Method Article

Ocena autonomicznych i behawioralnych skutków ruchu biernego u szczurów za pomocą pionowego ruchu windy i obrotu diabelskiego młyna

DOI:

10.3791/59837

⸱

February 7th, 2020

 ,  ,  ,  ,  ,  ,  , 
1School of Biomedical Engineering, Faculty of Engineering, University of Sydney, 2Department of Physics, City University of Hong Kong, 3Department of Nautical Injury Prevention, Faculty of Navy Medicine, Second Military Medical University, 4State Key Laboratory of Marine Pollution (SKLMP), City University of Hong Kong, 5Department of Biomedical Sciences, College of Veterinary Medicine and Life Sciences, City University of Hong Kong, 6Department of Materials Science and Engineering, City University of Hong Kong

In This Article

Summary

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Przedstawiono protokoły oceny autonomicznych i behawioralnych efektów pasywnego ruchu u gryzoni za pomocą pionowego ruchu windy i obrotu diabelskiego młyna.

Abstract

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Ogólnym celem tego badania jest ocena autonomicznych i behawioralnych efektów ruchu biernego u gryzoni przy użyciu pionowego ruchu windy i urządzeń do obracania diabelskiego młyna. Testy te mogą pomóc potwierdzić integralność i normalne funkcjonowanie autonomicznego układu nerwowego. Są one sprzężone z pomiarami ilościowymi opartymi na liczeniu defekacji, badaniu w terenie otwartym i przechodzeniu przez równoważnię. Zaletami tych testów są ich prostota, odtwarzalność i ilościowe miary behawioralne. Ograniczenia tych testów polegają na tym, że reakcje autonomiczne mogą być epifenomenami zaburzeń nieprzedsionkowych i że wymagany jest sprawny układ przedsionkowy. Badanie zaburzeń, takich jak choroba lokomocyjna, będzie znacznie ułatwione dzięki szczegółowym procedurom tych testów.

Introduction

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Choroba lokomocyjna (MS) spowodowana nieprawidłową stymulacją wzrokowo-przedsionkową prowadzi do reakcji autonomicznej, wywołując objawy takie jak dyskomfort w nadbrzuszu, nudności i/lub wymioty1. Zgodnie z obecnymi teoriami, choroba lokomocyjna może być spowodowana konfliktem sensorycznym lub niedopasowaniem neuronalnym spowodowanym odbieraniem zintegrowanych informacji o ruchu, które różnią się od przewidywanego wewnętrznego modelu środowiska2,3 lub niestabilność postawy, która wystąpiłaby na ziewającym statku4,5. Pomimo znacznych postępów w dziedzinie choroby lokomocyjnej i autonomicznego funkcjonowania przedsionkowego6,7,8,9,10,11,12, przyszłe badania mogą być wspomagane przez ustandaryzowane protokoły oceny. Ocena autonomicznych skutków standardowych ruchów biernych przyniesie ogromne korzyści w badaniach nad przyczynami i zapobieganiem chorobie lokomocyjnej. Ogólnym celem tego badania jest ocena autonomicznych i behawioralnych skutków ruchu biernego u gryzoni. Modele zwierzęce, takie jak gryzonie, umożliwiają łatwą manipulację eksperymentalną (np. ruch bierny i farmaceutyczny) oraz ocenę behawioralną, którą można wykorzystać do badania etiologii choroby lokomocyjnej. W tym miejscu przedstawiamy szczegółową baterię do badania efektów ruchu biernego i integralności funkcjonowania układu przedsionkowego.

Niniejsze badanie szczegółowo opisuje dwa testy, pionowy ruch windy (EVM) i obrót diabelskiego młyna (FWR), które wywołują autonomiczne reakcje na ruch pasywny. Testy są sprzężone z trzema ilościowymi miarami behawioralnymi: belką równoważącą (na myszach13 i szczurach14,15,16,17), badanie na otwartym polu i liczenie defekacji. EVM (podobny do nachylenia i przechyłu statku napotykającego falę) ocenia funkcjonowanie układu przedsionkowego poprzez stymulację otolitowych narządów zmysłów, które kodują przyspieszenia liniowe (tj. woreczek, który reaguje na ruchy w płaszczyźnie pionowej)18. Urządzenie FWR (rotacja odśrodkowa lub ruch sinusoidalny) stymuluje narządy otolitu przez przyspieszenie liniowe, a kanały półkoliste przez przyspieszenie kątowe19,20. Urządzenie do obracania diabelskiego młyna/odśrodkowego jest wyjątkowe pod względem autonomicznej oceny. Do tej pory jedynym podobnym urządzeniem w literaturze jest gramofon z obrotem osi poza pionem (OVAR), który służy do badania odruchu przedsionkowo-ocznego (VOR)18,21,22, unikanie warunkowe23,24, oraz efekty hipergrawitacji25,26,27. Test EVM i test urządzenia FWR indukują stymulację przedsionkową prowadzącą do reakcji autonomicznych. Łączymy EVM i FWR z pomiarami ilościowymi, takimi jak równoważnia, liczenie defekacji i analiza w otwartym polu28,29,30, aby zapewnić solidne i powtarzalne wyniki. Podobnie jak te wcześniej opisane w mys13 i rats14,15,16,17, test równoważni to belka o długości 1,0 m zawieszona 0,75 m nad ziemią między dwoma drewnianymi stołkami za pomocą prostej modyfikacji czarnej skrzynki na końcu bramki (na końcu). Belka równoważnia została użyta do oceny lęku (niejasna skrzynka)14,17, uraz urazowy15,16,17, a tutaj reakcje autonomiczne wpływające na równowagę. Wcześniej przeprowadziliśmy liczenie defekacji w celu oceny reakcji autonomicznej w modelu choroby lokomocyjnej i jest to wiarygodny pomiar ilościowy, który można łatwo wykonać i jednoznacznie ocenić6,8,9,11. Analiza otwartego pola wykorzystuje prostą ocenę zachowania w czarnym polu przy użyciu Ethovision28, Bonsai30 lub prostej analizy wideo w Matlab29 w celu ilościowego określenia zachowania, takiego jak ruch. W obecnym protokole używamy całkowitej przebytej odległości, ale zauważamy, że istnieje kilka różnych paradygmatów (np. wydłużenie, strefa ruchu, prędkość itp.)28,29,30. Łącznie procedury te tworzą krótki zestaw ocen do badania i oceny autonomicznych reakcji na ruch bierny, na przykład w chorobie lokomocyjnej6,7,8,9,10,11. Obecne testy można dostosować do różnych modeli zwierzęcych.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Protocol

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Obecne badanie i procedury zostały zatwierdzone przez Komitet Etyki ds. Eksperymentów na Zwierzętach Drugiego Wojskowego Uniwersytetu Medycznego (Szanghaj, Chiny) zgodnie z Przewodnikiem po opiece i użytkowaniu zwierząt laboratoryjnych (Amerykańska Narodowa Rada ds. Badań, 1996).

1. Zwierzęta

  1. Stosować szczury Sprague-Dawley (SD) w wieku dwóch miesięcy (200–250 g). Do każdego testu behawioralnego użyj oddzielnej grupy szczurów. Zawsze używaj oddzielnych grup kontrolnych i eksperymentalnych.
    UWAGA: Przeprowadzono dwa testy autonomiczne: EVM i FWR. EVM miał trzy warunki oprócz grupy kontrolnej (= 4) z trzema testami behawioralnymi (równoważnia, liczenie defekacji i otwarte pole = 3) z 8 szczurami w każdym, co daje w sumie 96 szczurów (4 x 3 x 8). FWR miał jeden warunek oprócz grupy kontrolnej (= 2) z trzema testami behawioralnymi (równoważnia, liczenie defekacji i otwarte pole = 3) z 8 szczurami w każdym, co daje w sumie 48 szczurów (2 x 3 x 8). W sumie zgłaszamy 144 szczury.
  2. Gryzonie należy umieszczać w klatkach w stałej temperaturze 25 °C i wilgotności 60%–70%.
  3. Kurnik w cyklach 12 h/12 h światło/ciemność z dostępem do pożywienia i wody pitnej ad libitum.
    UWAGA: Ponieważ poniższe protokoły są eksperymentami behawioralnymi, ze szczurami należy obchodzić się delikatnie. Obchodzenie się ze zwierzętami powinno odbywać się obiema rękami z podparciem ciała i tyłu, aby nie wywoływać niepokoju.
  4. Wykonuj eksperymenty (EVM i FWR) i testy ewaluacyjne (równoważnia i ocena w otwartym polu) w ciemności, aby zminimalizować sygnały wizualne.

2. Urządzenie do pionowego ruchu windy

  1. Wykonuj procedury ruchu pionowego windy w całkowitej ciemności, aby zminimalizować sygnały wizualne.
  2. Umieść gryzonie w pudełku z pleksiglasu (22,5 cm x 26 cm x 20 cm). Tutaj pudełko z pleksiglasu może pomieścić cztery gryzonie (urządzenie wykonane na zamówienie).
  3. Upewnij się, że pudełko jest zamknięte i bezpiecznie zamknięte, aby uniknąć wypadnięcia gryzoni. Umieść pudełko z pleksi na podkładce windy urządzenia ruchu pionowego windy (urządzenie wykonane na zamówienie).
  4. Włącz urządzenie ruchu pionowego windy na najniższe ustawienie w celu aklimatyzacji.
  5. Ustaw amplitudę na 22 cm w górę i 22 cm w dół od przewodu neutralnego. Stopniowo zmieniaj ruch pionowy windy w następujący sposób:
    1. Ustaw początkowe okresy na 2 500 ms przez 5 min, 2 000 ms przez 5 min i 1 500 ms przez 5 min.
    2. Zastosuj okres testowy 1000 ms przez 2 godziny.
    3. Zwolnij urządzenie do tyłu, używając okresów 1500 ms przez 5 min, 2000 ms przez 5 min i 2500 ms przez 5 min.

3. Urządzenie do obracania diabelskiego młyna

  1. Konfiguracja urządzenia do obracania diabelskiego młyna
    1. Umieść pojemnik z pleksi (22,5 cm x 26 cm x 20 cm) na drewnianej ławce (urządzenie wykonane na zamówienie).
    2. Umieść gryzonie w pojemniku z pleksiglasu tak, aby długa oś ciała była prostopadła do poziomego pręta obrotowego diabelskiego młyna (urządzenie wykonane na zamówienie).
      UWAGA: Ułożenie z ciałem prostopadłym do poziomego pręta zapewnia stymulację narządów otolitowych (kierunek przednio-tylny i pionowy) podczas obrotu.
    3. Szczelnie zamknij pudełko z pleksiglasu.
    4. Umieścić drugi zestaw gryzoni w pojemniku z pleksiglasu tak, aby długa oś ciała była prostopadła do poziomego pręta obrotowego na drugim ramieniu urządzenia do obracania diabelskiego młyna. Użyj drugiego zestawu gryzoni o podobnej masie, aby zrównoważyć diabelski młyn.
    5. Bezpiecznie zamknij pudełko z pleksi i umieść na urządzeniu do obracania diabelskiego młyna.
  2. Procedura obrotu diabelskiego młyna
    1. Wykonuj procedury obracania diabelskiego młyna w całkowitej ciemności, aby zminimalizować sygnały wizualne.
    2. Uruchom diabelski młyn obracający się w kierunku zgodnym z ruchem wskazówek zegaraz prędkością 16°/s 2, aby osiągnąć prędkość kątową 120°/s, a następnie zacznij zwalniać z prędkością 48°/s2, aby osiągnąć 0°/s. Po upływie 1 s przerwy pojemnik powinien nadal obracać się w kierunku przeciwnym do ruchu wskazówek zegara w taki sam sposób, jak powyżej (przyspieszenie z prędkością 16°/s2 do osiągnięcia prędkości kątowej 120°/s, a następnie opóźnienie z prędkością 48°/s2 do osiągnięcia 0°/s). Cykl prawo-pauza-przeciwnie do ruchu wskazówek zegara wymaga około 10 s, aby osiągnąć pozycję początkową.
    3. Kontynuuj obrót zgodnie z ruchem wskazówek zegara i przeciwnie do ruchu wskazówek zegara przez 2 godziny na sesję przez około 720 obrotów.

4. Ocena EVM i FWR

UWAGA: Ocena urządzenia do obracania diabelskiego młyna i pionowego ruchu windy odbywa się za pomocą trzech procedur: badania równoważni, liczenia defekacji i badania na otwartym polu. Identyczne procedury są stosowane do oceny ruchu pionowego windy. Te procedury oceny powinny być wykonywane tak szybko, jak to możliwe, po obróceniu diabelskiego młyna lub pionowym ruchu windy.

  1. Belka równoważnia
    1. Ustawienie równoważni
      1. Ustaw równoważnię10,11,12, umieszczając dwa drewniane stołki (o wysokości około 0,75 m) na polu doświadczalnym, w odległości około 110 cm od siebie.
      2. Umieść czarne plastikowe pudełko (15 cm x 15 cm x 8 cm) na stołku wykończeniowym.
      3. Umieść wąską drewnianą belkę (2,5 cm x 130 cm) między dwoma stołkami, pozostawiając 100 cm odległość między krawędziami stołka, od stołka początkowego do stołka końcowego.
        UWAGA: Wejście do czarnego plastikowego pudełka powinno znajdować się na mecie 100 cm.
      4. Umieść lampę na stołku startowym. Włącz lampę.
      5. Wyłącz światła w pokoju i upewnij się, że w pomieszczeniu jest tak ciemno, jak to możliwe. Dzięki temu gryzoń podąża za kierunkiem belki równoważącej od oświetlonego obszaru do zasłoniętego obszaru.
    2. Zabiegi na równoważni
      UWAGA: Test koordynacji ruchowej równoważni ocenia się, mierząc czas potrzebny na pokonanie podwyższonej drewnianej belki.
      1. Trenuj każdego gryzonia codziennie przez 3 kolejne dni, przed okresem badania, aby osiągnąć stabilną wydajność na równoważni10. Trenuj, wprowadzając szczura do belki w oświetlonym rogu i zachęcając go do przejścia przez belkę. W końcu szczur przekroczy granicę z własnej woli. Szczury w obecnym protokole potrzebowały 3,6 ± 0,9 sekundy.
        UWAGA: Niektóre gryzonie nie osiągają stabilnej wydajności podczas treningu i należy je wykluczyć. Niektóre gryzonie nie wykonują zadania, innym brakuje motywacji do przejścia przez belkę. Stabilnym osiągiem były dwa następujące po sobie okresy próbne z czasem przekroczenia poniżej 4 sekund. Jeśli szczur odpadnie podczas treningu lub oceny, powinien zostać sklasyfikowany jako "upadek" szczura i nie powinien być dalej oceniany.
      2. Aby wykonać właściwą procedurę, umieść wyszkolonego gryzonia na stołku startowym w pobliżu światła i jednocześnie naciśnij start na stoperze. Gryzoń powinien szybko przekroczyć równoważnię i wejść do czarnej skrzynki na stołku końcowym.
      3. Naciśnij start na stoperze, gdy gryzoń znajdzie się na miejscu i naciśnij stop, gdy nos wejdzie do ciemnego pudełka na stołku do mety. Czas przejścia przez belkę trwa od rozpoczęcia stołka do zakończenia stołka.
        UWAGA: Po wytrenowaniu gryzonia możesz przeprowadzić interwencję lub manipulację, taką jak wywołanie choroby lokomocyjnej, przed oceną. Możesz również uzyskać pomiar bazowy przed interwencją, wykorzystując czas do przejścia ostatniej sesji treningowej.
  2. Liczenie defekacji
    1. Umieść pojemnik z pleksiglasu zawierający cztery gryzonie na ławce po okresie badania diabelskiego młyna.
    2. Usuń gryzonie i umieść je w indywidualnych pudełkach polowych (poniżej).
    3. Policz liczbę granulek kału w pudełku z pleksiglasu przypisaną do każdego gryzonia.
      UWAGA: Pomiar linii bazowej można uzyskać, w celu porównania z oceną po ruchu windy, licząc granulki kału przed poddaniem się ruchowi pionowemu windy.
  3. Badanie w terenie otwartym
    1. Umieść gryzonie w pudełku polowym (40 cm x 40 cm x 45 cm).
    2. Nagrywaj zachowanie w otwartym polu za pomocą kamery wideo na podczerwień przez 3 minuty28,29,30.
    3. Określ całkowitą przebytą odległość.
      UWAGA: Bardzo ważne jest, aby NIE umieszczać gryzonia w pudełku na otwartym polu przed ruchem pionowym windy. Środowisko musi być nowe dla gryzonia. Dlatego pomiarów podstawowych NIE należy wykonywać do badania w terenie otwartym.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Results

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Rysunek 2 pokazuje reprezentatywne wyniki równoważni dla czasu potrzebnego do przekroczenia poprzecznego. Szczury były trenowane przez 3 kolejne dni, aby osiągnąć stabilną wydajność na równoważni10. Następnego dnia szczury zostały ocenione pod kątem działania równoważni. Na osi y rysunku mamy liczbę sekund potrzebnych gryzoniom na przejście przez równoważnię dla diabelskiego młyna, pionowego ruchu windy i grup kontrolnych w celach demonstracyjnych.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Discussion

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

W niniejszym badaniu opisano ocenę autonomicznych reakcji na ruch bierny u gryzoni za pomocą pionowego ruchu windy i obrotu diabelskiego młyna. Ten sprzęt i procedury można łatwo dostosować do innych gryzoni, a istnieje kilka modyfikacji testów, aby potwierdzić funkcjonowanie układu przedsionkowego w różnych okolicznościach, na przykład podczas prowokacji farmakologicznej lub interwencji chirurgicznych. Badania nad stwardnieniem rozsianym wywołanym stymulacją przedsionkową doprowadziły do teorii, że konflikt sensoryczny ...

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Disclosures

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Autorzy deklarują brak finansowych lub niefinansowych konfliktów interesów. Urządzenie FWR posiada patent w Chinach: ZL201120231912.1.

Acknowledgements

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Ta praca była częściowo wspierana przez Hong Kong Research Grants Council, Early Career Scheme, Project #21201217 to C. L. Urządzenie FWR posiada patent w Chinach: ZL201120231912.1.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Materials

List of materials used in this article
NameCompanyCatalog NumberComments
Urządzenie do ruchu pionowego windyNiestandardoweurządzenie do pionowego ruchu windy według żądanych specyfikacji
EthovisionNoldus TechnologiaOprogramowanie do śledzenia wideo
Urządzenie do obracania diabelskiego młynaNiestandardoweurządzenie do obracania diabelskiego młyna na zamówienie według żądanych specyfikacji
Rękawice lateksowe, poliwinylowe lub nitryloweAMMEXUżywaj niepudrowanych rękawiczek 8-milowe
pudełko otwarte poleNiestandardoweprzyciemnione pudełko z pleksi z kamerą na podczerwień
Laboratorialub myszyDowolny mały gryzoń
Mała klatka dla gryzoniTecniplast1284L
Drewniana belka i stołkiNiestandardoweWykonane na zamówienie drewniane belki i stołki według wskazanych specyfikacji
informacyjna szczurów JAX

References

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Balaban, C. D. Vestibular autonomic regulation (including motion sickness and the mechanism of vomiting). Current Opinion in Neurology. 12, 29-33 (1999).
  2. Reason, J. T. Motion sickness adaptation: a neural mismatch model. Journal of the Royal Society of Medicine. 71, 819-829 (1978).
  3. Keshavarz, B., Hettinger, L. J., Kennedy, R. S., Campos, J. L. Demonstrating the potential for dynamic auditory stimulation to contribute to motion sickness. PLOS One. 9, 101016(2014).
  4. Stoffregen, T. A., Chen, F. C., Varlet, M., Alcantara, C., Bardy, B. G. Getting your sea legs. PLoS One. 8, 66949(2013).
  5. Smart, L. J. Jr, Pagulayan, R. J., Stoffregen, T. A. Self-induced motion sickness in unperturbed stance. Brain Research Bulletin. 47, 449-457 (1998).
  6. Wang, J. Q., et al. Temporal change in NMDA receptor signaling and GABAA receptor expression in rat caudal vestibular nucleus during motion sickness habituation. Brain Research. 1461, 30-40 (2012).
  7. Cai, Y. L., et al. Glutamatergic vestibular neurons express FOS after vestibular stimulation and project to the NTS and the PBN in rats. Neuroscience Letters. 417, 132-137 (2007).
  8. Cai, Y. L., et al. Decreased Fos protein expression in rat caudal vestibular nucleus is associated with motion sickness habituation. Neuroscience Letters. 480, 87-91 (2010).
  9. Wang, J. Q., Qi, R. R., Zhou, W., Tang, Y. F., Pan, L. L., Cai, Y. Differential Gene Expression profile in the rat caudal vestibular nucleus is associated with individual differences in motion sickness susceptibility. PLoS One. 10, 0124203(2015).
  10. Zhou, W., et al. Sex and age differences in motion sickness in rats: The correlation with blood hormone responses and neuronal activation in the vestibular and autonomic nuclei. Frontiers in Aging Neuroscience. 9, 29(2017).
  11. Wang, J., Liu, J., Pan, L., Qi, R., Liu, P., Zhou, W., Cai, Y. Storage of passive motion pattern in hippocampal CA1 region depends on CaMKII/CREB signaling pathway in a motion sickness rodent model. Scientific Reports. 7, 43385(2017).
  12. Qi, R., et al. Anti-cholinergics mecamylamine and scopolamine alleviate motion sickness-induced gastrointestinal symptoms through both peripheral and central actions. Neuropharmacology. 146, 252-263 (2019).
  13. Luong, T. N., Carlisle, H. J., Southwell, A., Patterson, P. H. Assessment of motor balance and coordination in mice using the balance beam. Journal of Visualized Experiments. (49), e2376(2011).
  14. Kalueff, A. V., Minasyan, A., Tuohimaa, P. Behavioural characterization in rats using the elevated alley Suok test. Behavioural Brain Research. 30 (1), 52-57 (2005).
  15. Piot-Grosjean, O., Wahl, F., Gobbo, O., Stutzmann, J. M. Assessment of sensorimotor and cognitive deficits induced by a moderate traumatic injury in the right parietal cortex of the rat. Neurobiology of Disease. 8 (6), 1082-1093 (2001).
  16. Goldstein, L. B., Davis, J. N. Beam-walking in rats: Studies towards developing an animal model of functional recovery after brain injury. Journal of Neuroscience Methods. 31 (2), 101-107 (1990).
  17. Sweis, B. M., et al. modified beam-walking apparatus for assessment of anxiety in a rodent model of blast traumatic brain injury. Behavioural Brain Research. 296, 149-156 (2016).
  18. Hess, B. J., Dieringer, N. Spatial organization of the maculo-ocular reflex of the rat: Responses during off-vertical axis rotation. European Journal of Neuroscience. 2, 909-919 (1990).
  19. Armstrong, P. A., et al. Preserved otolith organ function in caspase-3-deficient mice with impaired horizontal semicircular canal function. Experimental Brain Research. 233 (6), 1825-1835 (2015).
  20. Riccio, D. C., Thach, J. S. Jr Response suppression produced by vestibular stimulation in the rat. Journal of the Experimental Analysis of Behavior. 11 (4), 479-488 (1968).
  21. Rabbath, G., et al. Abnormal vestibular control of gaze and posture in a strain of a waltzing rat. Experimental Brain Research. 136, 211-223 (2001).
  22. Brettler, S. C., et al. The effect of gravity on the horizontal and vertical vestibulo-ocular reflex in the rat. Experimental Brain Research. 132, 434-444 (2000).
  23. Hutchison, S. L. Taste aversion in albino rats using centrifugal spin as an unconditioned stimulus. Psychological Reports. 33 (2), 467-470 (1973).
  24. Green, K. F., Lee, D. W. Effects of centrifugal rotation on analgesia and conditioned flavor aversions. Physiology & Behavior. 40 (2), 201-205 (1987).
  25. Tse, Y. C., et al. Developmental expression of NMDA and AMPA receptor subunits in vestibular nuclear neurons that encode gravity-related horizontal orientations. Journal of Comparative Neurology. 508 (2), 343-364 (2008).
  26. Lai, C. H., Tse, Y. C., Shum, D. K., Yung, K. K., Chan, Y. S. Fos expression in otolith-related brainstem neurons of postnatal rats following off-vertical axis rotation. Journal of Comparative Neurology. 470 (3), 282-296 (2004).
  27. Lai, S. K., Lai, C. H., Yung, K. K., Shum, D. K., Chan, Y. S. Maturation of otolith-related brainstem neurons in the detection of vertical linear acceleration in rats. European Journal of Neuroscience. 23 (9), 2431-2446 (2006).
  28. Aitken, P., Zheng, Y., Smith, P. F. Ethovision analysis of open field behaviour in rats following bilateral vestibular loss. Journal of Vestibular Research. 27 (2-3), 89-101 (2017).
  29. Gao, V., Vitaterna, M. H., Turek, F. W. Validation of video motion-detection scoring of forced swim test in mice. Journal of Neuroscience Methods. 235, 59-64 (2014).
  30. Lopes, G., et al. Bonsai: an event-based framework for processing and controlling data streams. Frontiers in Neuroinformatics. 9, 7(2015).
  31. Conder, G. A., Sedlacek, H. S., Boucher, J. F., Clemence, R. G. Efficacy and safety of maropitant, a selective neurokinin 1 receptor antagonist, in two randomized clinical trials for prevention of vomiting due to motion sickness in dogs. Journal of Veterinary Pharmacology and Therapeutics. 31, 528-532 (2008).
  32. Percie du Sert, N., Chu, K. M., Wai, M. K., Rudd, J. A., Andrews, P. L. Telemetry in a motion-sickness model implicates the abdominal vagus in motion-induced gastric dysrhythmia. Experimental Physiology. 95, 768-773 (2010).
  33. Lackner, J. R. Motion sickness: more than nausea and vomiting. Experimental Brain Research. 232, 2493-2510 (2014).
  34. Lucot, J. B. Effects of naloxone on motion sickness in cats alone and with broad spectrum antiemetics. Autonomic Neuroscience. 202, 97-101 (2016).
  35. McCaffrey, R. J. Appropriateness of kaolin consumption as an index of motion sickness in the rat. Physiology & Behavior. 35, 151-156 (1985).
  36. Horn, C. C., et al. Why can't rodents vomit? A comparative behavioral, anatomical, and physiological study. PLoS One. 8 (4), 60537(2013).
  37. Ossenkopp, K. -P., Frisken, N. L. Defecation as an index of motion sickness in the rat. Physiological Psychology. 10, 355-360 (1982).
  38. Ossenkopp, K. P., Rabi, Y. J., Eckel, L. A., Hargreaves, E. L. Reductions in body temperature and spontaneous activity in rats exposed to horizontal rotation: abolition following chemical labyrinthectomy. Physiology & Behavior. 56, 319-324 (1994).
  39. Oman, C. M. Motion sickness: a synthesis and evaluation of the sensory conflict theory. Canadian Journal of Physiology and Pharmacology. 68, 294-303 (1990).
  40. Hu, D. L., et al. Emesis in the shrew mouse (Suncus murinus) induced by peroral and intraperitoneal administration of staphylococcal enterotoxin A. Journal of Food Protection. 62, 1350-1353 (1999).
  41. Ueno, S., Matsuki, N., Saito, H. Suncus murinus as a new experimental model for motion sickness. Life Sciences. 43, 413-420 (1988).

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article

Request Permission

Tags

Autonomic Nervous SystemPassive MotionElevator Vertical MotionFerris Wheel RotationBalance Beam TrainingDefecation CountingOpen Field TestVestibular SystemRodent BehaviorMotion Sickness

Related Articles