$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Ostatnie postępy w dziedzinie wektorów wirusowych i nanomateriałów otworzyły drogę dla nowych, nowatorskich podejść do badania lub manipulowania ośrodkowym układem nerwowym (OUN). Jednak dalsza optymalizacja tych technologii przyniosłaby korzyści dzięki metodom umożliwiającym szybkie i sprawne określenie zakresu celowania w OUN i komórkę po podaniu wektorów wirusowych lub nanocząstek w organizmie. W tym miejscu przedstawiamy protokół, który wykorzystuje wysoką przepustowość i możliwości multipleksowania cytometrii przepływowej, aby umożliwić prostą kwantyfikację różnych podtypów komórek wyizolowanych z mózgu lub rdzenia kręgowego myszy, a mianowicie mikrogleju / makrofagów, limfocytów, astrocytów, oligodendrocytów, neuronów i komórek śródbłonka. Stosujemy to podejście, aby podkreślić krytyczne różnice między dwiema metodami homogenizacji tkanek pod względem wydajności, żywotności i składu komórek. Może to poinstruować użytkownika, aby wybrał najlepszą metodę w zależności od interesującego typu komórki i konkretnego zastosowania. Metoda ta nie nadaje się do analizy rozmieszczenia anatomicznego, ponieważ tkanka jest homogenizowana w celu wytworzenia zawiesiny jednokomórkowej. Pozwala jednak na pracę z żywotnymi komórkami i może być łączona z sortowaniem komórek, otwierając drogę do kilku zastosowań, które mogą rozszerzyć repertuar narzędzi w rękach neurobiologa, począwszy od ustanawiania kultur pierwotnych pochodzących z czystych populacji komórek, po analizy ekspresji genów i testy biochemiczne lub funkcjonalne na dobrze zdefiniowanych podtypach komórek w kontekście chorób neurodegeneracyjnych. po leczeniu farmakologicznym lub terapii genowej.