Ten protokół pokazuje, jak zapewnić praktyczne, znaczące wzbogacenie środowiska dla świń, które są trzymane na podłodze z rusztów w różnych etapach ich życia, oraz jak pobierać próbki śliny w sposób nieinwazyjny do pomiaru stężenia kortyzolu, jako biomarkera ostrego stresu.
Subskrypcja JoVE jest wymagana do oglądania tego materiału. Zaloguj się lub rozpocznij bezpłatny okres próbny.
Artykuł metodologiczny
Zapewnienie znaczącego wzbogacenia środowiska i pomiar kortyzolu w ślinie u świń trzymanych na podłodze rusztowej
W tym artykule
Podsumowanie
Streszczenie
Ponieważ wieprzowina jest najczęściej spożywanym mięsem na świecie, dobrostan zwierząt w przemyśle trzody chlewnej staje się coraz bardziej poważnym problemem publicznym, co wymusza znaczną presję ze strony klientów, ustawodawców i innych interesariuszy, aby wprowadzić zmiany w zarządzaniu w celu poprawy dobrostanu tych zwierząt. Kilka badań wykazało, że wzbogacenie środowiska świń pozwala im wyrażać swoje naturalne zachowanie, takie jak zakorzenianie się i eksploracja, a także gniazdowanie przed porodem, i wiąże się ze zmniejszeniem stresu oraz poprawą produkcji i dobrostanu. Jednak przy zapewnianiu wzbogacenia środowiska należy wziąć pod uwagę wiele czynników, takich jak rodzaj podłogi, systemy drenażowe i kanalizacyjne, etap życia świń, materiał, a także sposób jego zawieszenia, wysokość i umiejscowienie w kojcu. Celem tego artykułu jest (1) dostarczenie informacji metodologicznych na temat tego, jak zapewnić stosunkowo proste i praktyczne znaczące wzbogacenie środowiska świniom, które są trzymane na podłogach rusztowych na różnych etapach ich życia, oraz (2) pokazanie, jak pobierać próbki śliny do pomiaru stężenia kortyzolu jako biomarkera ostrego stresu. Protokoły zawierają informacje dotyczące stosowania juty, lin bawełnianych, słomy w stojakach, a także urządzeń do żucia w patyczkach silikonowych jako wzbogacenia środowiska w kojcach porodowych i laktacyjnych, warchlaków i tuczników. Ponadto szczegółowo opisano użycie sznurka bawełnianego do nieinwazyjnego pobierania próbek śliny do analizy stężenia kortyzolu. Dostarczone protokoły są istotne dla profesjonalistów dążących do poprawy i monitorowania dobrostanu zwierząt, zarówno w badaniach, jak i przemysłowej hodowli trzody chlewnej.
Wprowadzenie
Wieprzowina jest najczęściej spożywanym mięsem na świecie, z ponad 1,3 miliarda świń hodowanych i zabijanych rocznie1,2. W ostatnich latach dobrostan zwierząt w przemyśle trzody chlewnej staje się coraz większym problemem publicznym, co wywiera znaczną presję ze strony klientów, ustawodawców i innych zainteresowanych stron, aby wprowadzić zmiany w zarządzaniu w celu poprawy dobrostanu tych zwierząt. Kilka badań wykazało, że wzbogacenie środowiska świń wiąże się ze zmniejszeniem stresu oraz poprawą produkcji i dobrostanu, ponieważ pozwala świniom wyrazić swoje naturalne zachowanie, takie jak zakorzenianie się i eksploracja, a także gniazdowanie przed porodem3,4,5,6,7.
Świnie są uważane za inteligentne zwierzęta i mają bardzo dociekliwy charakter; zatem, jeśli nie zostanie zapewnione odpowiednie środowisko, świnie prawdopodobnie będą wykazywać stereotypowe zachowanie i kierować manipulacyjne zachowania społeczne w stosunku do kolegów z pióra, co może prowadzić do gryzienia ogonów, jak również innych urazów i stresu8,9. W związku z tym profesjonaliści zalecają zapewnienie znaczącego wzbogacenia środowiska, a w niektórych krajach nawet narzucają to przepisy i ustawodawstwo, takie jak Dyrektywa Rady Unii Europejskiej 2008/120/WE5.
Zapewnienie znaczącego wzbogacenia środowiska może być wyzwaniem; powinno spełniać naturalne potrzeby behawioralne świń na każdym etapie ich życia, a także uwzględniać praktyczne i techniczne ograniczenia. Przed oproszeniem zapewnienie materiału do budowy gniazda wiąże się z krótszym czasem trwania porodu, a także z wyższą przeżywalnością nowonarodzonych prosiąt podczas porodu i przez cały okres laktacji. Co więcej, w wolnych kojcach ze wzbogaceniem środowiska poprawia się zachowanie matki, a także wydajność poznawcza i przyrost masy ciała prosiąt3,10,11,12,13. Po odsadzeniu grupowanie prosiąt (warchlaków, ryjników lub tuczników) z różnych miotów lub kojców może być stresujące i powodować agresywność w stosunku do innych kolegów z kojca, co może prowadzić do kontuzji14,15. Dlatego podczas mieszania nieznanych świń, zapewnienie znaczącego wzbogacenia środowiska może potencjalnie zmniejszyć występowanie niepożądanych zachowań wynikających z frustracji i agresywności lub przekierowania zachowań związanych z ukorzenianiem.
Zgodnie z Dyrektywą Rady Unii Europejskiej 2008/120/WE (ustanowioną w 2001/93/WE), wymagane jest, aby świnie miały stały dostęp do wystarczającej ilości materiału, aby umożliwić prawidłowe badania i manipulacje, takie jak słoma, siano, drewno, trociny, kompost grzybowy, torf lub mieszanina tych5,6. Jednak stosowanie tych materiałów może być niemożliwe do opanowania w wielu gospodarstwach, ponieważ może powodować zablokowanie systemów drenażowych i kanalizacyjnych, szczególnie w gospodarstwach z podłogą rusztową. Mimo to, zgodnie z dyrektywą Rady UE, rolnicy mogą dostarczać alternatywne materiały wzbogacające, o ile pozwalają one świniom na wykonanie odpowiednich czynności badawczych i manipulacyjnych.
Brak wzbogacenia środowiska może potencjalnie prowadzić do frustracji i stresu3, co może aktywować oś podwzgórze-przysadka-nadnercza (HPA). U świń, a także u ludzi i innych zwierząt, stres zazwyczaj prowadzi do wydzielania hormonu adrenokortykotropowego (ACTH) z przysadki mózgowej. ACTH wiąże się ze swoimi receptorami w korze nadnerczy i stymuluje uwalnianie przez nadnercza glikokortykosteroidu kortyzolu, który jest uważany za główny biomarker stresu i może być mierzony we krwi, moczu, ślinie i włosach. Kortyzol w ślinie jest markerem ostrego stresu, ponieważ odzwierciedla jego biologicznie aktywne stężenie we krwi4. Zaletą jest nieinwazyjne pobieranie próbek, bez kontaktu ze zwierzętami, za pomocą lin bawełnianych dostarczonych jako wzbogacenie środowiska16,17. Kortyzol we włosach jest używany jako marker przewlekłego stresu, ponieważ kortyzol gromadzi się we włosach z czasem i może być ekstrahowany i mierzony18,19; Wymaga jednak obchodzenia się ze zwierzętami, liczba powtarzających się próbek jest ograniczona tempem wzrostu włosów, a analiza jest bardziej uciążliwa, ponieważ wymaga długiego procesu ekstrakcji. Mimo to zarówno ślina, jak i kortyzol we włosach mogą dostarczać uzupełniających informacji do oceny dobrostanu zwierząt.
Celem tego artykułu są (1) dostarczenie metodologicznych informacji na temat tego, jak zapewnić stosunkowo proste i praktyczne wzbogacenie środowiska dla świń, które są trzymane na podłodze z rusztów podczas różnych etapów ich życia (poród i laktacja, od warchlaków do tuczników), oraz (2) pokazanie, jak nieinwazyjnie pobierać próbki śliny do pomiaru stężenia kortyzolu, jako biomarker ostrego stresu.
Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.
Protokół
Protokół badania został etycznie zatwierdzony przez Komitet ds. Opieki nad Zwierzętami i Użytkowania Zwierząt Uniwersytetu Hebrajskiego (MD-16-14754-2). Badanie zostało przeprowadzone w 2017 roku w Instytucie Badań nad Zwierzętami w Lahav i na Uniwersytecie Hebrajskim w Jerozolimie w Izraelu.
1. Protokół wzbogacania środowiska podczas porodu i laktacji
UWAGA: W tym badaniu, lochy były trzymane w kojcach porodowych/laktacyjnych, pod ograniczeniami przez ograniczony czas, od 3-5 dni przed spodziewaną datą porodu i do 10 dni po oproszeniu; następnie usunięto bariery ograniczające, aby umożliwić swobodny ruch i interakcję między lochą a jej prosiętami (zilustrowane w Rysunek 1A). Jednak poniższy protokół jest również odpowiedni dla konwencjonalnych klatek porodowych, w których locha jest unieruchomiona przez cały okres laktacji.
- Materiały urozmaicające warunki bytowania (juta i liny bawełniane) należy zawiesić w kojcu porodowym przed przeniesieniem lochy do niego, aby umożliwić lochom zachowanie przypominające gniazdowanie przed porodem.
- Do każdego kojca/klatki porodowej przygotuj dwa kawałki juty (20 cm szerokości, metr długości) oraz dwa kawałki 100% naturalnych, niebarwionych bawełnianych lin (2-3 cm średnicy), każdy o długości około jednego metra.
- Przywiąż liny jutowe i bawełniane (podwójny węzeł górny) do prętów długopisu/skrzyń, jak pokazano na Rysunek 1, od jego środka, pozwalając na zawieszenie dwóch wolnych końców każdego elementu w kierunku podłogi. Wysokość węzłów z juty i lin bawełnianych powinna być nieco niższa niż łopatka lochy, zaś jej wolne końce znajdują się tuż nad podłogą (Rysunek 1B-C).
- Lochy są zazwyczaj zainteresowane linami jutowymi i bawełnianymi; często ciągną je i żują. Dlatego wymień lub uzupełnij materiały, gdy są brudne lub wykończone.
UWAGA: W tym badaniu materiały były sprawdzane co 4-5 dni i wymieniane lub uzupełniane w razie potrzeby. - Po urodzeniu prosiąt zawieś liny jutowe i bawełniane tak, aby były dostępne zarówno dla lochy, jak i jej prosiąt, w bezpiecznym miejscu. Zazwyczaj, gdy materiały są osiągalne dla obu, prosięta naśladują swoje matki od bardzo wczesnego wieku.
UWAGA: Jako dodatek, rozdrobniony papier może być również dostarczony jako wzbogacenie środowiska dla loch i prosiąt porodowych, na podłodze rusztowej. Jednak kompatybilność systemów odwadniających i kanalizacyjnych powinna być krytycznie zbadana w konkretnym gospodarstwie.
2. Protokół wzbogacania środowiska dla warchlaków (gdy nie można dostarczyć słomy)
UWAGA: W tym badaniu, po odsadzeniu, każde dwa mioty zostały zgrupowane w jednym kojcu warchlaków. Optymalnie, grupy powinny pozostać statyczne aż do uboju, bez mieszania lub wprowadzania nowych towarzyszy z kojca do kojca, aby uniknąć walk i urazów związanych z hierarchią. Przydział miejsca w kojcu był zgodny z dyrektywą Rady Europejskiej 2008/120/WE i ustawodawstwem izraelskim, przy około 20 świniach w grupie i 0,3m2 wolnej powierzchni podłogi na świnię. Ze względów technicznych nie można było zapewnić słomy dla warchlaków, nawet w stojakach. W przypadku gdy słoma może być dostarczona, należy stosować protokół tuczników od odsadzenia do uboju, jak wyszczególniono w sekcji 3 protokołu.
- Do każdego kojca przygotuj metrowe kawałki 100% naturalnych, niebarwionych sznurków bawełnianych o średnicy 2-3 cm; co najmniej jeden kawałek na każde 10 świń. Przywiąż bawełniane liny do łańcucha zawieszonego pod sufitem lub do wiszącego słupa (aby oddalić go od ściany), jak pokazano na Rysunek 2B.
- Liny należy ustawić najlepiej w środku "aktywnego" obszaru kojca, blisko karmnika i poideł oraz z dala od ściany kojca (jak zaznaczono w Rysunek 2A), aby umożliwić dostęp 360°, co ma zapobiec agresywnemu zachowaniu spowodowanemu konkurencją.
- Zawieś liny na wysokości, która pozwoli świniom łatwo dosięgnąć ich pyskami. Typowo, węzeł powinien znajdować się niżej niż łopatka świni, zaś wolne końce lin powinny znajdować się tuż nad podłogą, bez dotykania jej (Rysunek 2).
- Wymień lub napełnij liny, gdy są brudne lub gotowe.
UWAGA: W tym badaniu materiały były sprawdzane co 4-5 dni i wymieniane lub uzupełniane w razie potrzeby. - Oprócz bawełnianych lin należy zaopatrzyć się w silikonowe patyczki do żucia lub podobne urządzenia do żucia (Rysunek 2). Zastosowane urządzenie (patrz Tabela Materiałów) zawiera cztery patyczki do żucia, co pozwala co najmniej czterem świniom na jednoczesną interakcję z urządzeniem. Zapewnij jedno urządzenie na każde 10 do 15 świń.
- Zawieś urządzenie do żucia za pomocą łańcucha pod sufitem (dołączone do zestawu), aby umożliwić ruch wahadłowy urządzenia; zwiększa to aktywność i wyzwanie dla świń, a także pozwala większej liczbie świń uczestniczyć jednocześnie.
- Umieść urządzenie na środku aktywnego obszaru pióra, z dala od ścianek pióra, aby umożliwić dostęp 360°, co ma zapobiec agresywnemu zachowaniu spowodowanemu konkurencją. Koniec silikonowych patyczków powinien znajdować się na wysokości od 10 do 20 cm nad podłogą.
- Wymień silikonowe patyczki po zakończeniu lub jeśli są brudne.
UWAGA: W tym badaniu patyczki silikonowe należy wymieniać tylko wtedy, gdy są przenoszone z kojców warchlaków do kojców wykańczających.
3. Protokół wzbogacania środowiska dla finiszerów
UWAGA: Gdy słoma może być dostarczana przez cały okres, zacznij używać tego protokołu od odsadzenia do uboju, zamiast tylko w kojcach tuczników.
- Zaopatrz każdy długopis w słomę umieszczoną w stojaku, w zawieszonej sieci lub w wieży, jak pokazano na Rysunek 2C. W przypadku dostarczania do takich urządzeń, tylko niewielkie ilości słomy są dostępne dla świń na raz, a większość z nich jest żuta. Dlatego to uszlachetnienie może być stosowane na podłogach rusztowych, gdy słoma nie może być dostarczona jako ściółka.
UWAGA: W tym badaniu słoma została dostarczona w komercyjnych stojakach (Rysunek 2C). - Zawieś stojaki na słomę na wysokości dostępnej dla wszystkich świń, zwykle tuż poniżej poziomu ramion. Przymocuj je do ściany w taki sposób, aby dostęp był najłatwiejszy dla jak największej liczby świń, najlepiej w "obszarze aktywnym". Upewnij się, że stojaki są prawidłowo i bezpiecznie przymocowane do ściany, aby uniknąć uszkodzenia urządzenia i obrażeń.
- Na początku upewnij się, że kosze są całkowicie wypełnione słomą; co 1-3 dni można dodawać niewielką ilość świeżej słomy. Alternatywnie uzupełniaj, gdy stojak jest pusty, zwykle co 7-10 dni.
UWAGA: Długa słoma jest lepsza niż słoma cięta, aby zmniejszyć agresywność w grupie i zaspokoić behawioralne potrzeby świń w zakresie zakorzeniania i eksploracji20. - W stosownych przypadkach rozważ umieszczenie tacy zbiorczej lub maty pod stojakiem, gdy podłoga jest rusztowa, aby uniknąć rozrzucania słomy i blokowania systemów drenażowych i kanalizacyjnych (Rysunek 2C). Ponieważ słoma jest dostarczana świniom głównie w celu zaspokojenia ich zachowań związanych z ukorzenianiem i eksploracją, mata może pozwolić na zbadanie obecności wolnej słomy na poziomie gruntu.
- Oprócz słomki należy zapewnić urządzenia do żucia, jak opisano w sekcji 2.
- W przypadku używania lin bawełnianych do zbierania śliny, jak opisano w następnym rozdziale, należy pozostawić liny w kojcach po pobraniu śliny, jako dodatkowe wzbogacenie. Można również dostarczyć inne liny bawełniane, jak opisano w sekcji 2.
4. Pobieranie próbek śliny do analizy stężenia kortyzolu
UWAGA: Ta sekcja zawiera informacje jak nieinwazyjnie pobierać ślinę do analizy stężenia kortyzolu, jako biomarkera ostrego stresu; jednak próbki śliny mogą być również wykorzystywane do analizy innych biomarkerów, a nawet do badań przesiewowych potencjalnych patogenów. Ponadto w razie potrzeby należy mierzyć poziom kortyzolu we włosach.
- Zaplanuj pobieranie próbek śliny o tej samej porze dnia, aby uniknąć stronniczości, ponieważ wydzielanie kortyzolu zmienia się w ciągu dnia z powodu fizjologicznego rytmu dobowego lub z powodu karmienia21. Pobieranie próbek jest zazwyczaj łatwiejsze przed karmieniem, najlepiej przed drugim karmieniem w ciągu dnia.
- Użyj bezbarwnej, 100% bawełnianej liny (o średnicy 2-3 cm). Zazwyczaj potrzebna jest jedna lina na 12-15 świń.
UWAGA: W tym badaniu do pobierania próbek śliny użyto komercyjnych, gotowych do użycia zestawów. - Przywiąż linę blisko środka kojca, z dala od ściany długopisu. Upewnij się, że sznurek, który jest używany do zawieszania (między bawełnianą liną a prętem) nie jest dostępny do żucia przez świnie, oraz że wolne końce bawełnianych lin nie dotykają podłogi, ze względów higienicznych (Rysunek 3A).
- Rozplątać wolny koniec liny, aby zwiększyć dostępną powierzchnię do żucia (Rysunek 3B).
- Pozostaw linę wiszącą na 15-30 minut. Zazwyczaj świnie są zainteresowane nowo dostarczonymi linami i w tym czasie je żują. Zazwyczaj zdecydowana większość świń zbliża się do liny.
- Aby wydobyć ślinę z liny, umieść wolną część liny w sterylnej plastikowej torbie (jak pokazano na Rysunek 3D) i ściśnij linę, wywierając nacisk od zewnątrz torby, od góry do dołu, aż na dnie worka zgromadzi się wystarczająca ilość płynu (sugerowana co najmniej 2 ml) (Rysunek 3E), a następnie zdejmij linę z torby.
UWAGA: W tym badaniu do zestawu dołączona była torba o wymiarach 30 cm x 40 cm. Jeśli to możliwe, ten krok należy wykonać w kojcu bez przecinania wiszącego sznurka. W ten sposób ekstrakcja śliny jest zwykle łatwiejsza, a liny można pozostawić w kojcu jako wzbogacenie. Jeśli nie ma wystarczającej ilości śliny, można użyć wyżymaczki (nie była wymagana w tym badaniu). - Aby przenieść ślinę z worka do sterylnej probówki, wyciągnij linę i ostrożnie odetnij dolny róg worka nad sterylną plastikową probówką o pojemności 50 ml (chociaż zwykle wymagane jest tylko 400 μl do każdej analizy w duplikatach, do pobrania zaleca się co najmniej 2 ml; Rysunek 3F). Zamknij tubę i oznacz ją trwałym markerem lub wcześniej przygotowaną naklejką (zwierzęta/długopis, data, godzina, gospodarstwo itp.).
- Przechowuj próbki śliny w izolowanym pojemniku z wkładami z lodu do czasu dostarczenia do laboratorium.
- W laboratorium odwiruj próbki śliny, aż będzie można oddzielić brud (przez 8 minut przy 3000 x g). Dla wygody czystą ślinę należy przenieść za pomocą czystej jednorazowej pipety Pasteura do wstępnie oznaczonych sterylnych probówek o mniejszej objętości (np. probówek do zamrażania z zakrętką o pojemności 2 ml). Próbki mogą być analizowane natychmiast lub mogą być przechowywane w stanie zamrożonym w temperaturze -20 °C lub niższej do czasu analizy.
- Przed analizą stężenia kortyzolu należy potwierdzić tożsamość odpowiednich próbek, a próbki należy rozmrozić w temperaturze pokojowej, jeśli są zamrożone. Delikatnie wymieszać każdą próbkę, a następnie ponownie ją odwirować przed analizą, aby usunąć ewentualne resztki brudu, które mogą zakłócać test (8 min przy 3000 x g).
- Wykonaj analizę stężenia kortyzolu za pomocą zwalidowanego testu, zgodnie ze specjalnym protokołem zestawu.
UWAGA: W tym badaniu próbki kortyzolu w ślinie mierzono w duplikatach za pomocą testu immunoenzymatycznego zgodnie z wytycznymi producenta. W przypadku świń, które wcześniej były wyposażone w liny jako wzbogacenie, zbieranie śliny byłoby bardzo łatwe, ponieważ świnie wykazują duże zainteresowanie linami. Jednak w przypadku świń, które nie są zaznajomione z linami, trening może zająć trochę czasu; W związku z tym zebranie odpowiedniej ilości śliny może nie być możliwe od pierwszego razu. W razie potrzeby liny można namoczyć w soku jabłkowym do treningu (oczywiście w takim przypadku ślina nie może być używana do analizy). Jeśli potrzebne są próbki śliny od świń trzymanych indywidualnie, pobieranie może być trudniejsze niż od grupy, a zazwyczaj wymagane są sesje treningowe z linami nasączonymi sokiem jabłkowym. Żucie lin zbierających może być również zachęcane przez pobieranie próbek osobników jeden obok drugiego ze względu na naśladowanie.
Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.
Wyniki
W niniejszym badaniu 16 miotów (170 prosiąt) przydzielono losowo do dwóch grup traktowania; w jednej grupie osiem miotów otrzymało wzbogacenie środowiskowe („Grupa wzbogacona”, zgodnie z opisem w sekcjach 1-3 protokołu), natomiast pozostałe osiem miotów go nie otrzymało („Grupa niewzbogacona”). Po odsadzeniu, każde dwa mioty zgrupowano w jedną grupę liczącą około 20 świń. Próbki śliny pobierano i analizowano pod kątem stężenia kortyzolu co dwa tygodnie w każdym kojcu, zgodnie z opisem w s...
Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.
Dyskusja
W niniejszym artykule opisujemy protokoły szczegółowo opisujące, w jaki sposób zapewnić proste i praktyczne wzbogacenie środowiska świniom, które są trzymane na podłodze rusztowej na różnych etapach ich życia, oraz jak nieinwazyjnie pobierać próbki śliny do pomiaru stężenia kortyzolu, jako biomarkera ostrego stresu. Słoma jako ściółka jest uważana za jedno z najbardziej odpowiednich wzbogaceń środowiska dla świń, ale może być niepraktyczna na podłogach rusztowych. Jednak stosunkowo niedrogie alternatywy, takie jak juta, ...
Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.
Oświadczenia
Autorzy nie mają nic do ujawnienia.
Podziękowania
Dziękujemy Lahav CRO za przeprowadzenie badań w ich gospodarstwie oraz zespołowi farmy za dostarczenie cennej pomocy technicznej podczas całego badania. Badanie zostało sfinansowane przez izraelskiego Głównego Naukowca Ministerstwa Rolnictwa i Rozwoju Wsi.
Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.
Materiały
| Nazwa | Firma | Numer katalogowy | Komentarze |
|---|---|---|---|
| Bite-Rite | Ikadan System Stany Zjednoczone Inc. | Rozważ zamówienie dodatkowych wymiennych sztyftów silikonowych | |
| ELISA; Zestaw do usuwania kortyzolu ze śliny | DRG International Inc. NJ, Stany Zjednoczone | SLV2930 | |
| HALM 60/80 CM | W. Domino A/S, DK | 49084/ 85 | |
| TEGO Zestaw płynów ustnych dla świń | ITL BioMedical, USA | A100930 | Zawiera wszystko, co jest potrzebne do pobierania próbek śliny |
Bibliografia
- McGlone, J. J. The Future of Pork Production in the World: Towards Sustainable, Welfare-Positive Systems. Animals (Basel. 3, 401-415 (2013).
- Kuberka, L., Cozzens, T., Mezoughem, C. Livestock and Poultry: World Markets and Trade. Available at: https://apps.fas.usda.gov/psdonline/circulars/livestock_poultry.pdf [accessed). USDA-FAS, Office of Global Analysis, Global Commodity Analysis Division. , Washington, DC, USA. (2018).
- Oostindjer, M., et al. Effects of environmental enrichment and loose housing of lactating sows on piglet performance before and after weaning. Journal of Animal Science. 88, 3554-3562 (2010).
- Munsterhjelm, C., et al. Environmental enrichment in early life affects cortisol patterns in growing pigs. Animal. 4, 242-249 (2010).
- Bracke, M. B. M., Koene, P. Expert opinion on metal chains and other indestructible objects as proper enrichment for intensively-farmed pigs. PLoS One. 14, (2019).
- Marcet Rius,, M,, et al. Providing straw to allow exploratory behaviour in a pig experimental system does not modify putative indicators of positive welfare: peripheral oxytocin and serotonin. Animal. 12, 2138-2146 (2018).
- Giuliotti, L., Benvenuti, M. N., Giannarelli, A., Mariti, C., Gazzano, A. Effect of Different Environment Enrichments on Behaviour and Social Interactions in Growing Pigs. Animals. 9, (2019).
- Stafford, K. J. Tail biting: an important and undesirable behaviour of growing pigs. Veterinary journal. 186, 131-132 (2010).
- Sutherland, M. A. Welfare implications of invasive piglet husbandry procedures, methods of alleviation and alternatives: a review. New Zealand Veterinary Journal. 63, 52-57 (2015).
- Herskin, M. S., Jensen, K. H., Thodberg, K. Influence of environmental stimuli on nursing and suckling behaviour in domestic sows and piglets. Animal Science. 68, 27-34 (1999).
- Lawrence, A. B., et al. The Effect of Environment on Behavior, Plasma-Cortisol and Prolactin in Parturient Sows. Applied Animal Behaviour Science. 39 (94), 313-330 (1994).
- Baxter, E. M., Lawrence, A. B., Edwards, S. A. Alternative farrowing accommodation: welfare and economic aspects of existing farrowing and lactation systems for pigs. Animal. 6, 96-117 (2012).
- Oliviero, C., Heinonen, M., Valros, A., Halli, O., Peltoniemi, O. A. Effect of the environment on the physiology of the sow during late pregnancy, farrowing and early lactation. Animal Reproduction Science. , 365-377 (2008).
- Thomsen, R., Edwards, S. A., Rousing, T., Labouriau, R., Sorensen, J. T. Influence of social mixing and group size on skin lesions and mounting in organic entire male pigs. Animal. 10, 1225-1233 (2016).
- Rydhmer, L., Hansson, M., Lundstrom, K., Brunius, C., Andersson, K. Welfare of entire male pigs is improved by socialising piglets and keeping intact groups until slaughter. Animal. 7, 1532-1541 (2013).
- Heimburge, S., Kanitz, E., Otten, W. The use of hair cortisol for the assessment of stress in animals. General and Comparative Endocrinology. , 10-17 (2019).
- Morgan, L., et al. Effects of group housing on reproductive performance, lameness, injuries and saliva cortisol in gestating sows. Preventive Veterinary Medicine. , 10-17 (2018).
- Meyer, J. S., Novak, M. A. Minireview: Hair cortisol: a novel biomarker of hypothalamic-pituitary-adrenocortical activity. Endocrinology. 153, 4120-4127 (2012).
- Meyer, J., Novak, M., Hamel, A., Rosenberg, K. Extraction and analysis of cortisol from human and monkey hair. Journal of Visualized Experiments : JoVE. , (2014).
- Lahrmann, H. P., Oxholm, L. C., Steinmetz, H., Nielsen, M. B., D'Eath, R. B. The effect of long or chopped straw on pig behaviour. Animal. 9, 862-870 (2015).
- Boumans, I., de Boer, I. J. M., Hofstede, G. J., Fleur, la, E, S., Bokkers, E. A. M. The importance of hormonal circadian rhythms in daily feeding patterns: An illustration with simulated pigs. Hormones and Behavior. 93, 82-93 (2017).
- Schonreiter, S., et al. Salivary cortisol as a stress parameter in piglets. Tierarztliche Praxis Ausgabe G: Grosstiere - Nutztiere. 27, 175-179 (1999).
- Cook, N. J., Hayne, S. M., Rioja-Lang, F. C., Schaefer, A. L., Gonyou, H. W. The collection of multiple saliva samples from pigs and the effect on adrenocortical activity. Canadian Journal of Animal Science. 93, 329-333 (2013).
- Reimert, I., Rodenburg, T. B., Ursinus, W. W., Kemp, B., Bolhuis, J. E. Responses to novel situations of female and castrated male pigs with divergent social breeding values and different backtest classifications in barren and straw-enriched housing. Applied Animal Behaviour Science. , 24-35 (2014).
- Avan de Weerd, H., Day, J. E. L. A review of environmental enrichment for pigs housed in intensive housing systems. Applied Animal Behaviour Science. 116, 1-20 (2009).
- Wright, K. D., Hickman, R., Laudenslager, M. L. Hair Cortisol Analysis: A Promising Biomarker of HPA Activation in Older Adults. Gerontologist. 55 Suppl 1, S140-S145 (2015).
- Decorte, I., et al. Detection of total and PRRSV-specific antibodies in oral fluids collected with different rope types from PRRSV-vaccinated and experimentally infected pigs. BMC Veterinary Research. 10, 134(2014).
Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.
Przedruki i uprawnienia
