać się z żywymi i martwymi zwierzętami lub ich częściami. Zarządzanie żółwiami i ich odzyskiwanie powinny być zgłaszane i koordynowane z odpowiednimi organami. Podczas pracy z martwymi lub żywymi dzikimi zwierzętami należy zachować środki ostrożności sanitarne, aby zminimalizować ryzyko zoonoz. Protokół ten został przetestowany na gatunku żółwia karetta, ale jest on stosowalny do wszystkich siedmiu gatunków żółwi. Analiza danych powinna być przeprowadzana oddzielnie dla każdego gatunku. Stan ciała okazu jest rozpatrywany w pięciu poziomach, od żółwi żywych do zmumifikowanych. Poziom 1 (Żywy) jest rozważany w celu bardziej szczegółowej klasyfikacji stanu ciała okazu w przypadku, gdy żółw zdechł w centrum ratunkowym po odzyskaniu. Protokół jest stosowalny do osobników martwych z poziomów od 2 do 4, ale także do osobników, które zdechły po odzyskaniu (okoliczności: śmierć w centrum ratunkowym). Poziomy 2 i 3 są odpowiednie do zastosowania protokołu, natomiast poziom 4 pozwala na pomiar danych biometrycznych oraz ocenę obecności/braku połkniętych odpadów w celu obliczenia częstotliwości występowania (FO%) oraz procentu żółwi z połkniętymi odpadami morskimi w całej próbie. Osobniki na poziomie 5, w których zazwyczaj treść przewodu pokarmowego została utracona, nie mogą być brane pod uwagę przy zbieraniu i kwantyfikacji połkniętych odpadów. Wykonanie zdjęć zwierzęcia przed manipulacją może dostarczyć dodatkowych informacji o próbce, takich jak prawdopodobna przyczyna śmierci, główne obrażenia lub zaplątania. Ważne jest dołączenie skali do zdjęć. Nawet jeśli żółwie morskie często mają haczyki wędkarskie w przewodzie pokarmowym, dane te nie muszą być włączane do analizy, ponieważ haczyki, na których aktywnie łowi się ofiary długolinowe, nie są uznawane za „odpady morskie”. Obecność haczyków powinna zostać odnotowana w uwagach. Gromadzenie danych powinno być przeprowadzone oddzielnie dla każdej części przewodu pokarmowego (przełyk, żołądek, jelita), aby ocenić stopień tolerancji na połknięcie odpadów morskich, biorąc pod uwagę niedrożność przewodu pokarmowego lub zdolność do ich wydalenia, jak wykazano w poprzednich badaniach16,28,29,30,31,32. Krytycznym krokiem protokołu może być ustalenie liczby elementów. Wiele fragmentów może pochodzić z rozpadu tego samego obiektu wewnątrz przewodu pokarmowego lub być wynikiem osobnych połknięć. Subiektywna interpretacja pojedynczego elementu lub wielu oddzielnych fragmentów może prowadzić do potencjalnego błędu w zapisie liczby (Rycina 6). Z tego powodu opracowano wartości progowe, wykorzystując wyłącznie dane dotyczące masy połkniętych odpadów morskich, podobnie jak w przypadku Fulmar EcoQO17,25.

Analiza mikroplastików; fragmenty na tacy, suwmiarka do pomiarów; badanie środowiskowe.
Rysunek 6Fragmentacja pojedynczych elementów może nastąpić przed spożyciem lub w trakcie procesu karmienia, co prowadzi do błędów w liczeniu. Prosimy kliknąć tutaj, aby wyświetlić powiększoną wersję tej figury.

Protokół wymaga kategoryzacji różnych przedmiotów plastikowych według ich kształtów (USE SHE, USE THR). Ten podział jest przydatny do identyfikacji źródła odpadów morskich na podstawie listy przedmiotów uporządkowanych według ich liczności. Pomaga to twórcom polityki w opracowywaniu programów działań, dostarczając szybkich dowodów na skuteczność ukierunkowania działań na konkretne przedmioty poprzez ocenę ich liczebności. Na przykład zakaz stosowania plastikowych torebek na targach powinien przekładać się na redukcję przedmiotów z kategorii USE SHE znajdujących się w układzie pokarmowym (Rycina 4, Rysunek 5) w próbkach żółwi morskich pobranych w przyszłości. Zastosowanie niniejszego protokołu pozwoli państwom członkowskim UE na spełnienie wymogów MSFD poprzez ocenę własnych wartości bazowych i określenie wartości progowych, przy których osiągnięto GES. Progi powinny być ustalane w obszarach nienaruszonych lub niemal nienaruszonych. Ze względu na powszechność plastiku w środowisku morskim obszary nienaruszone nie istnieją. Zgodnie z przykładowymi danymi (Tabela 1), obszar 5, był strefą najczystszą i mógłby reprezentować wartość (Y) dla basenu Morza Śródziemnego. Państwa członkowskie powinny ustalić progi w zależności od znaczącej redukcji dystansu dzielącego je od tej wartości. Zgodnie z niedawnym przeglądem18jednostki spożytych odpadów morskich powinny być znormalizowane do rozmiaru żółwia, zwłaszcza jeśli celem jest porównanie różnych grup wiekowych. Niemniej jednak, różni autorzy wykryli zależność między masą spożytych odpadów a rozmiarem żółwi, przyjmując wartości dodatnie, ujemne lub zerowe16,26,32,33,34Nasz protokół nie uwzględnia rozmiaru zwierzęcia w pierwszym scenariuszu, jednak możliwe byłoby oszacowanie całkowitego obciążenia organizmu poprzez ocenę masy żółwia z wykorzystaniem długości zakrzywionej skorupy (CCL).35 or należy zastosować stosunek masy plastiku do masy żółwia zamiast jedynie masy spożytego plastiku w gramach (Y). W każdym przypadku sugerujemy sprawdzenie ewentualnych istotnych różnic przed połączeniem żółwi z etapu oceanicznego z osobnikami nerytycznymi lub wczesnymi młodymi osobnikami z osobnikami dorosłymi, aby lepiej zestratyfikować próbki.16,26Drugi scenariusz jest ściślej powiązany z indywidualnym stanem zdrowia i mógłby w lepszy sposób odpowiedzieć na kryterium D10C3: „Ilość odpadów i mikroodpadów pochłoniętych przez zwierzęta morskie znajduje się na poziomie, który nie wpływa niekorzystnie na zdrowie gatunku „zaniepokojony”. W rzeczywistości wpływ spożytych elementów z tworzyw sztucznych najczęściej przejawia się w efektach subletalnych, a nie letalnych.28,36,37,38,39Rzadko stwierdzaliśmy również niedrożność lub perforację spowodowaną spożyciem plastiku, co mogło doprowadzić do śmierci żółwi. Efekty subletalne nie są łatwe do wykrycia i odróżnienia od skutków działania innych zanieczyszczeń.40Rozcieńczenie dietetyczne lub asymilacja zanieczyszczeń zachodzi, gdy odpadki morskie znajdują się w przewodzie pokarmowym żółwia41W związku z tym próbka, w której masa plastiku w gramach jest większa niż masa pozostałości pokarmowych, może wskazywać na zwierzę w bardzo złym stanie zdrowia. Aby pozostać w zgodzie z Fulmar EcoQO17,25 stosowane przez kraje północnej Europy, w obu scenariuszach uwzględniono masę plastiku zamiast masy odpadów morskich.

Wreszcie istotne jest wyjaśnienie różnic między (i) analizą spożycia plastiku przez żółwie morskie jako wskaźnikiem wpływu na populację z konsekwencjami dla ochrony populacji a (ii) analizą spożycia plastiku przez żółwie morskie jako bioindykatorem wpływu na środowisko przybrzeżne i morskie20,40. Aby zrozumieć skutki tego wpływu dla ochrony populacji żółwi, potrzebne są dalsze informacje oraz lepsza stratyfikacja danych42. Konfrontacja opinii 35 specjalistów z 13 krajów, będących ekspertami w dziedzinie biologii i ochrony żółwi morskich, jasno wskazuje, że żółwie morskie były szeroko badane na przestrzeni lat, choć nadal konieczne jest badanie interakcji z działalnością człowieka, a tym samym ocena stanu populacji i potencjalnych zagrożeń43.

Oznacza to, że pojedynczy protokół nie może być uznany za wyczerpujący dla wszystkich zagadnień tematycznych i konieczne są dalsze badania, aby zrozumieć wpływ plastiku na poziomie populacyjnym.

Mimo że plastik mógłby być uznany za przyczynę niewielkich szkód dla żółwi morskich, w porównaniu z przyłowem lub niszczeniem siedlisk, jego redukcja w ostatnich latach była trudna, dlatego należy opracować szybkie metody pomiaru. Istnieje kontrowersja dotycząca wykorzystywania wyrzuconych na brzeg żółwi do celów monitoringu, ponieważ według niektórych autorów nie są one reprezentatywne dla całej populacji40, podczas gdy inni stwierdzili, że żółwie wyrzucone na brzeg nie wykazują błędu w ocenie częstotliwości spożywania odpadów morskich w populacji tła4. Co więcej, w wielu krajach nie istnieje dobrze zorganizowana sieć lub system monitorowania wyrzutów łączący ośrodki ratunkowe z rybakami, a brakuje informacji o przyłowach i śmiertelności po uwolnieniu przez rybołówstwo. Zatem próbki z żółwi wyrzuconych na brzeg nie zawsze można uważać za żółwie chore, które przez pewien czas przed śmiercią i dotarciem na plażę wykazywały nieprawidłowe zachowania żywieniowe; wiele z nich to żółwie, które „zmarły na morzu”, zostały wyrzucone na brzeg i zazwyczaj są wykorzystywane jako próbki w działaniach monitoringowych26,32,38,45. Uważamy, że próbki z żółwi wyrzuconych na brzeg są przydatne w dostarczaniu informacji o poziomie występowania odpadów morskich w środowisku i sugerujemy wykluczenie z tej analizy jedynie żółwi z całkowicie pustym przewodem pokarmowym, ponieważ mogły być one chore na długo przed śmiercią. Zastosowanie tego protokołu umożliwiłoby ocenę stanu środowiska oraz dostępności odpadów morskich dla organizmów morskich. Mogłoby to również pomóc w poszerzeniu wiedzy na temat zachowania żółwi. Znaczenie tej metody w odniesieniu do wytycznych MSFD TS-ML2 wynika z harmonizacji w siedmiu krajach oraz liczby próbek, na których została przetestowana (n = 70). Na podstawie wstępnych wyników zdefiniowano poziom kondycji ciała osobników oraz zredukowano kategorie spożytych odpadów morskich. Co więcej, po raz pierwszy przedstawiono reprezentatywne wyniki i powiązano je z progami GES.

Protokół ten stanowi wydajne narzędzie dla badaczy chcących zrozumieć wpływ tworzyw sztucznych na środowisko morskie w skali globalnej lub lokalnej, a także porównać zestandaryzowane dane z krajami sąsiednimi. Taki rezultat nie był wcześniej możliwy do osiągnięcia ze względu na rozbieżności w danych między różnymi krajami, co uniemożliwiało jakiekolwiek porównania przestrzenne.

Oświadczenia

Autorzy nie mają nic do ujawnienia.

Podziękowania

Autorzy są wdzięczni Francuskim Centrom Ratunkowym (Jean-Batiste Senegas), sieciom wyrzucenia na brzeg (Jacques Sacchi) i laboratoriom weterynaryjnym (Joanne Belfort) oraz Jessiaca Martin i Marie Sabatte, sieci wyrzucania na brzeg waleni i żółwi morskich Wspólnoty Walencji, w tym Jednostce Zoologii Morskiej Instytutu Cavanilles (Uniwersytet w Walencji) oraz Służbie ds. Bioróżnorodności Generalitat Valenciana, Portugalskiemu Regionalnemu Funduszowi Nauki i Technologii Azory (Maria Vale), Włoskie Centra Ratunkowe (Stazione Zoologica "Anton Dohrn", Neapol i Sardyńskie CREs), laboratoria weterynaryjne (IZSLT, M. Aleandri, Roma; IZSAM G. Caporale Teramo; IZSS G. Pegreffi Otistano; IZS CReTaM Palermo), członkom Rady Doradczej INDICIT i PO za ich sugestie, a także Ministerstwom Środowiska i Rządom Regionalnym krajów uczestniczących za wsparcie.

Dwóch anonimowych recenzentów za ich sugestie i komentarze.

Niniejszy protokół został wykonany przez konsorcjum INDICIT w ramach europejskiego projektu DG-ENV GA nr 11.0661/2016/748064/SUB/ENV. Klasa C2.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
Do odzyskania zwierzęcia i pobrania próbek w miejscu odkrycia
Buty Worki
butelki/struny
Chłodziarka
do aparatu
Rękawice
Śmieci torba
Okulary i maska ochronna lub tarcza
Rękawice
Zintegrowany kombinezon ochronny 
Taśma
Arkusz obserwacyjny
Długopis
Marker
Lina (do oznaczania strefy)
Pojemniki transportowe lub pojemniki na żółwia
Do pobierania próbek od osób martwych w laboratorium i ekstrakcji połkniętej ściółki z przewodu pokarmowego
W pomieszczeniu laboratoryjnym
Komora chłodnicza lub zamrażarki skrzyniowe (-20° C) o dużej pojemności
Worki
Proofer (nieobowiązkowy)
Do manipulatorów
Buty Rękawice
odporne na przecięcie
Okulary i maska ochronna lub tarczaochronna
Rękawice
Integralny kombinezon
Do notatek i raportów
Arkusz obserwacyjny
Długopis
Marker
Do pomiarów biometrycznych
Taśma
Suwmiarka
Do sekcji zwłok i pobierania próbek
Zaciski (co najmniej 6) i/lub sznurek kistchen lub plastikowe zaciski
kablowe Klipsy z pazurami
Pojemniki na próbki (butelki/worki z zamkiem błyskawicznym)
Pojemniki metalowe
Skalpel (możliwy z wymiennym ostrzem)
Nożyczki
Do analizy połkniętej ściółki
Lornetka (opcjonalnie)
Cylindry miarowe (10 ml, 25 ml, 50 ml)
Miarka decymetra
Waga precyzyjna (0,01 g)
Sito o oczkach
Sito o oczkach 5 mm (opcjonalnie – do badania spożytych mikrodrobin plastiku (1-5 mm))
naodporne na przecięciemierniczapermanentnymagazynowejna śmieci ochronny kamery permanentnymiernicza przesuwna1 mm

Bibliografia

  1. UNEP. Marine plastic debris and microplastics – Global lessons and research to inspire action and guide policy change. , United Nations Environment Programme. Nairobi. (2016).
  2. COM2018028. Communication From The Commission To The European Parliament, The Council, The European Economic And Social Committee And The Committee Of The Regions A European Strategy For Plastics In A Circular Economy. , (2018).
  3. Jambeck, J. R., et al. Plastic waste inputs from land into the ocean. Science. 347, 768-771 (2015).
  4. Mansui, J., Molcard, A., Ourmieres, Y. Modelling the transport and accumulation of floating marine debris in the Mediterranean basin. Marine Pollution Bulletin. 91, 249-257 (2015).
  5. Law, K. L. Plastics in the Marine Environment. Annual Review Marine Science. 9, 205-229 (2017).
  6. Vince, J., Hardesty, B. D. Plastic pollution challenges in marine and coastal environments: from local to global governance. Restoration Ecology. 25 (1), 123-128 (2017).
  7. Bürgi, E. Sustainable Development in International Law Making and Trade: International Food Governance and Trade in Agriculture. , Edward Elgar Publishing. (2015).
  8. COMMISSION DECISION (EU). 2017/848 of 17 May 2017 laying down criteria and methodological standards on good environmental status of marine waters and specifications and standardized methods for monitoring and assessment, and repealing Decision 2010/477/EU. , (2017).
  9. Provencher, J. F., et al. Quantifying ingested debris in marine megafauna: a review and recommendations for standardization. Analytical Methods. 9, 1454(2017).
  10. CBD - Secretariat of the Convention on Biological Diversity and the Scientific and Technical Advisory Panel—GEF. Impacts of Marine Debris on Biodiversity: Current Status and Potential Solutions, Montreal. , Technical Series No. 67 (2012).
  11. Kühn, S., Rebolledo, E. L. B., Van Franeker, J. A. Deleterious effects of litter on marine life. Marine Anthropogenic Litter. Bergmann, M., Gutow, L., Klages, M. , Springer. 75-116 (2015).
  12. Derraik, J. G. The pollution of the marine environment by plastic debris: a review. Marine Pollution Bulletin. 44, 842-852 (2002).
  13. Gall, S. C., Thompson, R. C. The impact of debris on marine life. Marine Pollution Bulletin. , (2015).
  14. Laist, D. W. Overview of the biological effects of lost and discarded plastic debris in the marine environment. Marine Pollution Bulletin. 18, 319-326 (1987).
  15. Fritts, T. H. Plastic bags in the intestinal tracts of leatherback marine turtles. Herpetological Review. 13, 72-73 (1982).
  16. Matiddi, M., et al. Loggerhead Sea Turtles (Caretta caretta): a Target Species for Monitoring Litter Ingested by Marine Organisms in the Mediterranean Sea. Environmental Pollution. 230, 199-209 (2017).
  17. van Franeker, J., et al. Monitoring plastic ingestion by the northern fulmar Fulmarus glacialis in the North Sea. Environmental Pollution. 159, 2609-2615 (2011).
  18. Lynch, J. M. Quantities of marine debris ingested by sea turtles: global meta-analysis highlights need for standardized data reporting methods and reveals relative risk. Environmental Science & Tecnology. 52 (21), 12026-12038 (2018).
  19. Provencher, J., et al. Quantifying ingested debris in marine megafauna: a review and recommendations for standardization. Analytical Methods. 9, 1454(2017).
  20. Bonanno, G., Orlando-Bonaca, M. Perspectives on using marine species as bioindicators of plastic pollution. Marine Pollution Bulletin. 137, 209-221 (2018).
  21. Matiddi, M., van Franeker, J. A., Sammarini, V., Travaglini, A., Alcaro, L. Monitoring litter by sea turtles: an experimental protocol in the Mediterranean. Proceedings of the 4th Mediterranean Conference on Sea Turtles, , (2011).
  22. MSFD-TSGML. Guidance on monitoring of marine litter in European Seas. A guidance document within the common implementation strategy for the marine strategy framework directive. EUR-26113 EN. JRC Scientific and Policy Reports JRC83985. , http://mcc.jrc.ec.europa.eu/documents/201702074014.pdf (2013).
  23. Bolten, A. B. Research and Management Techniques for the Conservation of Sea Turtles. IUCN/SSC Marine Turtle Specialist Group Publication. Eckert, K. L., Bjorndal, K. A., Abreu-Grobois, F. A., Donnelly, M. , 4 (1999).
  24. Wyneken, J. The Anatomy of Sea Turtles. U.S. Department of Commerce NOAA Technical Memorandum NMFS SEFSC 470. , https://www.sefsc.noaa.gov/turtles/TM_470_Wyneken.pdf (2001).
  25. van Franeker, J. A., Meijboom, A. Litter NSV, Marine Litter Monitoring by Northern Fulmar; a Pilot Study. Alterra-rapport. 401, (2002).
  26. Domènech, F., Aznar, F. J., Raga, J. A., Tomás, J. Two decades of monitoring in marine debris ingestion in loggerhead sea turtle, Caretta caretta, from the western Mediterranean. Environmental Pollution. 244, 367-378 (2018).
  27. CITES-Convention on International Trade in Endangered Species of Wild Fauna and Flora. , Annex I (2019).
  28. Tomas, J., Guitart, R., Mateo, R., Raga, J. A. Marine debris ingestion in loggerhead sea turtles, Caretta caretta, from the Western Mediterranean. Marine Pollution Bulletin. 44, 211-216 (2002).
  29. Nelms, S. E., et al. Plastic and marine turtles: a review and call for research. ICES Journal of Marine Science. 73 (2), 165-181 (2015).
  30. Fukuoka, T., et al. The feeding habit of sea turtles influences their reaction to artificial marine debris. Scientific Reports. 6 (28015), (2016).
  31. Hoarau, L., Ainley, L., Jean, C., Ciccione, S. Ingestion and defecation of marine debris by loggerhead sea turtles, Caretta caretta, from by-catches in the South-West Indian Ocean. Marine Pollution Bulletin. 84, 90-96 (2014).
  32. Nicolau, L., Marçalo, A., Ferreira, M., Sa, S., Vingada, J., Eira, C. Ingestion of marine litter by loggerhead sea turtles, Caretta caretta, in Portuguese continental waters. Marine Pollution Bulletin. 103, 179-185 (2016).
  33. Pham, C. K., et al. Plastic ingestion in oceanic-stage loggerhead sea turtles (Caretta caretta) off the North Atlantic subtropical gyre. Marine Pollution Bulletin. 121, 22-229 (2017).
  34. Clukeya, K. E., et al. Investigation of plastic debris ingestion by four species of sea turtles collected as bycatch in pelagic Pacific longline fisheries. Marine Pollution Bullettin. 120 (1-2), 117-125 (2017).
  35. Wabnitz, C., Pauly, D. Length-weight relationship and additional growth parameters for sea turtles. Von Bertalanffy growth parameters of non-fish marine organisms. 16, Fisheries Centre, University of British Columbia. 92-101 (2008).
  36. Lutz, P. L., Musick, J. A. Foraging ecology and nutrition in sea turtles. The Biology of Sea Turtles. , CRC Press. Boca Raton. CRC Marine Science Series 199-231 (1997).
  37. McCauley, S. J., Bjorndal, K. A. Conservation implications of dietary dilution from debris ingestion: sublethal effects in post-hatchling loggerhead sea turtles. Conservation Biology. 13, 925-929 (1999).
  38. Campani, T., et al. Presence of plastic debris in loggerhead turtle stranded along the Tuscany coasts of the Pelagos sanctuary for mediterranean marine mammals (Italy). Marine Pollution Bulletin. 74, 1330-1334 (2013).
  39. Deudero, S., Alomar, C. Revising interactions of plastics with marine biota: evidence from the Mediterranean in CIESM 2014. Marine litter in the Mediterranean and Black Seas. Briand, F. , CIESM Workshop Monograph n 46 CIESM (2014).
  40. Fossi, C., et al. Bioindicators for monitoring marine litter ingestion and its impacts on Mediterranean biodiversity. Environmental Pollution. 237, 1023-1040 (2018).
  41. Mccauley, S., Bjorndal, K. A. Conservation Implications of Dietary Dilution from Debris Ingestion: Sublethal Effects in Post-Hatchling Loggerhead Sea Turtles. Conservation Biology. 13, 925-929 (1999).
  42. Casale, P., Freggi, D., Paduano, V., Oliverio, M. Biased and best approaches for assessing debris ingestion in sea turtles, with a case study in the Mediterranean. Marine Pollution Bulletin. 110 (1), 238-249 (2016).
  43. Hamann, M., et al. Global research priorities for sea turtles: informing management and conservation in the 21st century. Endangered Species Research. 11, 245-269 (2010).
  44. Schuyler, Q. A., et al. Risk analysis reveals global hotspots for marine debris ingestion by sea turtles. Global Change Biology. 22, 567-576 (2016).
  45. Camedda, A., et al. Interaction between loggerhead sea turtles (Caretta caretta) and marine litter in Sardinia (Western Mediterranean Sea). Marine Environmental Research. 100, 25-32 (2014).

Przedruki i uprawnienia

Tagi

Sekcja zw ok wia morskiegoizolacja przewodu pokarmowegofiltracja przez sito z siatkilo ciowa klasyfikacja zanieczyszczepomiar masy suchejwyznaczanie warto ci progowejpor wnanie pozosta o ci plastiku w po ywieniusekcja zw ok w autoryzowanym o rodku